การชักนำสารและกลไกที่เกี่ยวข้องกับความต้านทานต่อศัตรูพืชในยาสูบ ด้วยสารสกัดสคอพอเลตินจากผลยอบ้าน
DOI:
https://doi.org/10.14456/thaidoa-agres.2025.25คำสำคัญ:
สคอพอเลติน, ผลยอบ้าน, การสกัด, ความต้านทาน, สารกระตุ้นความต้านทานในพืชบทคัดย่อ
สคอพอเลตินเป็นสารทุติยภูมิที่พบในพืชหลายชนิด สามารถต้านอนุมูลอิสระและยับยั้งการเจริญของเชื้อจุลินทรีย์ งานวิจัยนี้มีจุดประสงค์เพื่อสกัดแยกสารสคอพอเลตินจากผลยอบ้าน (Morinda citrifolia L.) ของไทยและนำมาใช้ชักนำสารและกลไกที่เกี่ยวข้องกับความต้านทานต่อศัตรูพืชในต้นยาสูบ ทำการสกัดสารจากผลยอโดยวิธีการหมักแช่ด้วยเอทานอล จากนั้นแยกสารสกัดด้วยคอลัมน์โครมาโทกราฟีที่มีซิลิกาเจลเป็นเฟสอยู่กับที่ ชะด้วยสารละลายผสมเอทิลอะซิเตทและเฮกเซน (0-60%v/v) จากนั้นตรวจสอบส่วนย่อยที่แยกได้ด้วยวิธี TLC ภายใต้แสงยูวีที่ความยาวคลื่น 365 นาโนเมตร แล้วแยกส่วนย่อยที่มีสคอพอเลตินให้บริสุทธิ์ด้วยคอลัมน์โครมาโทกราฟี โดยใช้ 2% เมทานอลในไดคลอโรมีเทนเป็นตัวชะพบว่า สคอพอเลตินที่ได้มีผลึกเป็นสีเหลือง ยืนยันความเป็นสคอพอเลตินโดยใช้ TLC UV-visible spectroscopy Fourier transform infrared spectroscopy และ nuclear magnetic resonance spectroscopy โดยมีผลได้ 0.038+0.01% การทดสอบการชักนำความต้านทานด้วยวิธีฉีดสารสคอพอเลตินเข้มข้น 100 500 และ 1,000 ไมโครโมลาร์ ในใบยาสูบ พบว่า สามารถ
กระตุ้นการผลิตกรดซาลิซิลิก และเพิ่มกิจกรรมของเอนไซม์ฟีนิลอะลานีน แอมโมเนียไลเอส กลูคาเนส และเปอร์ออกซิเดส โดยมีรูปแบบการตอบสนองสูงสุดในช่วงเวลาที่แตกต่างกัน จึงมีความเป็นไปได้ว่าสคอพอเลตินที่สกัดจากผลยอบ้านของไทยมีคุณสมบัติเป็นสารกระตุ้นความต้านทานในต้นยาสูบผ่านการกระตุ้นโมเลกุลสัญญาณและเอนไซม์ที่สำคัญในระบบความต้านทานของพืช
เอกสารอ้างอิง
ณพัฐอร บัวฉุน. 2563. ฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระ และปริมาณฟีนอลลิกรวมของสารสกัดหยาบลูกยอ. วารสารวิจัยและพัฒนาวไลยอลงกรณ์ ในพระบรมราชูปถัมภ์. สาขาวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี. 15 (2) : 67-76.
อภิรักษ์ ศักดิ์เพ็ชร ดวงเพ็ญ ปัทมดิลก พีรธรรม เทียมเทียบรัตน์ ศักดิ์วิชัย อ่อนทอง และณุฉัตรา จันทร์สุวานิชย์. 2561. คุณภาพทางเคมีของผลยอ. วารสารการแพทย์แผนไทยและการแพทย์ทางเลือก. 16(2): 195-204.
Ali, M.B., K.W. Yu, E.J. Hahn and K.Y. Paek. 2005. Differential responses of anti-oxidants enzymes, lipoxygenase activity, ascorbate content and the production of saponins in tissue cultured root of mountain Panax ginseng C.A. Mayer and Panax quinquefolium L. in bioreactor subjected to methyl jasmonate stress. Plant Science. 169(1): 83–92.
Asadi-sardari, A., E. Mahdikhani-Moghadam and M. Zaki-Aghl. 2022. The biochemical changes in two moderately resistant and highly susceptible tomato cultivars at the later stages of Meloidogyne javanica infection. Nematology. 24(10): 1085-1103.
Ba, R., T. Alfa, F. Gbaguidi, K.M. Novidzro, K. Dotse, K. Koudouvo, U. Houngue, M.T. Donou Hounsode, K.H. Koumaglo, Y. Ameyapoh and L. Baba-Moussa. 2017. Maize fungal growth control with scopoletin of Cassava roots produced in Benin. International Journal of Microbiology. 2017(1): e5671942.
Beyer, S.F., A. Beesley, P.F.W. Rohmann, H. Schultheiss, U. Conrath and C.J.G., Langenbach. 2019. The Arabidopsis non-host defence-associated coumarin scopoletin protects soybean from Asian soybean rust. The Plant Journal. 99(3): 397–413.
Bushnell, O.A., M. Fukuda and T. Makinodian. 1950. The antibacterial properties of some plants found in Hawaii. Pacific Science. 4(3): 167-183.
Chanwun, T., N. Muhamad, N. Chirapongsatonkul and N. Churngchow, 2013. Hevea brasiliensis cell suspension peroxidase: purification, characterization and application for dye decolorization. AMB Express. 3: 14.
