ผลของการเสริมลำต้นใต้ดินของบัวหิมะ (Smallanthus sonchifolius) ในอาหารต่อประสิทธิภาพการย่อยในหลอดทดลอง การเจริญเติบโต และการใช้ประโยชน์จากอาหารของปลากาดำ (Labeo chrysophekadion)
คำสำคัญ:
ปลากาดำ, ลำต้นใต้ดินของบัวหิมะ, ประสิทธิภาพการย่อยได้, การเจริญเติบโตบทคัดย่อ
การศึกษานี้มีวัตถุประสงค์เพื่อศึกษาระดับที่เหมาะสมในการเสริมลำต้นใต้ดินของบัวหิมะ (Smallanthus sonchifolius) ในสูตรอาหารต่อการเจริญเติบโตของปลากาดำ (Labeo chrysophekadion) และประสิทธิภาพในการย่อยคาร์โบไฮเดรต และโปรตีนในหลอดทดลองของวัตถุดิบที่ใช้ในการผลิตอาหารปลากาดำ และในสูตรอาหารปลากาดำที่เสริมลำต้นใต้ดินของบัวหิมะในระดับที่ีต่างกัน โดยทำการศึกษาในปลากาดำที่มีน้ำหนักเฉลี่ยเริ่มต้น 3.09 ± 0.61 กรัม ความยาวเริ่มต้นเฉลี่ย 7.05 ± 0.60 เซนติเมตร ภายใต้แผนการทดลองแบบสุ่มสมบูรณ์ ซึ่งประกอบด้วย 1 ชุดควบคุม และ 3 ชุดทดลอง ชุดทดลองละ 3 ซ้ำ ได้แก่ ปลาที่ได้รับอาหารเสริมลำต้นใต้ดินของบัวหิมะที่ระดับ 0 (ชุดควบคุม), 2, 4 และ 6 เปอร์เซ็นต์ โดยมีระดับโปรตีนในอาหารเท่ากับ 36.70 เปอร์เซ็นต์ ทำการทดลองเป็นระยะเวลา 16 สัปดาห์ จากการทดลองพบว่า ประสิทธิภาพการย่อยคาร์โบไฮเดรตในลำต้นใต้ดินของบัวหิมะโดยเอนไซม์ที่สกัดได้จากทางเดินอาหารปลากาดำมีค่าสูงที่สุด (62.48 ± 15.89 µmol maltose/g feed/amylase activity, P0.05)ส่วนประสิทธิภาพการย่อยโปรตีนในปลาป่น (50.74 ± 2.47 µmol DL-alanine equivalent/g feed/trypsin activity) มีค่าสูงที่สุด และใกล้เคียงกันกับลำต้นใต้ดินของบัวหิมะ (48.55± 1.74 µmol DL-alanine equivalent/g feed/trypsin activity) ซึ่งมีค่าสูงกว่าวัตถุดิบชนิดอื่น (p<0.05) ประสิทธิภาพการย่อยคาร์โบไฮเดรตในสูตรอาหารที่เสริมลำต้นใต้ดินของบัวหิมะที่ระดับ 2 เปอร์เซ็นต์ มีค่าสูงที่สุด แต่ไม่แตกต่างจากอาหารในชุดควบคุม (p>0.05) ส่วนประสิทธิการย่อยโปรตีนในสูตรอาหารดังกล่าวมีค่าสูงเช่นเดียวกัน และแตกต่างจากชุดควบคุม (p<0.05) เมื่อพิจารณาการเจริญเติบโตของปลาพบว่าอาหารที่เสริมลำต้นใต้ดินของบัวหิมะที่ระดับ 2 เปอร์เซ็นต์ ทำให้ปลามีการเจริญเติบโตสูงกว่าชุดควบคุม (p<0.05) ส่วนอัตราการเปลี่ยนอาหารเป็นเนื้อ และประสิทธิภาพการใช้โปรตีนของปลาทั้ง 2 กลุ่ม พบว่ามีค่าไม่แตกต่างกัน (p>0.05) ผลการทดลองแสดงให้เห็นว่าการเสริมลำต้นใต้ดินของบัวหิมะในสูตรอาหารสำหรับเลี้ยงปลากาดำที่ระดับ 2 เปอร์เซ็นต์ เป็นระดับที่เหมาะสมที่สุด
เอกสารอ้างอิง
Akrami, R., Iri, Y., Rostami, H.K. and Mansour, M.R. 2013. Effect of dietary supplementation of fructooligosaccharide (FOS) on growth performance, survival, lactobacillus bacterial population and hemato-immunological parameters of stellate sturgeon (Acipenser stellatus) juvenile. Fish & Shellfish Immunology 35: 1235-1239.
Andrade, E.F., Leone, R.S., Ellendersen, L.N. and Masson, M.L. 2014. Phenolic profile and antioxidant activity of extracts of leaves and flowers of yacon (Smallanthus sonchifolius). Industrial Crops and Product 62: 499-506.
Chitmanat, C. 2008. Fish disease handbook. 1st ed. Maejo University press, Chiangmai. (in Thai)
Chuapoehuk, W. 2000. Aquatic animal nutrition and feeding. 2nded. Kasetsart University Press, Bangkok. (in Thai)
David, C., Indira, B.P., Rosana, C., Ana, A.G., Giuliana, N. and Romina, P. 2012. Prebiotic effects of yacon (Smallanthus sonchifolius Poepp. & Endl), a source of fructooligosaccharides and phenolic compounds with antioxidant activity. Food Chemistry 135(3): 1592-1599.
