การวิเคราะห์ T lymphocyte subpopulation ในโคพันธุ์ผสมที่เป็นโรค Theileriosis แบบไม่แสดงอาการ

Main Article Content

ธีรวินท์ บัวมา
จิรกฤต แซ่ตั้ง
สุรศักดิ์ สังขทัต ณ อยุธยา

บทคัดย่อ

โรค Theileriosis เกิดจากเชื้อปรสิตที่เรียกว่า Theileria spp. เชื้อปรสิตสามารถอาศัยอยู่บนเม็ดเลือดขาวและเม็ดเลือดแดง โคพื้นเมืองที่ติดเชื้อมักไม่แสดงอาการให้เห็นอย่างเด่นชัด อาจเนื่องมาจากการทำงานของเซลล์ในระบบภูมิคุ้มกัน การทำงานของ CD4+ cells ส่งผลกระตุ้นการทำงาน CD8+ cells ให้ทำหน้าที่เกี่ยวกับการกำจัดเซลล์ที่ติดเชื้อ ผลจากการทำงานของเซลล์ในระบบภูมิคุ้มกันก่อให้เกิดอาการความผิดปกติต่างๆ ดังที่กล่าวมาแล้ว ขณะที่ Tregs มีหน้าที่ในการยับยั้งการตอบสนองของเซลล์ในระบบภูมิคุ้มกัน เช่น CD4+ cells และ CD8+ cells เป็นต้น การทำงานของเซลล์ Tregs ในโคที่เป็นโรค Theileriosis ยังไม่มีรายงานที่ชัดเจน การศึกษาครั้งนี้มีวัตถุประสงค์เพื่อดูสัดส่วนของ CD4+ cells CD8+ cells และ Tregs ในโคที่ติดเชื้อ Theileria spp. แบบไม่แสดงอาการ โคพื้นเมืองที่ไม่แสดงอาการป่วย จะถูกเก็บเลือดมาตรวจทางโลหิตวิทยา ชีวเคมี พยาธิในเม็ดเลือดและสัดส่วนของเซลล์ลิมโฟไซต์ ผลการศึกษาพบว่า โคพื้นเมืองที่มีการติดเชื้อปรสิต Theileria spp. มีผลเลือดทางโลหิตวิทยาและชีวเคมีที่อยู่ในระดับปกติ สัดส่วนของ CD4+ cells และ CD8+ cells มีระดับที่ลดลงเล็กน้อย ขณะที่สัดส่วนของ Tregs มีระดับที่ไม่เปลี่ยนแปลง เมื่อเปรียบเทียบกับสัดส่วนของเซลล์ลิมโฟไซต์ของโคที่ไม่มีการติดเชื้อและได้มีการรายงานไว้ก่อนหน้านี้ การที่สัดส่วนของ CD4+ cells และ CD8+ cells มีระดับที่ลดลง อาจเป็นผลมาจากกลไกการตอบสนองของภูมิคุ้มกันที่ไม่ผ่านการทำงานของ Tregs

Article Details

รูปแบบการอ้างอิง
บัวมา ธ., แซ่ตั้ง จ. และ สังขทัต ณ อยุธยา ส. (2023) “การวิเคราะห์ T lymphocyte subpopulation ในโคพันธุ์ผสมที่เป็นโรค Theileriosis แบบไม่แสดงอาการ”, สัตวแพทย์มหานครสาร, 18(1), น. 31–40. available at: https://li01.tci-thaijo.org/index.php/jmvm/article/view/257883 (สืบค้น: 12 ธันวาคม 2025).
ประเภทบทความ
บทความวิจัย

เอกสารอ้างอิง

Abbott, J. R. et al. 2005. Rapid and Long-Term Disappearance of CD4+ T Lymphocyte Responses Specific for Anaplasma Marginale Major Surface Protein-2 (MSP2) in MSP2 Vaccinates following Challenge with Live A. marginale1. The Journal of Immunology 174: 6702-6715.

Agina, O. et al. 2020. Clinical Pathology, Immunopathology and Advanced Vaccine Technology in Bovine Theileriosis: A Review.

Agina, O. A. et al. 2021. Molecular detection of Theileria species, Anaplasma species, Candidatus Mycoplasma haemobos, Trypanosoma evansi and first evidence of Theileria sinensis-associated bovine anaemia in crossbred Kedah-Kelantan x Brahman cattle. BMC Veterinary Research 17: 246.

Ahmed, J. 2002. The role of cytokines in immunity and immunopathogenesis of pirolasmoses. Parasitology Research 88: S48-S50.

Ahmed, J. S., E. J. Glass, D. A. Salih, and U. Seitzer. 2008. Review: Innate immunity to tropical theileriosis. Innate Immunity 14: 5-12.

Almazán, C., R. C. Scimeca, M. V. Reichard, and J. Mosqueda. 2022. Babesiosis and Theileriosis in North America. Pathogens 11 Accessed Date Accessed.| doi:DOI|

Altangerel, K. et al. 2011. MOLECULAR PREVALENCE OF DIFFERENT GENOTYPES OF THEILERIA ORIENTALIS DETECTED FROM CATTLE AND WATER BUFFALOES IN THAILAND. The Journal of Parasitology 97: 1075-1079.

Ayadi, O., M. Gharbi, and M. Benchikh-Elfegoun. 2016. Haematological and biochemical indicators of tropical theileriosis diseased cattle in wilaya of Sétif (North East Algeria). Journal of parasitic diseases 41.

Aziz, N., M. Maksudi, and Y. Prakoso. 2019. Correlation between hematological profile and theileriosis in Bali cattle from Muara Bulian, Jambi, Indonesia. Veterinary World 12: 1358-1361.

Calder, P. C. 2013. Feeding the immune system. Proceedings of the Nutrition Society 72: 299-309.

Ingvartsen, K. L., and K. Moyes. 2013. Nutrition, immune function and health of dairy cattle. Animal 7: 112-122.

Kim, Y.-M. et al. 2016. Reference ranges of hematology and lymphocyte subsets in healthy Korean native cattle (Hanwoo) and Holstein dairy cattle. Animal Science Journal 87: 796-801.

Preston, P. M. et al. A dual role for immunosuppressor mechanisms in infection with Theileria annulata: well-regulated suppressor macrophages help in recovery from infection; profound immunosuppression promotes non-healing disease.

Rakwong, P., N. Keawchana, R. Ngasaman, and K. Kamyingkird. 2022. Theileria infection in bullfighting cattle in Thailand.

Rauf, U. et al. 2020. Humoral and Cell-Mediated Immune Response Validation in Calves after a Live Attenuated Vaccine of Babesia bigemina. Pathogens 9: 936.

Sajiki, Y. et al. 2020. The Suppression of Th1 Response by Inducing TGF-β1 From Regulatory T Cells in Bovine Mycoplasmosis. Frontiers in Veterinary Science 7: 1031.

Torina, A. et al. 2020. Immune Response to Tick-Borne Hemoparasites: Host Adaptive Immune Response Mechanisms as Potential Targets for Therapies and Vaccines. International Journal of Molecular Sciences 21: 8813.

Veiga-Parga, T. 2016. Regulatory T Cells and Their Role in Animal Disease. Veterinary Pathology 53: 737-745.

Velavan, T. P., and O. Ojurongbe. 2011. Regulatory T cells and parasites.

Yang, J., A. Pemberton, W. I. Morrison, and T. Connelley. 2018. Granzyme B Is an Essential Mediator in CD8+ T Cell Killing of Theileria parva-Infected Cells. Infection and Immunity 87: e00386-00318.