การเกิดความต้านทานสารกำจัดวัชพืชหลายกลุ่มในกกหนวดปลาดุกต้านทานสารพีน็อกซูแลมในนาข้าว
DOI:
https://doi.org/10.14456/thaidoa-agres.2022.3คำสำคัญ:
กกหนวดปลาดุก, ความต้านทานข้าม, ความต้านทานสารหลายกลุ่ม, สารที่ยับยั้งการทำงานเอนไซม์ ALS, สารฟีนอกซูแลมบทคัดย่อ
เกษตรกรหลายรายในพื้นที่ ต.กระจัน อ.อู่ทอง จ.สุพรรณบุรี สังเกตเห็นว่าการใช้สาร พีน็อกซูแลม ซึ่งเป็นสารที่ยับยั้งการทำงานของ เอนไซม์ acetolactate synthase (ALS) ไม่สามารถ ควบคุมกกหนวดปลาดุกได้อย่างสมบูรณ์ เพื่อ พิสูจน์ให้แน่ชัดว่าประชากรของกกหนวดปลาดุก มีการพัฒนาเกิดความต้านทานต่อสารพีน็อกซูแลมในนาข้าวหรือไม่ โดยเก็บตัวอย่างเมล็ด วัชพืชจากแปลงเกษตรกรที่มีปัญหาการใช้สาร นำไปศึกษาการตอบสนองทางสรีรวิทยาของกก หนวดปลาดุกที่มีต่อสารพีน็อกซูแลม (Penoxsulam) วางแผนการทดลองแบบ split-plot design in CRD จำนวน 4 ซ้ำปัจจัยหลักคือ สารพีน็อกซูแลม มี 6 อัตรา (0, 7.03, 14.06, 28.12, 56.24 และ 112.48 กรัมสารออกฤทธิ์/เฮกตาร์) และปัจจัย รอง คือ กกหนวดปลาดุกไบโอไทป์ที่อ่อนแอ และ ไบโอไทป์ต้านทานสาร พ่นสารที่15วันหลังหว่าน การประเมินดัชนีความต้านทานสาร โดยพิจารณา ค่า I 50 จากความเป็นพิษ และค่า GR50 จากความ สูงและน้ำหนักสดของกกหนวดปลาดุกทั้งสอง ไบโอไทป์ที่ 5, 10, 14 และ 21 วันหลังจากได้ รับสาร พบว่า ไบโอไทป์ต้านทานสารมีค่าดัชนี ความต้านทานสารสูงกว่าไบโอไทป์ที่อ่อนแอมาก ถึง 27.10-66.30 เท่า และศึกษาความต้านทาน ข้ามของกกหนวดปลาดุกไบโอไทป์ต้านทานสาร ไปยังสารกำจัดวัชพืชชนิดอื่น ๆ ในกลุ่มที่ยับยั้ง การทำงานของเอนไซม์ ALS พบว่า การใช้ สาร bispyribac-sodium, pyribenzoxim และ pyrazosulfuron-ethylตามอัตราแนะนำ ไม่สามารถ ควบคุมกกหนวดปลาดุกไบโอไทป์ที่ต้านทานสาร พีน็อกซูแลมได้ จากนั้น ศึกษาความต้านทาน สารหลายกลุ่มของกกหนวดปลาดุกไบโอไทป์ ต้านทานไปยังสารในกลุ่มอื่น ๆ ที่มีตำแหน่งที่เกิด ปฏิกิริยาการยับยั้งภายในพืชที่แตกต่างกัน พบว่า การใช้สาร carfentrazone-ethyl (สารสัมผัสและ ทำลายเยื่อหุ้มเซลล์) และ propanil (สารที่ยับยั้ง กระบวนการสังเคราะห์ด้วยแสง ในระบบแสง II) ตามอัตราแนะนำ มีประสิทธิภาพในการควบคุม กกหนวดปลาดุกไบโอไทป์ที่ต้านทานพีน็อกซูแลม ได้จากข้อมูลการศึกษาในครั้งนี้เกษตรกรควรสับ เปลี่ยนหมุนเวียนการใช้สาร carfentrazone-ethyl และ propanil ซึ่งมีตำแหน่งการเกิดปฏิกิริยาการ ยับยั้งภายในพืชที่แตกต่างกัน เพื่อควบคุมและลด จำนวนประชากรของกกหนวดปลาดุกต้านทานสาร พีน็อกซูแลมในนาข้าวต่อไป
เอกสารอ้างอิง
วัชรา มณฑาทิพย์ จำเนียร ชมภู และทศพล พรพรหม. 2560. หญ้าแดง (Ischaemum rugosum Salisb.) ต้านทานต่อสารบีสไพริแบค-โซเดียมในข้าวนาหว่านนำ้ตม. น. 933-946. ใน.การประชุมวิชาการอารักขาพืชแห่งชาติ ครั้งที่ 13, 21-23 พฤศจิกายน 2560, ตรัง.