Dawood, M.A.O., Koshio, S., Ishikawa, M. and Yokoyama, S. 2015. Interaction effects of dietary supplementation of heat-killed Lactobacillus plantarum and β-glucan on growth performance, digestibility and immune response of juvenile red sea bream, Pagrus major. Fish & Shellfish Immunology 45: 33-42.
De Silva, S.S. and Anderson, T.A. 1994. Fish nutrition in Aquaculture. 1st ed. Chapman & Hall, London.
Goto, K., Fukai, K., Hikida, J., Nanjo, F. and Hara, Y. 1995. Isolation and structural analysis of oligosaccharides from yacon (Polymnia sonchifolia). Bioscience, Biotechnology and Biochemistry 59: 2346-2347.
Ingram, B.A. and Lasasimma, O. 2008. Production of Cirrhinus molitorella and Labeo chrysophekadion for culture based fisheries development in Lao PDR. Part 1 Captive spawning. Aquaculture Asia 13(2): 24-31.
Kim, J., Ki, W.L., Hae, S.J., Most, W.R.A., Hee, S.K., Taeho, K., Mun-Gyeong, K. and Sung, H.C. 2019. Oral administration effect of yacon, ginger and blueberry on the growth, body composition and plasma chemistry of juvenile olive flounder (Paralichthys olivaceus) and immunity test against Streptococcus iniae compared to a commercial probiotic, Lactobacillus fermentum. Aquaculture Reports 15: 1-7.
Kim, H.S., Lee, K.W., Jung, H.S., Kim, J.A., Yun, S.H. and Cho, M.K. 2017. Effects of dietary inclusion of yacon, ginger and blueberry on growth, body composition and challenge test of juvenile rockfish (Sebastes schlegeli) against Edwardsiella tarda. Aquaculture Nutrition 24: 1048-1055.
Ng, W.K., Abdullah, N. and De Silva, S.S. 2008. The dietary protein requirement of the Malaysian mahseer, Tor tambroides (Bleeker) and the lack of protein-sparing action by dietary lipid. Aquaculture 284(1-4): 201-206.
Ojansivu, I., Ferreira, C.L. and Salminen, S. 2011. Yacon, a new source of prebiotic oligosaccharides with a history of safe use. Trends in Food Science & Technology 22: 40-46.
Rainboth, W.J. 1996. Fishes of the Cambodian Maekong. 1sted. Food and Agriculture Organization of the United Nations press, Rome.
Roghieh, S., Seyed, H., Hoseinifar, H.V.D. and Maryam, D. 2017. The effects of dietary Myrtle (Myrtus communis) on skin mucus immune parameters and mRNA levels of growth, antioxidant and immune related genes in zebrafish (Danio rerio). Fish & Shellfish Immunology 66: 264-269.
Rungruangsak-Torrissen, K., Rustad, A., Sunde, J., Eiane, S.A., Jensen, H.B., Opstvedt, J., Nygard, E., Samuelsen, T.A., Mundheim, H., Luzzana, U. and Venturini, G. 2002. In vitro digestibility based on fish crude enzyme extract for prediction of feed quality in growth trials. Science of Food and Agriculture 82: 644-654.
Shengjie, L., Renhui, H., Nagendra, P., Shah, X.T., Yonghua, X. and Hua, W. 2014. Antioxidant and antibacterial activities of exopolysaccharides from Bifidobacterium bifidum WBIN03 and Lactobacillus plantarum R315. Dairy Science 97(12): 7334-7343.
Takenaka, M., Yan, X.J., Ono, H., Yoshida, M., Nagata, T. and Nakanishi, T. 2003. Caffeic acid derivatives in the roots of yacon (Smallanthus sonchifolius). Agricultural and Food Chemistry 51: 793-796.
Uk-katawewat, S. and Pongchawee, K. 2000. Taxonomy of Ornamental Fish for Thailand Exports. 1sted. Fisheries Department press, Bangkok. (in Thai)
Vidthayanon, C. 2004. Handbook of Freshwater Fishes. 1st ed. Bangkoksarakadee press, Bangkok. (in Thai)
ดาวน์โหลด
เผยแพร่แล้ว
รูปแบบการอ้างอิง
ฉบับ
ประเภทบทความ
สัญญาอนุญาต
ลิขสิทธิ์ (c) 2022 วารสารวิจัย มหาวิทยาลัยเทคโนโลยีราชมงคลศรีวิชัย
อนุญาตภายใต้เงื่อนไข Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
เนื้อหาและข้อมูลในบทความที่ลงตีพิมพ์ในวารสารวิจัยมหาวิทยาลัยเทคโนโลยีราชมงคลศรีวิชัย ถือเป็นข้อคิดเห็นและความรับผิดชอบของผู้เขียนบทความโดยตรง ซึ่งกองบรรณาธิการวารสารไม่จำเป็น ต้องเห็นด้วย หรือร่วมรับผิดชอบใดๆ
บทความ ข้อมูล เนื้อหา รูปภาพฯลฯ ที่ได้รับการตีพิมพ์ในวารสารวิจัย มหาวิทยาลัยเทคโนโลยีราชมงคลศรีวิชัย ถือเป็นลิขสิทธ์ของวารสารวิจัย มหาวิทยาลัยเทคโนโลยีราชมงคลศรีวิชัย หากบุคคลหรือหน่วยงานใดต้องการนำทั้งหมดหรือส่วนหนึ่งส่วนใดไปเผยแพร่ต่อหรือเพื่อการกระทำการใดๆจะต้องได้รับอนุญาตเป็นลายลักษ์อักษรจากวารสาร มหาวิทยาลัยเทคโนโลยีราชมงคลศรีวิชัยก่อนเท่านั้น
