ผลการปกป้องของสารสกัดและส่วนที่ผ่านกระบวนการย่อยของฟักข้าวต่อเซลล์จอประสาทตาที่ถูกเหนี่ยวนำให้เกิดความเสียหายจากภาวะเครียดออกซิเดชันด้วยไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์

Main Article Content

ธนพร มั่นสุข
พรพรรณ สุขบุญ
เหรียญทอง พุ่มสวย
ศิริพร ตันติโพธิ์พิพัฒน์
ชวัลพัชร เมืองน้อย

บทคัดย่อ

ภาวะจอประสาทตาเสื่อมตามอายุ คือภาวะที่เกิดความเสื่อมของจุดรับภาพชัดที่ชั้นเรตินาส่งผลให้การมองเห็นบกพร่องและตาบอดได้ ภาวะเครียดออกซิเดชันของเซลล์จอประสาทตาเป็นสาเหตุหลักของการเกิดภาวะจอประสาทตาเสื่อมตามอายุ ฟักข้าวมีสารพฤกษเคมีหลายชนิดที่มีฤทธิ์ในการต้านอนุมูลอิสระ การศึกษานี้มีวัตถุประสงค์เพื่อศึกษาประสิทธิผลของสารสกัดและส่วนที่ผ่านกระบวนการย่อยของฟักข้าวต่อเซลล์จอประสาทตาที่ถูกเหนี่ยวนำให้เกิดความเสียหายจากภาวะเครียดออกซิเดชัน เซลล์จอประสาทตามนุษย์ถูกเลี้ยงด้วยสารสกัดหรือส่วนที่ผ่านกระบวนการย่อยภายในร่างกายของฟักข้าว เป็นเวลา 24 ชั่วโมง และถูกเหนี่ยวนำให้เกิดความเสียหายจากภาวะเครียดออกซิเดชัน ผลการศึกษาพบว่า ทั้งสารสกัดและส่วนที่ผ่านกระบวนการย่อยของฟักข้าวสามารถป้องกันเซลล์จอประสาทตาที่ถูกเหนี่ยวนำให้เกิดความเสียหายจากภาวะเครียดออกซิเดชันได้ โดยการลดระดับของอนุมูลอิสระภายในเซลล์อย่างมีนัยสำคัญทางสถิติ (p < 0.05) ผลเหล่านี้แสดงให้เห็นว่า สารสกัดฟักข้าวสามารถปกป้องเซลล์จอประสาทตาจากการเหนี่ยวนำให้เกิดความเสียหายจากภาวะเครียดออกซิเดชันซึ่งเป็นสาเหตุของการเกิดภาวะจอประสาทตาเสื่อมได้ และส่วนของฟักข้าวที่ผ่านกระบวนการย่อยของร่างกายแล้วก็ยังสามารถป้องกันเซลล์จอประสาทตาจากการเหนี่ยวนำให้เกิดความเสียหายจากภาวะเครียดออกซิเดชันได้ อย่างไรก็ตาม การศึกษานี้เป็นเพียงการศึกษาในหลอดทดลองเท่านั้น ประสิทธิผลของฟักข้าวควรมีการศึกษาต่อในสัตว์ทดลองและในมนุษย์เพื่อยืนยันศักยภาพในการปกป้องการเกิดภาวะจอประสาทตาเสื่อมตามอายุ

Article Details

How to Cite
มั่นสุข ธ. ., สุขบุญ พ. ., พุ่มสวย เ. ., ตันติโพธิ์พิพัฒน์ ศ. ., & เมืองน้อย ช. (2024). ผลการปกป้องของสารสกัดและส่วนที่ผ่านกระบวนการย่อยของฟักข้าวต่อเซลล์จอประสาทตาที่ถูกเหนี่ยวนำให้เกิดความเสียหายจากภาวะเครียดออกซิเดชันด้วยไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์. วารสารพิษวิทยาไทย, 39(1), 22–36. สืบค้น จาก https://li01.tci-thaijo.org/index.php/ThaiJToxicol/article/view/263325
บท
บทความวิจัย

References

Mitchell P, Liew G, Gopinath B, et al. Age-related macular degeneration. Lancet 2018; 392: 1147–59.

