ปริมาณสารฟีนอลิกรวม การวิเคราะห์ฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระและฤทธิ์ยับยั้งเชื้อแบคทีเรีย จากสารสกัดดอกแคหัวหมู
DOI:
https://doi.org/10.14456/kcsj.2024.7คำสำคัญ:
แคหัวหมู, ความสามารถในการต้านอนุมูลอิสระ, ความสามารถในการยับยั้งเชื้อจุลินทรีย์บทคัดย่อ
ดอกแคหัวหมู (Markhamia stipulate Seem.) เป็นดอกไม้ที่นิยมนำมาบริโภคเป็นอาหารและใช้ประโยชน์ในการดูแลรักษาปัญหาสุขภาพต่างๆ ในทางการแพทย์แผนไทย งานวิจัยนี้มีวัตถุประสงค์เพื่อศึกษาฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระและฤทธิ์ต้านเชื้อแบคทีเรียของสารสกัดจากดอกแคหัวหมูที่สกัดด้วยตัวทำละลาย 50% เอทานอล โดยการหาปริมาณฟีนอกลิกรวมด้วยวิธี Folin-Ciocalteu และวิเคราะห์ฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระด้วยวิธี 2,2-diphenyl-1-picryl-hydrazyl-hydrate assay (DPPH assay) และ Ferric reducing antioxidant power assay (FRAP assay) และนอกจากนี้ยังทำการศึกษาฤทธิ์ยับยั้งเชื้อแบคทีเรียด้วยวิธี Broth dilution เพื่อหาค่าความเข้มข้นต่ำสุดที่สามารถยับยั้งเชื้อแบคทีเรีย (MIC) และค่าความเข้มข้นต่ำสุดที่ฆ่าเชื้อแบคทีเรีย (MBC) โดยทำศึกษาการยับยั้งเชื้อแบคทีเรีย Staphylococcus aureus, Streptococcus mutans, Bacillus subtilis และ Escherichia coli จากผลการศึกษาพบว่าปริมาณสารฟีนอลิกรวมทั้งหมดเท่ากับ 53.71±0.002 ไมโครกรัมกรดแกลลิกต่อ 1 มิลลิลิตรของตัวอย่าง ผลการศึกษาฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระด้วยวิธี DPPH และ FRAP assay แสดงผลด้วยค่า IC50 มีค่าเท่ากับ 43.56±0.044 มิลลิกรัมต่อมิลลิลิตร และ 38.43±0.013 มิลลิกรัมต่อมิลลิลิตร ตามลำดับ และจากผลการศึกษาฤทธิ์ยับยั้งเชื้อแบคทีเรียพบว่าสารสกัดจากดอกแคหัวหมูมีค่า MIC และ MBC อยู่ในช่วง 1.56 ถึง 200 มิลลิกรัมต่อมิลลิลิตร จากผลการวิจัยแสดงให้เห็นว่าสารสกัดจากดอกแคหัวหมูมีสารออกฤทธิ์ทางชีวภาพที่มีฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระและฤทธิ์ยับยั้งเชื้อแบคทีเรียก่อโรค อย่างไรก็ตามต้องมีการศึกษาเพิ่มเติมด้วยการแยกองค์ประกอบของสารต่อไป
Downloads
References
Zhang Y-J, Gan R-Y, Li S, Zhou Y, Li A-N, Xu D-P, et al. Antioxidant phytochemicals for the prevention and treatment of chronic diseases. Molecules. 2015;20(12):21138–56. Available from: http://dx.doi.org/10.3390/molecules201219753
Nowak D, Goslinski M, Kłebukowska L. Antioxidant and antimicrobial properties of selected fruit juices. Plant Foods Hum Nutr. 2022;77(3):427–35. Available from: http://dx.doi.org/10.1007/s11130-022-00983-2
Newman DJ, Cragg GM. Natural products as sources of new drugs over the last 25 years. J Nat Prod [Internet]. 2007;70(3):461–77. Available from: http://dx.doi.org/10.1021/np068054v
Abbasi S, Gharaghani S, Benvidi A, Latif A. Identifying the novel natural antioxidants by coupling different feature selection methods with nonlinear regressions and gas chromatography-mass spectroscopy. Microchem J [Internet]. 2018;139:372–9. Available from: http://dx.doi.org/10.1016/j.microc.2018.03.012
Goswami N, Chatterjee S. Assessment of free radical scavenging potential and oxidative DNA damage preventive activity of Trachyspermum ammi L. (carom) and Foeniculum vulgare Mill. (fennel) seed extracts. Biomed Res Int. 2014;2014:582767. Available from: http://dx.doi.org/10.1155/2014/582767
Bardaweel SK, Tawaha KA, Hudaib MM. Antioxidant, antimicrobial and antiproliferative activities of Anthemis palestina essential oil. BMC Complement Altern Med. 2014;14(1):297. Available from: http://dx.doi.org/10.1186/1472-6882-14-297
Yaraksa N. Antioxidant Activity of Markhamia stipulate, Caryota maxima, Amphineurion marginatum Extracts and Cytotoxicity Effect on Human Dermal Fibroblast Cells. RMUTI Journal. 2019 [cited 2024 May 13];12(2):138–48. Available from: https://ph01.tci-thaijo.org/index.php/rmutijo/article/view/212880
Ribeiro DB, Santos Silva G, Dos Santos DR, Castro Costa AR, Braga Ribeiro E, Badea M, et al. Determination of the antioxidant activity of samples of tea and commercial sources of vitamin C, using an enzymatic biosensor. Antioxidants (Basel). 2021;10(2):324. Available from: http://dx.doi.org/10.3390/antiox10020324
Papas AM. Other Antioxidants. In: Antioxidant Status, Diet, Nutrition, and Health. CRC Press; 2019. p. 231–48.
