ผลของสารสกัดติ้วขาวต่อการเคลื่อนที่และความเข้มข้นของสเปิร์ม ในหนูขาวที่ถูกชักนำให้เกิดความดันเลือดสูงด้วยแอลเนม
คำสำคัญ:
Cratoxylum formosum; Antioxidant; Sperm concentration and motility; Oxidative stressบทคัดย่อ
หลักการและวัตถุประสงค์: Cratoxylum formosum (CF) หรือติ้วขาว มีรายงานว่ามีคุณสมบัติต้านอนุมูลอิสระและต้านการอักเสบ แต่มีข้อมูลเพียงเล็กน้อยที่แสดงให้เห็นถึงผลของติ้วขาวต่อความดันเลือดและคุณภาพของสเปิร์ม ดังนั้นการศึกษาครั้งนี้จึงมีวัตถุประสงค์เพื่อประเมินผลของสารสกัดติ้วขาวต่อความดันเลือด คุณภาพของสเปิร์มและภาวะเครียดออกซิเดชันในหนูขาวที่ถูกชักนำให้เกิดความดันเลือดสูงด้วยแอลเนม (L-NAME)
วิธีการศึกษา: หนูขาวเพศผู้ถูกแบ่งออกเป็น 3 กลุ่ม (8 ตัว/กลุ่ม) ได้แก่ กลุ่มควบคุม กลุ่มความดันเลือดสูง (L-NAME) และกลุ่มความดันเลือดสูงที่ได้รับสารสกัดติ้วขาว 100 มก/กก น้ำหนักตัว/วัน (CF100) กลุ่มความดันเลือดสูง หนูขาวถูกให้แอลเนมขนาด 40 มก/กก. น้ำหนักตัว ในน้ำดื่มเพื่อชักนำให้เกิดความดันเลือดสูง เป็นเวลา 5 สัปดาห์ ใน 2 สัปดาห์สุดท้าย หนูขาวในกลุ่ม CF100 ถูกป้อนด้วยสารสกัดติ้วขาวขนาด 100 มก/กก. น้ำหนักตัว เมื่อสิ้นสุดการทดลอง ความดันเลือดขณะหัวใจบีบตัว น้ำหนักตัว อัณฑะและท่อพักอสุจิถูกวัด การนับสเปิร์มถูกดำเนินการ
ผลการศึกษา: หนูที่ได้รับแอลเนม เพิ่มความดันเลือดขณะหัวใจบีบตัว และลดการเคลื่อนที่และความเข้มข้นของสเปิร์มอย่างมีนัยสำคัญทางสถิติ (p<0.05) นอกจากนี้ยังพบว่ามีการเพิ่มขึ้นของการผลิตซูเปอร์ออกไซด์ในหลอดเลือดอย่างมีนัยสำคัญทางสถิติ (p <0.05) ซึ่งบ่งชี้ว่ามีการเพิ่มขึ้นของภาวะเครียดออกซิเดชันในสัตว์ทดลองรูปแบบนี้ ในขณะที่ไม่มีความแตกต่างอย่างมีนัยสำคัญในน้ำหนักตัว น้ำหนักอัณฑะและท่อพักอสุจิระหว่างกลุ่มทดลอง สารสกัดติ้วขาว ช่วยบรรเทาการเปลี่ยนแปลงของคุณภาพของสเปิร์มและภาวะเครียดออกซิเดชันในหนูที่มีความดันเลือดสูง
สรุป: การศึกษาครั้งนี้ชี้ให้เห็นว่าการชักนำความดันเลือดสูงด้วยแอลเนม ส่งผลต่อการเคลื่อนที่และความเข้มข้นของสเปิร์ม ซึ่งอาจเกี่ยวข้องกับการลดการไหลเวียนของเลือดไปยังอวัยวะสืบพันธุ์และการเพิ่มการผลิตอนุมูลอิสระในหลอดเลือด สารสกัดติ้วขาวสามารถบรรเทาการเปลี่ยนแปลงเหล่านี้ได้ด้วยคุณสมบัติต้านอนุมูลอิสระ
เอกสารอ้างอิง
2. Kizhakekuttu TJ, Widlansky ME. Natural antioxidants and hypertension: promise and challenges. Cardiovasc Ther 2010; 28: e20-32.
3. Dusing R. Effect of the angiotensin II antagonist valsartan on sexual function in hypertensive men. Blood Press Suppl 2003; 2: 29-34.
4. Fogari R, Zoppi A, Preti P, Rinaldi A, Marasi G, Vanasia A, et al. Sexual activity and plasma testosterone levels in hypertensive males. Am J Hypertens 2002; 15: 217-21.
