การแสดงออกของเปปไทด์ LcI สายผสมจาก Bacillus amyloliquefaciens KKU14 และการทดสอบความสามารถในการยับยั้ง Burkholderia pseudomallei

ผู้แต่ง

  • วจีอร อ้วนชารี ภาควิชาชีวเคมี คณะแพทยศาสตร์ มหาวิทยาลัยขอนแก่น
  • โชติมา โพธิทรัพย์ ภาควิชาชีวเคมี คณะแพทยศาสตร์ มหาวิทยาลัยขอนแก่น
  • รศนา เสริมสวรรค์ ภาควิชาชีวเคมี คณะแพทยศาสตร์ มหาวิทยาลัยขอนแก่น
  • อัชฌา บุญมี ภาควิชาจุลชีววิทยา คณะวิทยาศาสตร์ มหาวิทยาลัยขอนแก่น

คำสำคัญ:

Antimicrobial peptide; Recombinant LcI peptide; Bacillus amyloliquefaciens; Burkholderia pseudomallei

บทคัดย่อ

หลักการและวัตถุประสงค์: Burkholderia pseudomallei เป็นเชื้อก่อโรคเมลิออยด์ รักษาได้ด้วยยาปฏิชีวนะ อย่างไรก็ตามพบการดื้อยาในเชื้อ B. pseudomallei หลายสายพันธุ์ ก่อนหน้านี้พบว่า Bacillus amyloliquefaciens KKU14 สามารถยับยั้งการเจริญของเชื้อ B. pseudomallei ได้ ผู้วิจัยจึงได้โคลนยีนสร้างสารต้านจุลชีพ LcI จาก B. amyloliquefaciens KKU14 และทดสอบการออกฤทธิ์ต้านเชื้อ B. pseudomallei สายพันธุ์ P37

วิธีการศึกษา: ค้นหาข้อมูลเปปไทด์ต้านจุลชีพของแบคทีเรีย B. amyloliquefaciens จากฐานข้อมูล GenPept (NCBI) ออกแบบไพรเมอร์และเพิ่มจำนวนยีนจาก B. amyloliquefaciens KKU14 ด้วยวิธี PCR  โคลนยีนเข้า เวกเตอร์พาหะชนิดต่าง  ๆ แสดงออกโปรตีน และทดสอบการต้านเชื้อ B. pseudomallei P37 ด้วยวิธี agar well diffusion และ in-gel overlay

ผลการศึกษา: สามารถโคลนยีน lcI ได้สำเร็จแต่พบการแสดงออกของเปปไทด์สายผสมเฉพาะในเวคเตอร์ pQE31 เท่านั้น เปปไทด์ที่แสดงออกมีขนาดประมาณ 10 กิโลตาลตัน อย่างไรก็ดีเปปไทด์สายผสมนี้ไม่สามารถยับยั้ง B. pseudomallei สายพันธุ์ P37

สรุป: ในเบื้องต้นเปปไทด์ LcI สายผสมจาก B. amyloliquefaciens KKU14 ไม่สามารถยับยั้ง B. pseudomallei สายพันธุ์ P37 ได้ อาจเกิดจากการพับตัวที่ไม่เหมาะสมของเอนไซม์สายผสม หรือเปปไทด์ที่มีฤทธิ์ต้านเชื้อ B. pseudomallei อาจเป็นเปปไทด์ชนิดอื่น หรืออาจต้องใช้การทำงานร่วมกันของเปปไทด์หลายชนิด ซึ่งจำเป็นต้องมีการศึกษาต่อไป