สุตานันท์ โพธิ์สวัสดิ์ สุรพล ฉินทกานันท์ จำเนียร ชมภู และทศพล พรพรหม. 2558. การศึกษาหญ้า ข้าวนกต้านทานสารบีสไพรีแบค-โซเดียมในนา หว่านน้ำตม. น. 541-550. ใน: การประชุมวิชาการอารักขาพืชแห่งชาติ ครั้งที่ 12, 20-22 พฤศจิกายน 2558, เชียงราย.
Begum, M., A.S. Juraimi, S.R. Syed Omar, A. Rajan and M. Azmi. 2008. Effect of Herbicides for the Control of Fimbristylis miliacea (L.) Vahl. in Rice. J. Agronomy. 7(3): 251-257.
Burrill, L.C., J. Cardienas and E. Locatelli. 1976. Field Manual for Weed Control Research. International Plant Protection Center, Oregon State University, Corvallis. 630 p.
Caton, B.P., M. Mortimer, J.E. Hill and D.E. Johnson. 2010. A Practical Field Guide to Weed of Rice in Asia. 2nd Ed. International Rice Research Institute. Los Banos, Laguna, Philippines. 118 p.
Chen, J., Q. Yu, M. Owen, H. Hanand S. Powles.2017. Dinitroaniline herbicide resistance in a multiple-resistant Lolium rigidum population. Pest Manag. Sci. 74(4): 925-932.
R Core Team. 2020. A language and environment for statistical computing. R Foundationfor Statistical Computing, Vienna, Austria. ISBN 3-900051-07-0. Available at : http://www.R r-project.org. Accessed: February 18, 2021.
Heap, I. 2022. International survey of herbicide resistant weeds. Available at: http://www. weedscience.org. Accessed: January 02, 2022.
Jiapeng, F., Y. Zhang, T. Liu, B. Yan, J. Li and L. Dong. 2019. Target-site and metabolic resistance mechanisms to penoxsulam in barnyardgrass (Echinochloa crus-galli (L.) P. Beauv). J. Agric. Food Chem. 67(29): 8085–8095.
Maneechote, C., S. Samanwong, X.Q. Zhang and S.B. Powles. 2005. Resistance to A Case inhibiting herbicides in population of sprangletop(Leptochloa chinensisL. Nees). Weed Sci. 53(3): 290-295.
Peng, Q., H. Heping, Y. Xia, B. Lianyang, Y. Qin and S.B. Powles. 2019. Quinclorac resistance in Echinochloa crus-galli from China. Rice Sci. 26(5): 300-308.
Phinyosak, R . and T . Pornprom. 2017. Resistance of Fimbristylis miliacea (L.) Vahl populations to acetolactate synthase inhibiting herbicides. pp.95. In: The 26th Asian-Pacific Weed Science Society Conference.19-22 September 2017, Kyoto, Japan.
Pornprom,T., P. Mahatamnuchoke and K. Usui. 2006. The role of alteredacetyl-CoA carboxylasein conferring resistance to fenoxaprop-P ethyl in Chinese sprangletop (Leptochloa chinensis L. Nees). Pest Manag. Sci. 62(11): 1109-1115.
Sakuma, M. 1998. Probit analysis of preference data. Applied Entomology and Zoology. 33(3): 339–347.
Schaedler, C.E., J.A. Noldin, D.S. Eberhardt, D. Agostinetto and N.R. Burgos. 2013. Globe fringerush (Fimbristylis miliacea) cross resistance to ALS-inhibitor herbicides under field conditions in irrigated rice in the south of Brazil. Planta Daninha. 31(4): 893-902.
Valverde, B.E., C.R. Riches and J.C. Caseley. 2000. Prevention and Management of Herbicide Resistant Weeds in Rice: Experiences from Central America with Echinochloa colona. Camara de Insumos Agropecuarios de Costa Rica, Jan Jose. Available at: http:// www.weedscience.org/Bernal/RiceRW.html. Accessed: January 1, 2022.
Zakaria, N., M.S. Ahmad-Hamdaniand A.S. Juraimi. 2018. Patterns of resistance to AHAS inhibitors in Limnocharis flava from Malaysia. Plant Prot. Sci. 54(1): 48–59
ดาวน์โหลด
เผยแพร่แล้ว
รูปแบบการอ้างอิง
ฉบับ
ประเภทบทความ
สัญญาอนุญาต
ลิขสิทธิ์ (c) 2022 วารสารวิชาการเกษตร

อนุญาตภายใต้เงื่อนไข Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
วารสารวิชาการเกษตร