Khotcharrat R, Patikulsila D, Md H, et al. Epidemiology of age-related macular degeneration among the elderly population in thailand. J Med Assoc Thai 2015; 98(8): 790-7.

Wong WL, Su X, Li X, et al. Global prevalence of age-related macular degeneration and disease burden projection for 2020 and 2040: a systematic review and meta-analysis. Lancet Global Health 2014; 2: 106-16.

Ammar MJ, Hsu J, Chiang A, et al. Age-related macular degeneration therapy: a review. Curr Opin Ophthalmol 2020; 31: 215–21.

Stahl A. The diagnosis and treatment of age-related macular degeneration. Dtsch Arztebl Int 2020; 117(29–30): 513–20.

Somasundaran S, Constable IJ, Mellough CB, et al. Retinal pigment epithelium and age-related macular degeneration: a review of major disease mechanisms. Clin Exp Ophthalmol 2020; 48: 1043–56.

Bellezza I, Giambanco I, Minelli A, et al. Nrf2-Keap1 signaling in oxidative and reductive stress. Biochim Biophys Acta Mol Cell Res 2018; 1865(5): 721–33.

Kyosseva S V. Targeting MAPK signaling in age-related macular degeneration. Ophthalmol Eye Dis 2016; 8: 23–30.

Rohowetz LJ, Kraus JG, Koulen P. Reactive oxygen species-mediated damage of retinal neurons: drug development targets for therapies of chronic neurodegeneration of the retina. Int J Mol Sci 2018; 19: 3362.

Muangnoi C, Phumsuay R, Jongjitphisut N, et al. Protective effects of a lutein ester prodrug, lutein diglutaric acid, against H2O2-induced oxidative stress in human retinal pigment epithelial cells. Int J Mol Sci 2021; 22(9): 4722.

Biswal MR, Justis BD, Han P, et al. Daily zeaxanthin supplementation prevents atrophy of the retinal pigment epithelium (RPE) in a mouse model of mitochondrial oxidative stress. PLoS One 2018; 13(9): e0203816.

Kha TC, Nguyen MH, Roach PD, et al. Gac fruit: nutrient and phytochemical composition, and options for processing. Food Rev Int 2013; 29(1): 92–106.

Chuyen HV., Nguyen MH, Roach PD, et al. Gac fruit (momordica cochinchinensis spreng.): a rich source of bioactive compounds and its potential health benefits. Int J Food Sci Technol 2015; 50: 567–77.

Do TVT, Fan L, Suhartini W, et al. Gac (momordica cochinchinensis spreng) fruit: a functional food and medicinal resource. J Funct Foods 2019; 62: 103512.

Sukboon P, Tuntipopipat S, Praengam K. Ethanol extract of aril and pulp from momordica cochinchinensis fruit exhibits anti-inflammatory effect in LPS-induced macrophage RAW264.7 cells. Thai J Toxicol 2562; 34(1): 71–90.

Abdullah Al-Awadi SJ. Solvents extraction efficiency for lycopene and β-carotene of gac fruit (momordica cochinchinensis, spreng) cultivated in Iraq. Biosci Res 2017; 14(4): 788–800.

Dordai L, Simedru D, Cadar O, et al. Simulated gastrointestinal digestion of nutritive raw bars: assessment of nutrient bioavailability. Foods 2023; 12(12): 2300.

Ferruzzi MG, Lumpkin JL, Schwartz SJ, et al. Digestive stability, micellarization, and uptake of β-carotene isomers by Caco-2 human intestinal cells. J Agric Food Chem 2006; 54(7): 2780–5.

Ghasemi M, Turnbull T, Sebastian S, et al. The mtt assay: utility, limitations, pitfalls, and interpretation in bulk and single-cell analysis. Int J Mol Sci 2021; 22(23): 12827.

Aranda A, Sequedo L, Tolosa L, et al. Dichloro-dihydro-fluorescein diacetate (DCFH-DA) assay: a quantitative method for oxidative stress assessment of nanoparticle-treated cells. Toxicol In Vitro 2013; 27(2): 954–63.

Huang D, Ou B, Hampsch-Woodill M, et al. High-throughput assay of oxygen radical absorbance capacity (ORAC) using a multichannel liquid handling system coupled with a microplate fluorescence reader in 96-well format. J Agric Food Chem 2002; 50(16): 4437–44.