5. Vlachopoulos C, Ioakeimidis N, Terentes-Printzios D, Aznaouridis K, Rokkas K, Aggelis A, et al. Plasma total testosterone and incident cardiovascular events in hypertensive patients. Am J Hypertens 2013; 26: 373-81.
6. Bunbupha S, Pakdeechote P, Kukongviriyapan U, Prachaney P, Kukongviriyapan V. Asiatic acid reduces blood pressure by enhancing nitric oxide bioavailability with modulation of eNOS and p47phox expression in L-NAME-induced hypertensive rats. Phytother Res 2014; 28: 1506-12.
7. Nakmareong S, Kukongviriyapan U, Pakdeechote P, Donpunha W, Kukongviriyapan V, Kongyingyoes B, et al. Antioxidant and vascular protective effects of curcumin and tetrahydrocurcumin in rats with L-NAME-induced hypertension. Naunyn Schmiedebergs Arch Pharmacol 2011; 383: 519-29.
8. Akinyemi AJ, Adedara IA, Thome GR, Morsch VM, Rovani MT, Mujica LKS, et al. Dietary supplementation of ginger and turmeric improves reproductive function in hypertensive male rats. Toxicol Rep 2015; 2: 1357-66.
9. Nakahara K, Trakoontivakorn G, Alzoreky NS, Ono H, Onishi-Kameyama M, Yoshida M. Antimutagenicity of some edible Thai plants, and a bioactive carbazole alkaloid, mahanine, isolated from Micromelum minutum. J Agric Food Chem 2002; 50: 4796-802.
10. Panthong A, Kanjanapothi D, Taesotikul T, Taylor WC. Ethnobotanical review of medicinal plants from Thai traditional books, Part II: Plants with antidiarrheal, laxative and carminative properties. J Ethnopharmacol 1991; 31: 121-56.
11. Trakoontivakorn G, Nakahara K, Shinmoto H, Takenaka M, Onishi-Kameyama M, Ono H, et al. Structural analysis of a novel antimutagenic compound, 4-Hydroxypanduratin A, and the antimutagenic activity of flavonoids in a Thai spice, fingerroot (Boesenbergia pandurata Schult.) against mutagenic heterocyclic amines. J Agric Food Chem 2001; 49: 3046-50.
12. Kukongviriyapan U, Luangaram S, Leekhaosoong K, Kukongviriyapan V, Preeprame S. Antioxidant and vascular protective activities of Cratoxylum formosum, Syzygium gratum and Limnophila aromatica. Biol Pharm Bull 2007; 30: 661-6.
13. Senggunprai L, Thammaniwit W, Kukongviriyapan V, Prawan A, Kaewseejan N, Siriamornpun S. Cratoxylum formosum extracts inhibit growth and metastasis of cholangiocarcinoma cells by modulating the NF-kappaB and STAT3 pathways. Nutr Cancer 2016; 68: 328-41.
14. Lu FJ, Lin JT, Wang HP, Huang WC. A simple, sensitive, non-stimulated photon counting system for detection of superoxide anion in whole blood. Experientia 1996; 52: 141-4.
15. Arnal JF, Warin L, Michel JB. Determinants of aortic cyclic guanosine monophosphate in hypertension induced by chronic inhibition of nitric oxide synthase. J Clin Invest 1992; 90: 647-52.
16. Gardiner SM, Compton AM, Bennett T, Palmer RM, Moncada S. Control of regional blood flow by endothelium-derived nitric oxide. Hypertension 1990; 15: 486-92.
17. Maneesai P, Prasarttong P, Bunbupha S, Kukongviriyapan U, Kukongviriyapan V, Tangsucharit P, et al. Synergistic antihypertensive effect of Carthamus tinctorius L. extract and captopril in L-NAME-induced hypertensive rats via restoration of eNOS and AT(1)R expression. Nutrients 2016; 8: 122.
18. Xia Y, Zweier JL. Superoxide and peroxynitrite generation from inducible nitric oxide synthase in macrophages. Proc Natl Acad Sci U S A 1997; 94: 6954-8.
19. Adams ML, Nock B, Truong R, Cicero TJ. Nitric oxide control of steroidogenesis: endocrine effects of NG-nitro-L-arginine and comparisons to alcohol. Life Sci 1992; 50: PL35-40.
20. Kim SW, Cuong TD, Hung TM, Ryoo S, Lee JH, Min BS. Arginase II inhibitory activity of flavonoid compounds from Scutellaria indica. Arch Pharm Res 2013; 36: 922-6.
