การประเมินคุณสมบัติการต้านอนุมูลอิสระและสารออกฤทธิ์ทางชีวภาพจากสารสกัดเปลือกส้มโอในการยับยั้งเชื้อจุลินทรีย์ทางเครื่องสำอาง

ผู้แต่ง

  • ๋Jittarawadee Tanghiranrat faculty of science Suan dusit university
  • ขวัญจิต อิสระสุข
  • ปิยนุช พรมภมร
  • นิสุฎา อิ่มเสถียร
  • ณัฏฐรัตน์ ศรีบุรินทร์

คำสำคัญ:

การต้านอนุมูลอิสระ, สารออกฤทธิ์เชิงหน้าที่, เปลือกส้มโอ, การยับยั้งเชื้อจุลินทรีย์

บทคัดย่อ

การศึกษาครั้งนี้มีวัตถุประสงค์เพื่อศึกษาสภาวะที่เหมาะสมในการสกัดเปลือกส้มโอพันธุ์ขาวน้ำผึ้ง โดยเปรียบเทียบปัจจัยด้านความเข้มข้นของสารละลายเอทานอล (80, 90 และ 95 %,v/v) และอุณหภูมิการสกัด (60 และ 80องศาเซลเซียส) ที่มีผลต่อประสิทธิภาพการต้านออกซิเดชันและปริมาณสารออกฤทธิ์ทางชีวภาพแล้วจึงนำไปทดสอบประสิทธิภาพการยับยั้งเชื้อจุลินทรีย์ของสารสกัดสำหรับประสิทธิภาพการต้านออกซิเดชันทดสอบด้วยวิธี DPPH assay และ FRAP assay ตรวจสอบปริมาณฟลาโวนอยด์รวม และปริมาณฟีนอกลิกรวม ผลการทดลองพบว่าความเข้มข้นของตัวทำละลายและอุณหภูมิในการสกัดมีผลต่อประสิทธิภาพการต้านออกซิเดชันและปริมาณสารออกฤทธิ์ทางชีวภาพ โดยสภาวะที่เหมาะสมที่สุด คือ ความเข้นข้นเอทานอล 90 %(v/v) และอุณหภูมิในการสกัด 80 องศาเซลเซียสเนื่องจากได้สารสกัดที่มีกิจกรรมการต้านอนุมูลอิสระสูงที่สุด (ค่า EC50 = 2.53 mg EC50/g crude extract  และ FRAP value = 8.78 mg TE/g crude extract ) และได้ปริมาณสารออกฤทธิ์ทางชีวภาพสูง (ฟลาโวนอยด์รวม = 8.84 mg CE/g crude extract และปริมาณฟีนอกลิกรวม = 6.89 mg GAE/g crude extract) เมื่อนำสารสกัดดังกล่าวมาทดสอบประสิทธิภาพการยับยั้งเชื้อจุลินทรีย์ทางเครื่องสำอางโดยวิธี Agar well diffusion พบว่าสามารถยับยั้งเชื้อ Aspergillus niger ดีสุดรองลงมา คือ Staphylococcus aureus, Candida albicans, Pseudomonas aeruginosa และ Escherichia coli มีโซนการยับยั้งเท่ากับ 23,12.33±0.58,11.33±0.58, 9±1.00 และ 7.67±0.58 มิลลิเมตรตามลำดับ ดังนั้นสารสกัดจากเปลือกส้มโอจึงมีศักยภาพในการนำมาประยุกต์ใช้เป็นสารกันเสียจากธรรมชาติได้

เอกสารอ้างอิง

Ahmed, I. & Beg, AZ. (2001). Antimicrobial and phytochemical studies on 45 Indian medicinal plants against multi-drug resistant human pathogens. Journal of Ethnopharmacology. 74, 113-123.

Arumugam, A., Gunasekaran, N. & Perumal, S. (2013). Antimicrobial activity of crude extract of Citrus Hystrix and Citrus Maxima. International Journal of Pharmaceutical Sciences and Research. 4(1), 1-5.

