ผลของลิโมนินต่อการทำงานและสัณฐานวิทยาของหลอดเลือดในหนูโรคอ้วน
คำสำคัญ:
ลิโมนิน, การทำงานและสัณฐานวิทยาของหลอดเลือด, โรคอ้วน, ภาวะเครียดออกซิเดชั่นบทคัดย่อ
หลักการและวัตถุประสงค์:โรคอ้วนถูกรายงานว่ามีความเกี่ยวข้องกับความผิดปกติของหลอดเลือดและการเปลี่ยนแปลงทางสัณฐานวิทยา การศึกษานี้มีวัตถุประสงค์เพื่อประเมินผลของลิโมนินต่อการทำงานของหลอดเลือดและสัณฐานวิทยาในหนูโรคอ้วนที่ถูกเหนี่ยวนำด้วยอาหารไขมันสูง
วิธีการศึกษา: หนูทดลอง Sprague-Dawley เพศผู้ ถูกแบ่งออกเป็น 3 กลุ่ม ได้แก่ กลุ่มควบคุมที่ได้รับอาหารปกติและน้ำเปล่า กลุ่มอ้วนที่ได้รับอาหารไขมันสูง และสารละลายฟรุกโตส 15 เปอร์เซ็นต์เป็นเวลา 16 สัปดาห์ และกลุ่มอ้วนที่ได้รับลิโมนินซึ่งได้รับอาหารไขมันสูงกับสารละลายฟรุกโตส 15 เปอร์เซ็นต์และได้รับลิโมนิน ขนาด 100 มก./กก./วัน ในช่วง 4 สัปดาห์สุดท้าย เมื่อจบการศึกษา น้ำหนักตัว น้ำหนักไขมัน การตอบสนองของหลอดเลือด สัณฐานวิทยาของหลอดเลือด และตัวชี้วัดความเครียดออกซิเดชันถูกวัด
ผลการศึกษา: หนูโรคอ้วนมีการเพิ่มขึ้นของน้ำหนักตัวและไขมันในช่องท้อง ในขณะที่หนูโรคอ้วนที่ได้รับลิโมนินสามารถลดการเพิ่มขึ้นของน้ำหนักตัวและไขมันในช่องท้องได้ (p<0.05) ลิโมนินสามารถฟื้นฟูการทำงานของหลอดเลือดโดยลดการตอบสนองต่อการกระตุ้นด้วยไฟฟ้าในหลอดเลือดมีเซนเทอริกและลดความบกพร่องของการตอบสนองต่อสารอะเซทิลโคลีนในหลอดเลือดเอออร์ต้าของหนูโรคอ้วน (p<0.05) ความผิดปกติของลักษณะทางสัณฐานวิทยาของหลอดเลือดกลับสู่ค่าปกติในหนูโรคอ้วนที่ได้รับสารลิโมนิน นอกจากนี้การผลิตซูเปอร์ออกไซด์ ของหลอดเลือดที่เพิ่มขึ้น ระดับเมแทบอไลต์ของไนตริกออกไซด์ในพลาสมาที่ลดลงในหนูโรคอ้วนบรรเทาลงด้วยการให้ลิโมนิน (p<0.05)
สรุป: ลิโมนินช่วยปรับปรุงการทำงานและสัณฐานวิทยาของหลอดเลือดในหนูโรคอ้วน กลไกที่เป็นไปได้อาจเกี่ยวข้องกับคุณสมบัติต้านโรคอ้วนและต้านอนุมูลอิสระ
เอกสารอ้างอิง
Mechanick JI, Garber AJ, Handelsman Y, Garvey WT, Beir DM, Bohannon NJV, et al. American Association of Clinical Endocrinologists’ Position Statement on Obesity and Obesity Medicine. Endocr Pract 2012;18:642–8.
Ansari S, Haboubi H, Haboubi N. Adult obesity complications: challenges and clinical impact. Ther Adv Endocrinol Metab 2020;11:204201882093495.
Lee S, Lee HJ, Kim SC, Joo JK. Association between nutrients and metabolic syndrome in middle-aged Korean women. Arch Endocrinol Metab 2020;64:298–305.
Bhandarkar NS, Brown L, Panchal SK. Chlorogenic acid attenuates high-carbohydrate, high-fat diet–induced cardiovascular, liver, and metabolic changes in rats. Nutr Res 2019; 62:78–88.
Lee GH, Hoang TH, Jung ES, Jung SJ, Chae SW, Chae HJ. Mulberry Extract Attenuates Endothelial Dysfunction through the Regulation of Uncoupling Endothelial Nitric Oxide Synthase in High Fat Diet Rats. Nutrients 2019;11:978.
Lobato NS, Filgueira FP, Hagihara GN, Akamine EH, Pariz JR, Tostes RC, et al. Improvement of metabolic parameters and vascular function by metformin in obese non-diabetic rats. Life Sci 2012;90:228–35.
