ผลของสารกระตุ้นต่อการผลิตสารอะดีโนซีนและคอร์ไดเซปิน ของเห็ดถั่งเช่าสีทอง
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
การวิจัยนี้มีวัตถุประสงค์เพื่อศึกษาผลของสารกระตุ้นที่ระดับความเข้มข้นต่างกันต่อการเจริญของเส้นใย การเกิดดอก ลักษณะทางกายภาพของดอกเห็ด และการผลิตสารอะดีโนซีนและคอร์ไดเซปินของเห็ดถั่งเช่าสีทอง วางแผนการทดลองแบบสุ่มสมบูรณ์ (Completely Randomized Design; CRD) มี 9 สิ่งทดลองๆ ละ 3 ซ้ำ ประกอบด้วย สารสกัดยีสต์ที่ระดับความเข้มข้น 5 10 15 และ 20 กรัมต่อลิตร และสารละลายเมทิลจัสโมเนท 50 100 150 และ 200 ไมโครโมลาร์ และไม่เติมสารกระตุ้น (สิ่งทดลองควบคุม) พบว่าการเจริญของเส้นใยทุกสิ่งทดลองให้น้ำหนักสดของเส้นใยและเปอร์เซ็นต์น้ำหนักแห้งไม่แตกต่างกันอย่างมีนัยสำคัญทางสถิติ (p>0.05) ในขณะที่เส้นใยที่เพาะเลี้ยงบนสูตรอาหาร Modified of Potato Dextrose Broth (MPDB) MPDB 3 ที่เติมสารสกัดยีสต์ความเข้มข้น 10 กรัมต่อลิตร มีน้ำหนักแห้งของเส้นใยสูงกว่าสิ่งทดลองอื่นอย่างมีนัยสำคัญทางสถิติ (p<0.05) ดอกเห็ดที่เพาะเลี้ยงบนสูตรอาหาร Artificial Modified of Potato Dextrose Broth (A-MPDB) A-MPDB 6 ที่เติมสารละลายเมทิลจัสโมเนทความเข้มข้น 50 ไมโครโมลาร์ ส่งผลให้จำนวนดอก น้ำหนักสด และน้ำหนักแห้งสูงอย่างมีนัยสำคัญยิ่งทางสถิติ (p<0.01) เมื่อนำดอกเห็ดที่เพาะเลี้ยงบนสูตรอาหาร A-MPDB 6 ที่เติมสารละลายเมทิลจัสโมเนทความเข้มข้น 50 ไมโครโมลาร์ มาศึกษาคุณสมบัติทางกายภาพ พบว่า ดอกเห็ดมีค่าความสว่าง (L*) ค่าสีแดง (a*) ค่าสีเหลือง (b*) และค่า Hue angle เฉลี่ยเท่ากับ 70.46±2.00 18.29±0.52 49.59±1.56 และ 69.75±0.41 ตามลำดับ ในการศึกษาวิเคราะห์หาปริมาณสารออกฤทธิ์ทางชีวภาพ พบว่า ดอกเห็ดที่เพาะเลี้ยงบนสูตรอาหาร A-MPDB 6 ที่เติมสารละลายเมทิลจัสโมเนทความเข้มข้น 50 ไมโครโมลาร์ มีปริมาณอะดีโนซีนสูงสุด 47.73±6.78 มิลลิกรัมต่อ 100 กรัม และดอกเห็ดที่เพาะเลี้ยงบนสูตรอาหาร A-MPDB 7 ที่เติมสารละลายเมทิลจัสโมเนทความเข้มข้น 100 ไมโครโมลาร์ มีปริมาณคอร์ไดเซปินสูงสุด 326.45±34.28 มิลลิกรัมต่อ 100 กรัม
Article Details
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
เนื้อหาและข้อมูลในบทความที่ลงตีพิมพ์ใน Journal of Vocational Education in Agriculture ถือเป็นข้อคิดเห็นและความรับผิดชอบของผู้เขียนบทความโดยตรง ซึ่งกองบรรณาธิการวารสารไม่จำเป็นต้องเห็นด้วยหรือร่วมรับผิดชอบใดๆ
บทความ ข้อมูล เนื้อหา ฯลฯ ที่ได้รับการตีพิมพ์ใน Journal of Vocational Education in Agriculture ถือเป็นลิขสิทธิ์ของJournal of Vocational Education in Agriculture หากบุคคลหรือหน่วยงานใดต้องการนำทั้งหมดหรือส่วนหนึ่งส่วนใดไปเผยแพร่ต่อหรือเพื่อกระทำการใดๆ จะต้องได้รับอนุญาตเป็นลายลักษณ์อักษรจาก Journal of Vocational Education in Agriculture ก่อนเท่านั้น
References
Das, S. K., et al. (2010). Medicinal uses of the mushroom Cordyceps militaris: current state and prospects. Fitoterapia, 81(8), 961-968.
Tapingkae, T. (2018). Cultivation of cordyceps mushrooms as a profession. 3rd ed. Bangkok: Kehakaset. (in Thai)
Kitakaze, M., & Hori, M. (2000). Adenosine therapy: a new approach to chronic heart failure. Expert opinion on investigational drugs, 9(11), 2519-2535.
Ashraf, S. A., et al. (2020). Cordycepin for Health and Wellbeing: A Potent Bioactive Metabolite of an Entomopathogenic Cordyceps Medicinal Fungus and Its Nutraceutical and Therapeutic Potential. Molecules, 25(12), 2735.
Yun, Y. H., et al. (2003). Anti-diabetic Effects of CCCA, CMESS, and Cordycepin from Cordyceps militaris and the Immune Responses in Streptozotocin-induced Diabetic Mice. Natural Product Sciences, 9(4), 291-298.
