ประสิทธิภาพในการปกป้องของสารสกัดและส่วนที่ผ่านกระบวนการย่อยภายในร่างกายของบัวบกต่อเซลล์ลำไส้มนุษย์ที่ถูกเหนี่ยวนำให้เกิดภาวะการอักเสบ และภาวะเครียดออกซิเดชันด้วย IL-1β
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
สารก่อการอักเสบและอนุมูลอิสระเป็นสาเหตุและมีบทบาทสำคัญในการก่อให้เกิดโรคไม่ติดต่อเรื้อรังหลายชนิด การศึกษานี้มีวัตถุประสงค์เพื่อตรวจสอบประสิทธิภาพในการต้านการอักเสบและต้านอนุมูลอิสระของสารสกัด (CAE) และส่วนที่ผ่านกระบวนการย่อยภายในร่างกาย (BFC) ของบัวบกต่อเซลล์ลำไส้มนุษย์ (Caco-2) ที่ถูกเหนี่ยวนำให้เกิดภาวะการอักเสบและภาวะเครียดออกซิเดชันด้วย IL-1β ไทรเทอร์พีนอยด์ที่พบใน CAE และ BFC คือ เอเชียติค แอซิด (421 และ 185 ไมโครกรัมต่อกรัมน้ำหนักแห้งของตัวอย่างแห้ง) และ มาเดแคสสิค แอซิด (583 และ 285 ไมโครกรัมต่อกรัมน้ำหนักแห้งของตัวอย่างแห้ง) ฟลาโวนอยด์ที่พบใน CAE และ BFC คือ เควอซิทิน (1,632 และ 987 ไมโครกรัมต่อกรัมน้ำหนักแห้งของตัวอย่างแห้ง) และ แคมพ์เฟอรอล (749 และ 427 ไมโครกรัมต่อกรัมน้ำหนักแห้งของตัวอย่างแห้ง) เซลล์ลำไส้มนุษย์ถูกเลี้ยงด้วยCAE ที่ความเข้มข้น 250-1000 ไมโคกรัมต่อมิลลิลิตร หรือ BFC เป็นเวลา 4 ชั่วโมงก่อนจะถูกเหนี่ยวนำด้วย IL-1β ที่ความเข้มข้น 10 นาโนกรัมต่อมิลลิลิตร เป็นเวลา 24 ชั่วโมง ผลการศึกษาพบว่า Caco-2 cells ที่ได้รับ CAE ก่อนถูกเหนี่ยวนำด้วย IL-1β สามารถลดการหลั่ง IL-6, IL-8 and TNF-α และ ROS ได้อย่างมีนัยสำคัญทางสถิติ (p<0.05) และพบว่าเป็นไปในแบบแปรผันตรงกับความเข้มข้น นอกจากนั้นยังพบว่า BFC ก็ยังสามารถลด IL-6, IL-8 and TNF-α และ ROS ได้อย่างมีนัยสำคัญทางสถิติ (p<0.05) ใน Caco-2 cells ที่ถูกเหนี่ยวนำด้วย IL-1β ได้เช่นเดียวกัน ผลทั้งหมดนี้แสดงให้เห็นว่าสารสกัดจากบัวบกมีประสิทธิภาพในการต้านการอักเสบและภาวะเครียดออกซิเดชันและถึงแม้ว่าบัวบกจะถูกนำไปผ่านกระบวนการย่อยภายในร่างกาย ส่วนที่ผ่านกระบวนการย่อยของร่างกายก็ยังมีประสิทธิภาพเหล่านั้นอยู่ แต่อย่างไรก็ตามการศึกษานี้เป็นเพียงการศึกษาในหลอดทดลอง ดังนั้นเพื่อให้ได้ประโยชน์ทางด้านสุขภาพของบัวบกนั้นควรจะต้องมีการศึกษาในรูปแบบของสัตว์ทดลองและในมนุษย์ต่อไป
Article Details
เอกสารอ้างอิง
Romier-Crouzet B, Van De Walle J, During A, et al. Inhibition of inflammatory mediators by polyphenolic plant extracts in human intestinal Caco-2 cells. Food Chem Toxicol 2009; 47(6): 1221-30.
Aggarwal B, Shishodia S. Suppression of the nuclear factor-kappaB activation pathway by spice-derived phytochemicals: reasoning for seasoning. Ann NY Acad Sci 2004; 1030: 434-41.
Lang A, Lahav M, Sakhnini E, et al. Allicin inhibits spontaneous and TNF-alpha induced secretion of proinflammatory cytokines and chemokines from intestinal epithelial cells. Clin Nutr 2004 Oct; 23(5): 1199-208.
Van De Walle J, Hendrickx A, Romier B, et al. Inflammatory parameters in Caco-2 cells: effect of stimuli nature, concentration, combination and cell differentiation. Toxicol In Vitro 2010; 24(5): 1441-9.
Al-Sadi R YD, Dokladny K, Ma TY. Mechanism of IL-1beta-induced increase in intestinal epithelial tight junction permeability. J Immunol 2008; 180(8): 5653-61.
Liu RH. Health benefits of fruit and vegetables are from additive and synergistic combinations of phytochemicals. Am J Clin Nutr 2003; 78(3 Suppl): 517S-20S.
Aggarwal B. Nuclear factor-kappaB: the enemy within. Cancer Cell 2004; 6(3): 203-8.
Aggarwal BB, Shishodia S. Molecular targets of dietary agents for prevention and therapy of cancer. Biochem Pharmacol 2006; 71(10): 1397-421.
Aggarwal BB, Shishodia S, Sandur SK, et al. Inflammation and cancer: How hot is the link? Biochem Pharmacol 2006; 72(11): 1605-21.