เอกสารอ้างอิง

1. White NJ. Melioidosis. Lancet 2003; 361(9370): 1715-22.
2. Suputtamongkol Y, Hall AJ, Dance DA, Chaowagul W, Rajchanuvong A, Smith MD, et al. The epidemiology of melioidosis in Ubon Ratchatani, northeast Thailand. Int J Epidemiol 1994; 23(5): 1082-90.
3. Limmathurotsakul D, Wongratanacheewin S, Teerawattanasook N, Wongsuvan G, Chaisuksant S, Chetchotisakd P, et al. Increasing incidence of human melioidosis in Northeast Thailand. Am J Trop Med Hyg 2010; 82(6): 1113-7.
4. Wiersinga WJ, Currie BJ, Peacock SJ. Melioidosis. N Engl J Med 2012; 367(11): 1035-44.
5. White NJ, Dance DA, Chaowagul W, Wattanagoon Y, Wuthiekanun V, Pitakwatchara N. Halving of mortality of severe melioidosis by ceftazidime. Lancet 1989; 2(8665): 697-701.
6. Potisap C, Khan AW, Boonmee A, Rodrigues JLM, Wongratanacheewin S, Sermswan RW. Burkholderia pseudimallei-absent soil bacterial community results in secondary metabolites that kill this pathogen. AMB Express 2018; 8: 136. doi: 10.1186/s13568-018-0663-7.
7. Liu J, Pan N, Chen Z. Purification and characterization of an antibacterial protein from Bacillus subtilis. Acta Microbiol Sin 1993; 33: 268-273.
8. Liu J, Pan N, Chen Z. The characterization of anti-rice bacterial blight polypeptide LCI. Rice Genet Newsl 1990; 7: 151-4.
9. Gong W, Wang J, Chen Z, Xia B, Lu G. Solution structure of LCI, a novel antimicrobial peptide from Bacillus subtilis. Biochemistry 2011; 50(18): 3621-7.
10. Klaenhammer TR. Genetics of bacteriocins produced by lactic acid bacteria. FEMS Microbiol Rev 1993; 12(1-3): 39-85.
11. Froger A, Hall JE. Transformation of plasmid DNA into E. coli using the heat shock method. J Vis Exp 2007; 6: 253. doi: 10.3791/253.
12. Hames BD. Gel electrophoresis of proteins: A Practical Approach. 3rd ed: OUP Oxford; 1998.
13. Schagger H. Tricine-SDS-PAGE. Nat Protoc 2006; 1(1): 16-22.
14. Hu HQ, Li XS, He H. Characterization of an antimicrobial material from a newly isolated Bacillus amyloliquefaciens from mangrove for biocontrol of Capsicum bacterial wilt. Biol Control 2010; 54(3): 359-65.
15. Park WJ, You SH, Choi HA, Chu YJ, Kim GJ. Over-expression of recombinant proteins with N-terminal His-tag via subcellular uneven distribution in Escherichia coli. Acta Biochim Biophys Sin 2015; 47(7): 488-95.
16. Xu X, Jin F, Yu X, Ji S, Wang J, Cheng H, et al. Expression and purification of a recombinant antibacterial peptide, cecropin, from Escherichia coli. Protein Expr Purif 2007; 53(2): 293-301.
17. Xu Z, Zhong Z, Huang L, Peng L, Wang F, Cen P. High-level production of bioactive human beta-defensin-4 in Escherichia coli by soluble fusion expression. Appl Microbiol Biotechnol 2006; 72(3): 471-9.
18. Lai WS, Kan SC, Lin CC, Shieh CJ, Liu YC. Antibacterial peptide cecropinB2 production via various host and construct systems. Molecules 2016; 21(1): 103. doi: 10.3390/molecules21010103.
19. Ingham AB, Sproat KW, Tizard ML, Moore RJ. A versatile system for the expression of nonmodified bacteriocins in Escherichia coli. J Appl Microbiol 2005; 98(3): 676-83.
20. LaVallie ER, DiBlasio EA, Kovacic S, Grant KL, Schendel PF, McCoy JM. A thioredoxin gene fusion expression system that circumvents inclusion body formation in the E. coli cytoplasm. Biotechnology 1993; 11: 187-193.

ดาวน์โหลด

เผยแพร่แล้ว

2020-10-16

รูปแบบการอ้างอิง

1.
อ้วนชารี ว, โพธิทรัพย์ โ, เสริมสวรรค์ ร, บุญมี อ. การแสดงออกของเปปไทด์ LcI สายผสมจาก Bacillus amyloliquefaciens KKU14 และการทดสอบความสามารถในการยับยั้ง Burkholderia pseudomallei. SRIMEDJ [อินเทอร์เน็ต]. 16 ตุลาคาม 2020 [อ้างถึง 22 ธันวาคม 2025];35(6):760-7. available at: https://li01.tci-thaijo.org/index.php/SRIMEDJ/article/view/247356