Nakamura, K., et al. (2005). Effect of cordycepin (3'-deoxyadenosine) on hematogenic lung metastatic model mice. in vivo, 19, 137-141.
Li, C., et al. (2006). The composition of Hirsutella sinensis, anamorph of Cordyceps sinensis. Journal of Food Composition and Analysis, 19(8), 800-805.
Yu, H. M., et al. (2006). Comparison of protective effects between cultured Cordyceps militaris and natural Cordyceps sinensis against oxidative damage. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 54(8), 3132-3138.
Schmidt, K., et al. (2003). Screening of entomopathogenic Deuteromycetes for activities on targets involved in degenerative diseases of the central nervous system. Journal of Ethnopharmacology, 89(2-3), 251-260.
Lee, H. J., et al. (2012). The nucleoside antagonist cordycepin causes DNA double strand breaks in breast cancer cells. Investigational new drugs, 30(5), 1917-1925.
Dai, G., et al. (2001). CordyMax™ Cs-4 improves steady-state bioenergy status in mouse liver. The Journal of Alternative and Complementary Medicine, 7(3), 231-240.
Yoshikawa, N., et al. (2004). Antitumour activity of cordycepin in mice. Clinical and Experimental Pharmacology and Physiology, 31, S51-S53.
Weil, M. K., & Chen, A. P. (2011). PARP inhibitor treatment in ovarian and breast cancer. Current problems in cancer, 35(1), 7-50.
Kim, S. Y., et al. (2010). Optimum Conditions for Artificial Fruiting Body Formation of Cordyceps cardinalis. Mycobiology, 38(2), 133-136.
Lim, L., et al. (2012). Optimization of solid state culture conditions for the production of adenosine, cordycepin, and D-mannitol in fruiting bodies of medicinal caterpillar fungus Cordyceps militaris (L.:Fr.) Link (Ascomycetes). International journal of medicinal mushrooms, 14(2), 181-187.
Yosmethakun, R. & Singpoonga, N. (2018) Cordycepin and adenosine production form Cordyceps militaris in cereal medium. Agricultural Science Journal, 49(1), 168-171. (in Thai)
Subnugarn, S. and Hongsaeng, P. (2013) Influence of Growth Regulators on Micropropagation of Jerusalem Artichoke (Helianthus tuberosus L.). Rajabhat Agriculture Journal, 12(1), 1-11. (in Thai)
Prasartsin, P., et al. (2017). Enhancement of plumbagin production in cell suspension derived from hairy root of Plumbago indica L. by methyl jasmonate elicitation in B5 medium. Agricultural Science Journal, 48(1), 139-150. (in Thai)
Chaichana, N., & Dheeranupattana, S. (2012). Effects of methyl jasmonate and salicylic acid on alkaloid production from in vitro culture of Stemona sp. International Journal of Bioscience, Biochemistry and Bioinformatics, 2(3), 146-150.
Lu, M., et al. (2001). Effects of elicitation on the production of saponin in cell culture of Panax ginseng. Plant Cell Reports, 20(7), 674-677.
Jirapongpattana, R. et al. (2017). Effects of Jasmonic acid and Yeast Extract on Secondary Metabolite Contents in Shoot Culture of Dioscorea birmanica Prain & Burkill. Journal of Science and Technology, 25(3), 486-496. (in Thai)
Cheong, J. J. & Choi, Y. D. (2003). Methyl jasmonate as a vital substance in plants. Trends in genetics, 19(7), 409-413.
Jirapongpattana, R. (2016). Effects of Jasmonic acid and Yeast Extract on Secondary Metabolite Contents in Shoot Culture of Dioscorea birmanica Prain & Burkill. (Master thesis, Thammasart University). (in Thai)
Inyod, T., et al (2021). The Study of Optimum Growth Condition in Some Ectomycorrhizal Mushroom in Vitro. Naresuan Aariculture Journal, 18(1), 1-13. (in Thai)
Zeng, W. B., et al. (2014). Distribution of nucleosides in populations of Cordyceps cicadae. Molecules, 19(5), 6123-6141.
Zhang, Y. I. & Turner, J. G. (2008). Wound-induced endogenous jasmonates stunt plant growth by inhibiting mitosis. PLOS ONE, 3(11), e3699.
Qu, J., et al. (2011). A combination of elicitation and precursor feeding leads to increased anthocyanin synthesis in cell suspension cultures of Vitis vinifera. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 107, 261-269.
Chen, H. & Chen, F. (2000). Effects of yeast elicitor on the growth and secondary metabolism of a high-tanshinone-producing line of the Ti transformed Salvia miltiorrhiza cells in suspension culture. Process Biochemistry, 35(8), 837-840.
Chong, T. M., et al. (2005). Effective elicitation factors in Morinda elliptica cell suspension culture. Process Biochemistry, 40(11), 3397-3405.
Yu, K. W., et al. (2002). Jasmonic acid improves ginsenoside accumulation in adventitious root culture of Panax ginseng CA Meyer. Biochemical Engineering Journal, 11(2-3), 211-215.
Namdeo, A. G. (2007). Plant cell elicitation for production of secondary metabolites: a review. Pharmacognosy Reviews, 1(1), 69-79.
Rungruang, R., et al. (2015). The accumulation of total phenolic content and antioxidant activity in suspension culture of Glycine max by methyl jasmonate. Agricultural Science Journal, 46(3), 81-84. (in Thai)
Juengwatanatrakul, T., et al. (2011). Elicitation effect on production of plumbagin in in vitro culture of Drosera indica L. Journal of Medicinal Plants Research, 5(19), 4949-4953.