Cao G, Prior RL. Measurement of oxygen radical absorbance capacity in biological samples. Methods Enzymol 1999; 299: 50-62.

Benzie IFF, Strain JJ. The ferric reducing ability of plasma (FRAP) as a measure of "Antioxidant Power": the FRAP assay. Anal Biochem 1996; 239: 70-6.

Kedare SB, Singh RP. Genesis and development of DPPH method of antioxidant assay. J Food Sci Technol 2011; 48: 412–22.

Evans MD, Dizdaroglu M, Cooke MS. Oxidative DNA damage and disease: induction, repair and significance. Mutat Res 2004; 567: 1–61.

Chen M, Luo C, Zhao J, et al. Immune regulation in the aging retina. Prog Retin Eye Res 2019; 69: 159–72.

Datta S, Cano M, Ebrahimi K, et al. The impact of oxidative stress and inflammation on RPE degeneration in non-neovascular AMD. Prog Retin Eye Res 2017; 60: 201–18.

Hernández-Zimbrón LF, Zamora-Alvarado R, Ochoa-De La Paz L, et al. Age-related macular degeneration: new paradigms for treatment and management of AMD. Oxid Med Cell Longev 2018; 2018: 8374647.

Bonilha VL. Age and disease-related structural changes in the retinal pigment epithelium. Clin Ophthalmol 2008; 2(2): 413-424.

Hanus J, Anderson C, Wang S. RPE necroptosis in response to oxidative stress and in AMD. Ageing Res Rev 2015; 24: 286–98.

Caceres PS, Rodriguez-Boulan E. Retinal pigment epithelium polarity in health and blinding diseases. Curr Opin Cell Bio 2020; 62: 37–45.

Chiu CJ, Chang ML, Zhang FF, et al. The relationship of major american dietary patterns to age-related macular degeneration. Am J Ophthalmol 2014; 158(1): 118-127.

Aoki H, Minh Kieu NT, Kuze N, et al. Carotenoid pigments in gac fruit (momordica cochinchinensis spreng). Biosci Biotechnol Biochem 2002; 66(11): 2479–82.

El-Agamey A, Lowe GM, McGarvey DJ, et al. Carotenoid radical chemistry and antioxidant/pro-oxidant properties. Arch Biochem Biophys 2004; 430: 37–48.

Stahl W. Macular carotenoids: lutein and zeaxanthin. Dev Ophthalmol 2005; 38: 70–88.

Arunkumar R, Gorusupudi A, Bernstein PS. The macular carotenoids: a biochemical overview. Biochim Biophys Acta Mol Cell Biol Lipids 2020; 1865: 158617.

Tuj Johra F, Kumar Bepari A, Tabassum Bristy A, et al. A mechanistic review of -carotene, lutein, and zeaxanthin in eye health and disease. Antioxidants 2020; 9(11): 1046.

Müller-Maatsch J, Sprenger J, Hempel J, et al. Carotenoids from gac fruit aril (momordica cochinchinensis [lour.] spreng.) are more bioaccessible than those from carrot root and tomato fruit. Food Res Int 2017; 99(Pt 2): 928–35.

Arunkumar R, Gorusupudi A, Bernstein PS. The macular carotenoids: a biochemical overview. Biochim Biophys Acta Mol Cell Biol Lipids 2020; 1865(11): 158617.

Bone RA, Landrum JT, Dixon Z, et al. Lutein and zeaxanthin in the eyes, serum and diet of human subjects. Exp Eye Res 2000; 71(3): 239–45.

Pintea A, Ruginǎ DO, Pop R, et al. Xanthophylls protect against induced oxidation in cultured human retinal pigment epithelial cells. J Food Comp Anal 2011; 24(6): 830–6.

Koraneeyakijkulchai I, Phumsuay R, Thiyajai P, et al. Anti-inflammatory activity and mechanism of sweet corn extract on Il-1β-induced inflammation in a human retinal pigment epithelial cell line (ARPE-19). Int J Mol Sci. 2023; 24(3): 2462.

Zhang DD. Mechanistic studies of the Nrf2-Keap1 signaling pathway. Drug Metab Rev 2006; 38(4): 769–89.