Block G, Patterson B, Subar A. Fruit, vegetables, and cancer prevention: a review of the epidemiological evidence. Nutr Cancer 1992; 18(1): 1-29.
Gohil KJ, Patel JA, Gaijar AK. Pharmacological review on Centella asiatica: A potential herbal cure-all. Indian J Pharm Sci 2010; 72(5): 546-556.
Azis HA, Taher M, Ahmed AS, et al. In vitro and in vivo wound healing studies of methanolic fraction of Centella asiatica extract. S Afr J Bot 2017; 108: 163-174.
Somboonwong J, Kankaisre M, Tantisira B, et al. Wound healing activities of different extracts of Centella asiatica in incision and burn wound models: an experimental animal study. BMC Complement Altern Med 2012; 12(103): 1-7.
Park JH, Chol JY, Son DJ, et al. Anti-inflammatory effect of titrated extract of Centella asiatica in phthalic anhydride-induced allergic dermatitis animal model. Int J Mol Sci 2017; 18(4): 1-14.
Hamid IS, Widjaja NMR, Damayanti R. Anticancer activity of Centella asiatica leaves extract in benzo(a)pyrene-induced mice. Int J Pharmacogn Phytochem Res 2016; 8(1): 80-84.
Kumar S, Deori M, Elancheran R, et al. In vitro and in vivo antioxidant, anti-hyperlipidemic properties and chemical characterization of Centella asiatica (L.) extract. Front Pharmacol 2016; 7: 1-12.
Inamdar PK, Yeole RD, Ghogare AB, et al. Determination of biologically active constituents in Centella asiatica. J Chromatogr A 1996; 742(1-2): 127-30.
Jiang ZY, Zhang XM, Zhou J. New triterpenoids glycosides from Centella asiatica. Helvetica Chimica Acta 2005; 88: 297-303.
Ferruzzi MG, Lumpkin JL, Schwartz SJ, et al. Digestive Stability, micellarization, and uptake of beta-carotene isomers by Caco-2 human intestinal cells. J Agric Food Chem 2006; 54(7): 2780-5.
Muangnoi C, Sharif U, Ratnatilaka Na Bhuket P, et al. Protective effects of curcumin ester prodrug, curcumin diethyl disuccinate against H2O2-induced oxidative stress in human retinal pigment epithelial cells: potential therapeutic avenues for age-related macular degeneration. Int J Mol Sci 2019; 20: 3367.
Niamnuy C, Charoenchaitrakool M, Mayachiew P, et al. Bioactive compounds and bioactivities of Centella asiatica (L.) Urban prepared by different drying methods and conditions. Dry Technol 2013; 31(16): 2007-2015.
Walsh KR, Zhang YC, Vodovotz Y, et al. Stability and bioaccessibility of isoflavones from soy bread during in vitro digestion. J Agric Food Chem 2003; 51(16): 4603-9.
Zhang YJ, Gan RY, Li S, et al. Antioxidant phytochemicals for the prevention and treatment of chronic diseases. Molecules 2015; 20(12): 21138-56.
Santangelo C, Vari R, Scazzocchio B, et al. Polyphenols, intracellular signalling and inflammation. Ann Ist Super Sanita 2007; 43(4): 394-405.
Merken HM, Beecher GR. Liquid chromatographic method for the separation and quantification of prominent flavonoid aglycones. J Chromatogr A 2000; 897(1-2): 177-184.
Mairuae N, Cheepsunthorn P, Buranrat B. Anti-inflammatory and anti-oxidative effects of Centella asiatica extract in lipopolysaccharide-stimulated BV2 microglial cells. Pharmacogn Mag 2019; 15(60): 140-146.
Yun K-J, Kim J-Y, Kim J-B, et al. Inhibition of LPS-induced NO and PGE2 production by asiatic acid via NF-[kappa]B inactivation in RAW 264.7 macrophages: Possible involvement of the IKK and MAPK pathways. Int Immunopharmacol 2008; 8(3): 431-41.
Won JH, Shin JS, Park HJ, et al. Anti-inflammatory effects of madecassic acid via the suppression of NF-kappaB pathway in LPS-induced RAW 264.7 macrophage cells. Planta Med 2010; 76: 251-7.
Lee EJ, Ji GE, Sung MK. Quercetin and kaempferol suppress immunoglobulin E-mediated allergic inflammation in RBL-2H3 and Caco-2 cells. Inflamm Res 2010; 59(10): 847-54.
Nguyen T, Nioi P, Pickett CB. The Nrf2-Antioxidant ResponseElement Signaling Pathway and Its Activation by Oxidative Stress. J Biol Chem 2009; 284(20): 13291-5.
Hussin M, Abdul-Hamid A, Mohamad S, et al. Protective effect of Centella asiatica extract and powder on oxidative stress in rats. Food Chem 2007; 100(2): 535-41.
Lee M, Kim S, Yang H, et al. Asiatic acid derivatives protect primary cultures of rat hepatocytes against carbon tetrachloride-induced injury via the cellular antioxidant system. Nat Prod Commun 2009; 4(6): 765-8.
Yokomizo A, Moriwaki M. Effects of uptake of flavonoids on oxidative stress induced by hydrogen peroxide in human intestinal Caco-2 cells. Biosci Biotechnol Biochem 2006; 70(6): 1317-24.
Chitchumroonchokchai C, Schwartz SJ, Failla ML. Assessment of lutein bioavailability from meals and a supplement using simulated digestion and Caco-2 human intestinal cells. J Nutr 2004; 134(9): 2280-2286.
Muangnoi C, Chingsuwanrote P, Praengamthanachoti P, et al. Moringa oleifera pod inhibits inflammatory mediator production by lipopolysaccharide-stimulated RAW 264.7 murine macrophage cell lines. Inflammation 2012; 35(2): 1-11.