Chen, Q., Hu, Z., Yan-Dong Yao, F. & Liang, H. (2016). Study of two-stage microwave extraction of essential oil and pectin from pomelo peels. Food Science and Technology. 66, 538-545.

Fidrianny, I., Sari, E. & Komar, R. (2016). Phytochemical content and antioxidant activities in different organs of pomelo (Citrus maxima [BURM.] MERR.) using 2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl and phosphomolybdenum assays. Asian Journal of Pharmaceutical and Clinical Research. 9(2), 185-190.

Ho, S.-C. & Lin, C.-C. (2008). Investigation of heat treating conditions for enhancing the anti-inflammatory activity of citrus fruit (Citrus reticulata) peels. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 56, 7976-7982.

Liu, S.-C. & Tsai, C.-W. (2012). Effects of heating time on the antioxidative capacities of citrus fruit (Citrus sinensis (L.) Osbeck) by-products. Food science and Technology Research. 18(4), 505–513.

Pichaiyongvongdee, S., Rattanapun, B. & Haruenkit, R. (2014). Total polyphenol content and antioxidant properties in different tissues of seven Pomelo (Citrus grandis (L.) Osbeck) cultivars. Journal of Kasetsart (Natural Sciences). 43(3), 989-996. (in Thai)

Pietta, P. G. (2000). Flavonoids as antioxidants. Journal of Natural Products. 63, 1035-1042.

Prior, RL., Wu, X. & Schaich, K. (2005). Standardized methods for the determination of antioxidant capacity and phenolics in foods and dietary supplements. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 53, 4290-4302.

Ratanasiriwat, P., Choiykoew, J., Ngamying, S. & Pienchob, P. (2017). Extraction procedure and antioxidant properties of crude extracts and essential oil from pumelo peel. RMUTTO Journal. 1-11. (in Thai)

Sharma, K., Ko, E. Y., Assefa, A. D., Ha, S., Hile, S. H., Lee, E. T. & Park, S. W. (2015). Temperature-dependent studies on the total phenolics, flavonoids, antioxidant activities, and sugar content in six onion varieties. Journal of Food and Drug Analysis. 23, 243-252.

Singh, A. & Navneet. (2017). Citrus maxima (Burm.)Merr. A traditional medicine: its antimicrobial potential and pharmacological update for commercial exploitation in herbal drugs – A review. International Journal of ChemTech Research. 10(5), 642-651.

Suklampoo, L., Thawai, C., Weethong, R., Champathong, W. & Wongwongsee, W. (2012). Antimicrobial activities of crude extracts from pomelo peel of Khao-nahm-peung and Khao-paen varieties. KMITL Science and Technology Journal. 12(1), 55-57. (in Thai)

Tananuwong, K. & Tewaruth, W. (2010). Extraction and application of antioxidants from black glutinous rice. LWT-Food Science and Technology. 43(3), 476-481.

Toh, J.J., Khoo, H.E. & Azrina, A. (2013). Comparison of antioxidant properties of pomelo [Citrus Grandis (L.) Osbeck] varieties. International Food Research Journal. 20(4), 1661-1668.

Turapra, B., Boonyarat, C., Chulikhit, Y. & Daodee, S. (2016). Determination of active constituents and antioxidative activity in Citrus maxima (Burm.) Merr. Isan Journal of Pharmaceutical Sciences. 11, 80-91. (in Thai)

Xu, G., Ye, X., Chen, J. & Liu, D. (2007). Effect of heat treatment on the phenolic compounds and antioxidant capacity of citrus peel extract. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 55, 330-335.

Zarina, Z. & Tan, S. Y. (2013). Determination of flavonoids in Citrus grandis (pomelo) peels and their inhibition activity on lipid peroxidation in fish tissue. International Food Research Journal. 20(1), 313-317.

Zhishen, J., Mengcheng, T. & Jianming, W. (1999). The determination of flavonoid content in mulberry and their scavenging effects on superoxide radicals. Food Chemistry. 64, 555-559.

ดาวน์โหลด

เผยแพร่แล้ว

2019-06-07

ฉบับ

ประเภทบทความ

บทความวิจัย (Research Article)