Deenamo, N., A. Kuyyogsuy, K. Khompatara, T. Chanwun, K. Ekchaweng and N. Churngchow. 2018. Salicylic acid induces resistance in rubber tree against Phytophthora palmivora. International Journal of Molecular Sciences. 19(7): 1883.
Ding, P. and Y. Ding. 2020. Stories of salicylic acid: A plant defense hormone. Trends in Plant Science. 25(6): 549−565.
Dorey, S., F. Baillieul, M.A. Pierrel, P. Saindrenan, B. Fritig and S. Kauffmann. 1997. Spatial and temporal induction of cell death, defense genes, and accumulation of salicylic acid in tobacco leaves reacting hypersensitively to a fungal glycoprotein elicitor. Molecular Plant-Microbe Interactions. 10(5): 646–655.
Dos Santos, C. and O.L. Franco. 2023. Pathogenesis-related proteins (PRs) with enzyme activity activating plant defense responses. Plants. 12(11): 2226.
Du, H., Y. Sun, R. Yang, W. Zhang, C. Wan, J. Chen, İ. Kahramanoğlu and L. Zhu. 2021. Benzothiazole (BTH) induced resistance of Navel orange fruit and maintained fruit quality during storage. Journal of Food Quality. 2021(1): e6631507.
Ederli, L., L. Madeo, O. Calderini, C. Gehring, C. Moretti, R. Buonaurio, F. Paolocci and S. Pasqualini. 2011. The Arabidopsis thaliana cysteine-rich receptor-like kinase CRK20 modulates host responses to Pseudomonas syringae pv. tomato DC3000 infection. Journal of Plant Physiology. 168(15): 1784-1794.
Galán-Pérez, J.A., B. Gámiz and R. Celis. 2021. Determining the effect of soil properties on the stability of scopoletin and its toxicity to target plants. Biology and Fertility of Soils. 57(5): 643–655.
Huang, W., Y. Wang, X. Li and Y. Zhang. 2020. Biosynthesis and regulation of salicylic acid and N-hydroxypipecolic acid in plant immunity. Molecular Plant. 13(1): 31–41.
Iriti, M. and F. Faoro. 2008. Abscisic acid is involved in chitosan-induced resistance to tobacco necrosis virus (TNV). Plant Physiology and Biochemistry. 46(12): 1106–1111.
Jia, D.D., Z.Q. Lan and T. Wu. 2020. Ethylene is the key signal in the accumulation process of scopoletin in noni (Morinda citrifolia). Scientia Horticulturae. 261(17): 108980.
Kachroo, A., H. Liu, X. Yuan, T. Kurokawa and P. Kachroo, 2022. Systemic acquired resistance-associated transport and metabolic regulation of salicylic acid and glycerol-3-phosphate. Essays in Biochemistry. 66(5): 673–681.
Kidwai, M., I.Z. Ahmad and D. Chakrabarty. 2020. Class III peroxidase: An indispensable enzyme for biotic/abiotic stress tolerance and a potent candidate for crop improvement. Plant Cell Reports. 39(11): 1381–1393.
Kim, Y.J. and B.K. Hwang. 2000. Pepper gene encoding a basic pathogenesis-related 1 protein is pathogen and ethylene inducible. Physiologia Plantarum. 108(1): 51-60.
Motshakeri, M. and H.M. Ghazali. 2015. Nutritional, phytochemical and commercial quality of noni fruit: A multi-beneficial gift from nature. Trends in Food Science & Technology. 45(1): 118–129.
Li, Y.Z., X.H. Zheng, H.L. Tang, J.W. Zhu and J.M. Yang. 2003. Increase of β-1, 3-glucanase and chitinase activities in cotton callus cells treated by salicylic acid and toxin of Verticillium dahliae. Acta Botanica Sinica. 45(7): 802-808.
Oerke, E.C. and U. Steiner. 2025. Intra-leaf variability of incubation period sheds new light on the lifestyle of Cercospora beticola in sugar beets. Journal of Fungi. 11(3): 211.
Santos, T., J.R. Villanueva and C. Nombela, 1977. Production and catabolite repression of Penicillium italicum beta-glucanases. Journal of Bacteriology. 129(1): 52–58.
Su, B.N., A.D. Pawlus, H.A. Jung, W.J. Keller, J.L. McLaughlin and A.D. Kinghorn. 2005. Chemical constituents of the fruits of Morinda citrifolia (noni) and their antioxidant activity. Journal of Natural Products. 68(4): 592–595.
Wang, M.Y. and C. Su. 2001. Cancer preventive effect of Morinda citrifolia (Noni). Annals of the New York Academy of Sciences. 952(1): 161–168.
Yang S.C., T.I. Chen, K.Y. Li and T.C. Tsai. 2007. Change in phenolic compound content, reductive capacity and ACE inhibitory activity in noni juice during traditional fermentation. Journal of Food and Drug Analysis. 15(3): 290-298.
Zhang, H., Q. Huang, L. Yi, X. Song, L. Li, G. Deng, J. Liang, F. Chen, M. Yu and H. Long. 2021. PAL-mediated SA biosynthesis pathway contributes to nematode resistance in wheat. The Plant Journal. 107(3): 698–712.
ดาวน์โหลด
เผยแพร่แล้ว
รูปแบบการอ้างอิง
ฉบับ
ประเภทบทความ
สัญญาอนุญาต
ลิขสิทธิ์ (c) 2025 วารสารวิชาการเกษตร
อนุญาตภายใต้เงื่อนไข Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
วารสารวิชาการเกษตร