Maneesai P, Bunbupha S, Kukongviriyapan U, Prachaney P, Tangsucharit P, Kukongviriyapan V, et al. Asiatic acid attenuates renin-angiotensin system activation and improves vascular function in high-carbohydrate, high-fat diet fed rats. BMC Complement Altern Med 2016;16:123.
Panchal SK, Poudyal H, Arumugam TV, Brown L. Rutin Attenuates Metabolic Changes, Nonalcoholic Steatohepatitis, and Cardiovascular Remodeling in High-Carbohydrate, High-Fat Diet-Fed Rats. J Nutr 2011;141:1062–9.
Bunbupha S, Prasarttong P, Poasakate A, Maneesai P, Pakdeechote P. Imperatorin alleviates metabolic and vascular alterations in high-fat/high-fructose diet-fed rats by modulating adiponectin receptor 1, eNOS, and p47phox expression. Eur J Pharmacol 2021; 899:174010.
Qin S, Lv C, Wang Q, Zheng Z, Sun X, Tang M, et al. Extraction, identification, and antioxidant property evaluation of limonin from pummelo seeds. Anim Nutr 2018;4:281-7.
Li Y, Yang M, Lin H, Yan W, Deng G, Ye H, et al. Limonin Alleviates Non-alcoholic Fatty Liver Disease by Reducing Lipid Accumulation, Suppressing Inflammation and Oxidative Stress. Front Pharmacol 2022;12:801730.
Deng J, Huang M, Wu H. Protective effect of limonin against doxorubicin-induced cardiotoxicity via activating nuclear factor - like 2 and Sirtuin 2 signaling pathways. Bioengineered 2021;12:7975–84.
Lu FJ, Lin JT, Wang HP, Huang WC. A simple, sensitive, non-stimulated photon counting system for detection of superoxide anion in whole blood. Experientia 1996;52:141–4.
Verdon CP, Burton BA, Prior RL. Sample Pretreatment with Nitrate Reductase and Glucose-6-Phosphate Dehydrogenase Quantitatively Reduces Nitrate While Avoiding Interference by NADP+ When the Griess Reaction Is Used to Assay for Nitrite. Anal Biochem 1995;224: 502–8.
Luangaram S, Kukongviriyapan U, Pakdeechote P, Kukongviriyapan V, Pannangpetch P. Protective effects of quercetin against phenylhydrazine-induced vascular dysfunction and oxidative stress in rats. Food Chem Toxicol 2007;45:448–55.
Nakmareong S, Kukongviriyapan U, Pakdeechote P, Donpunha W, Kukongviriyapan V, Kongyingyoes B, et al. Antioxidant and vascular protective effects of curcumin and tetrahydrocurcumin in rats with l-NAME-induced hypertension. Naunyn Schmiedebergs Arch Pharmacol 2011;383:519–29.
Bastías-Pérez M, Serra D, Herrero L. Dietary Options for Rodents in the Study of Obesity. Nutrients 2020;12:3234.
Hariri N, Thibault L. High-fat diet-induced obesity in animal models. Nutr Res Rev 2010; 23:270–99.
Senaphan K, Kukongviriyapan U, Sangartit W, Pakdeechote P, Pannangpetch P, Prachaney P, et al. Ferulic Acid Alleviates Changes in a Rat Model of Metabolic Syndrome Induced by High-Carbohydrate, High-Fat Diet. Nutrients 2015;7:6446–64.
Manna P, Jain SK. Obesity, Oxidative Stress, Adipose Tissue Dysfunction, and the Associated Health Risks: Causes and Therapeutic Strategies. Metab Syndr Relat Disord 2015;13:423–44.
Jiang F, Lim HK, Morris MJ, Prior L, Velkoska E, Wu X, et al. Systemic upregulation of NADPH oxidase in diet-induced obesity in rats. Redox Rep 2011;16:223–9.
Fortuño A, José GS, Moreno MU, Díez J, Zalba G. Oxidative stress and vascular remodelling: Oxidative stress and vascular remodelling. Exp Physiol 2005;90:457–62.
Lang P, Hasselwander S, Li H, Xia N. Effects of different diets used in diet-induced obesity models on insulin resistance and vascular dysfunction in C57BL/6 mice. Sci Rep 2019;9:19556.
Mokbel MS, Hashinaga F. Evaluation of the antioxidant activity of extracts from buntan (Citrus grandis Osbeck) fruit tissues. Food Chem 2006;94:529–34.
Yu J, Wang L, Walzem RL, Miller EG, Pike LM, Patil BS. Antioxidant Activity of Citrus Limonoids, Flavonoids, and Coumarins. J Agric Food Chem 2005;53:2009–14.
ดาวน์โหลด
เผยแพร่แล้ว
รูปแบบการอ้างอิง
ฉบับ
ประเภทบทความ
สัญญาอนุญาต
ลิขสิทธิ์ (c) 2022 ศรีนครินทร์เวชสาร
อนุญาตภายใต้เงื่อนไข Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