Devi WR, Singh SB, Singh CB. Antioxidant and anti-dermatophytic properties leaf and stem bark of Xylosma longifolium clos. BMC Complement Altern Med. 2013;13(1):155. Available from: http://dx.doi.org/10.1186/1472-6882-13-155
Afsar T, Khan MR, Razak S, Ullah S, Mirza B. Antipyretic, anti-inflammatory and analgesic activity of Acacia hydaspica R. Parker and its phytochemical analysis. BMC Complement Altern Med. 2015;15(1):136. Available from: http://dx.doi.org/10.1186/s12906-015-0658-8
Yaraksa N. Antibacterial activity against some human pathogenic bacteria and anti-inflammatory activity of five Thai medicinal plant extracts. CreSci. 2019 [cited 2024 May 14];11(1):1–10. Available from: https://ph01.tci-thaijo.org/index.php/snru_journal/article/view/130373
Hoque MM, Rattila S, Shishir MA, Bari ML, Inatsu Y, Kawamoto S. Antibacterial activity of ethanol extract of betel leaf (Piper betle L.) against some food borne pathogens. Banglad J Microbiol [Internet]. 2012 [cited 2024 May 14];28(2):58–63. Available from: https://www.banglajol.info/index.php/BJM/article/view/11817
Nie J-Y, Zhang Y, Li R, Jiang Z-T, Wang Y, Tan J, et al. Screening of radical scavenging activity and chemical constituents of the essential oil from star anise by ultra‐fast GC electronic nose coupled with DPPH, OH, and ABTS assays. J Food Process Preserv. 2021;45(1). Available from: http://dx.doi.org/10.1111/jfpp.15022
Kupina S, Fields C, Roman MC, Brunelle SL. Determination of total phenolic content using the folin-C assay: Single-laboratory validation, first action 2017.13. J AOAC Int. 2019;102(1):320–1. Available from: http://dx.doi.org/10.5740/jaoacint.18-0031
Kaisoon O, Siriamornpun S, Weerapreeyakul N, Meeso N. Phenolic compounds and antioxidant activities of edible flowers from Thailand. J Funct Foods. 2011;3(2):88–99. Availablefrom: http://dx.doi.org/10.1016/j.jff.2011.03.002
Phaiboon N, Pulbutr P, Sungthong B, Rattanakiat S. Effects of the ethanolic extracts of guava leaves, licorice roots and cloves on the cariogenic properties of streptococcus mutans. Pharmacogn J. 2019;11(5):1029–36.Availablefrom:http://dx.doi.org/10.5530/pj.2019.11.162
Torrungruang K. Antibacterial activity of mangosteen pericarp extract against cariogenic Streptococcus mutans. Chulalongkorn University Dental Journal. 2007;30(1):1–10. Available from: https://digital.car.chula.ac.th/cudj/vol30/iss1/1/
Mahadlek J, Tuntarawongsa S, Phaechamud T. Antioxidant activity and total phenolic contents of some Thai traditional formulation. Isan J Pharm Sci. 2017;13(1):97–105. Available from: https://he01.tci-thaijo.org/index.php/IJPS/article/view/88553
Balasundram N, Sundram K, Samman S. Phenolic compounds in plants and agri-industrial by-products: Antioxidant activity, occurrence, and potential uses. Food Chem. 2006;99(1):191–203. Available from: http://dx.doi.org/10.1016/j.foodchem.2005.07.042
Boulekbache-Makhlouf L, Slimani S, Madani K. Total phenolic content, antioxidant and antibacterial activities of fruits of Eucalyptus globulus cultivated in Algeria. Ind Crops Prod [Internet]. 2013;41:85–9. Available from: http://dx.doi.org/10.1016/j.indcrop.2012.04.019
Karnwal A. In vitro antibacterial activity of Hibiscus rosa sinensis, Chrysanthemum indicum, and Calendula officinalis flower extracts against Gram negative and Gram positive food poisoning bacteria. Advances in Traditional Medicine. 2022;22(3):607–19. Available from: http://dx.doi.org/10.1007/s13596-021-00562-x
Ibrahim MB, Kaushik N, Sowemimo AA, Odukoya OA. Review of the phytochemical and pharmacological studies of the genus Markhamia. Pharmacogn Rev. 2016;10(19):50–9.Available from: http://dx.doi.org/10.4103/0973-7847.176547
