การศึกษาการยับยั้งเชื้อ Escherichia coli และ Salmonella Typhimurium ด้วยสารสกัดหยาบจากพืชสมุนไพรไทย 12 ชนิด และสารสกัดหยาบผสม
คำสำคัญ:
กระชาย, ทองพันชั่ง, โกฐน้ำเต้า, สารสกัดหยาบ, การฆ่าเชื้อแบคทีเรียบทคัดย่อ
งานวิจัยนี้มีวัตถุประสงค์เพื่อศึกษาฤทธิ์ของสารสกัดหยาบจากสมุนไพรไทย 12 ชนิด สกัดด้วยน้ำ และเอทานอล ในการยับยั้งเชื้อ Escherichia coli จำนวน 5 สายพันธุ์ และ Salmonella typhimurium จำนวน 1 สายพันธุ์ ทดสอบโดยใช้วิธี spot-on-lawn รวมทั้งศึกษาเวลาในการฆ่าเชื้อ และการเสริมฤทธิ์ยับยั้งแบคทีเรียด้วยสารสกัดหยาบผสม จากการทดสอบพบว่า สารสกัดหยาบจากรากของโกฐน้ำเต้า (Rheum palmatum L.) เหง้ากระชาย (Boesenbergia rotunda (L.) Mansf.) และต้นทองพันชั่ง (Rhinacanthus nasutus L.) ที่สกัดด้วยเอทานอล มีฤทธิ์ต้านเชื้อแบคทีเรียทดสอบได้ดีที่สุด โดยมีค่าความเข้มข้นต่ำสุดที่สามารถยับยั้งเชื้อได้ (Minimum Inhibitory Concentration; MIC) ในช่วง 0.19-0.78, 0.19-0.78 และ 0.19-1.56 มิลลิกรัมต่อมิลลิลิตร ตามลำดับ ความเร็วในการฆ่าเชื้อของสารสกัดที่ค่า MIC พบว่า สารสกัดหยาบโกฐน้ำเต้าสามารถฆ่าเชื้อแบคทีเรียทั้งสองชนิดได้มากกว่า 2 log CFU ต่อมิลลิลิตรภายในเวลา 12 ชั่วโมง การทดสอบความสามารถในการเสริมฤทธิ์ยับยั้งแบคทีเรียของสารสกัดหยาบกระชาย ทองพันชั่ง และโกฐน้ำเต้า ด้วยวิธี Checkerboard พบว่าทั้งสารสกัดหยาบกระชาย และสารสกัดหยาบทองพันชั่งสามารถเสริมฤทธิ์สารสกัดหยาบโกฐน้ำเต้า ในการยับยั้งเชื้อ E. coli O157H:7 และ S. typhimurium ATCC13311 ได้ โดย Fractional Inhibitory Concentration
Index (FICI) มีค่าเท่ากับ 0.5 ทั้งนี้ส่วนผสมของสารสกัดหยาบโกฐน้ำเต้า และสารสกัดหยาบกระชายที่ความเข้มข้น 0.09 และ 0.19 มิลลิกรัมต่อมิลลิลิตร สามารถฆ่าเชื้อ E. coli O157H:7 และ S. typhimurium ATCC13311 ได้มากกว่า 2 log CFU ต่อมิลลิลิตร ภายในเวลา 6 ชั่วโมง
เอกสารอ้างอิง
Adnan, M., Bibi, R., Mussarat, S., Tariq, A., & Shinwari, Z. K. (2014). Ethnomedicinal and phytochemical review of Pakistan medicinal plants used as antibacterial agents against Escherichia coli. Annals of Clinical Microbiology and Antimicrobials, 13(1), 1-18.
Ahmad , M. I., Keach, J. E., Behl, T., & Panichayupakaranant, P. (2019). Synergistic effect of α-mangostin on antibacterial activity of tetracycline, erythromycin, and clindamycin against acne involved bacteria. Chinese Herbal Medicines, 11(4), 412-416.
Berthe, T., Ratajczak, M., Clermont, O., Denamur, E., & Petit, F. (2013). Evidence for coexistence of distinct Escherichia coli populations in various aquatic environments and their survival in estuary water. Applied and Environmental Microbiology, 79(15), 4684-4693.
Coburn, B., Grassl, G. A., & Finlay, B. B. (2007). Salmonella, the host and disease: a brief review. Immunology and Cell Biology, 85(2), 112-118.
Cowan, M. M. (1999). Plant products as antimicrobial agents. Clinical Microbiology Reviews, 12(4), 564-582.
Dai, L. X., Li, J. C., Miao, X. L., Guo, X., Shang, X. F., Wang, W. W., & Zhang, J. Y. (2021). Ultrasoundassisted extraction of five anthraquinones from Rheum palmatum water extract residues and the antimicrobial activities. Industrial Crops and Products, 162, 1-12.
Department of disease control. (2022). Prevention of diseases and health hazards occurring in the summer of Thailand, 2022. Announcement of the department of disease control.
Ennahar, S., Asou, Y., Zendo, T., Sonomoto, K., & Ishizaki, A. (2001). Biochemical and genetic evidence for production of enterocins A and B by Enterococcus faecium WHE 81. International Journal of Food Microbiology, 70(3), 291-301.
Gadisa, E., Weldearegay, G., Desta, K., Tsegaye, G., Hailu, S., Jote, K., & Takele, A. (2019). Combined antibacterial effect of essential oils from three most commonly used Ethiopian traditional medicinal plants on multidrug resistant bacteria. BMC Complementary and Alternative Medicine, 19(1), 1-9.
Gänzle, M. G. (2015). Lactic metabolism revisited metabolism of lactic acid bacteria in food fermentations and food spoilage. Current Opinion in Food Science, 2, 106-117.
Institute of public health sciences. (2014).Escherichia coli. Retrieved from http://nih.dmsc.moph. go.th/data/data/fact_sheet/12_57.pdf [1 เมษายน 2565]
Jarriyawattanachaikul, W., Chaveerach, P., & Chokesajjawatee, N. (2016). Antimicrobia lactivity
of Thai-herbal plants against food-borne pathogens E. coli, S. aureus and C. jejuni.
Agriculture and Agricultural Science Procedia, 11, 20-24.
Kaper, J. B., Nataro, J. P., & Mobley, H. L. T. (2004). Pathogenic Escherichia coli. Nature Reviews Microbiology, 2(2), 123-140.
Karimi, N., Ghanbarzadeh, B., Hamishehkar, H., Mehramuz, B., & Kafil, H. S. (2018). Antioxidant, antimicrobial and physicochemical properties of turmeric extract-loaded nanostructured lipid carrier (NLC). Colloid and Interface Science Communications, 22, 18-24.
Khan, I., Ullah, Z., Shad, A. A., Fahim, M., & Öztürk, M. (2022). In vitro antioxidant, anticholinesterase inhibitory, and antimicrobial activity studies of Terminalia chebula (Retz) and Terminalia arjuna (Roxb). South African Journal of Botany, 146, 395-400.
Mun, S. H., Joung, D. K., Kim, Y. S., Kang, O. H., Kim, S. B., Seo, Y. S., & Kwon, D. Y. (2013). Synergistic antibacterial effect of curcumin against methicillin-resistant Staphylococcus aureus. Phytomedicine, 20(8), 714-718.
Orndorff, P. E., Tsolis Renée, M., Adams, L. G., Ficht Thomas, A., & Bäumler Andreas, J. (1999). Contribution of Salmonella Typhimurium virulence factors to diarrheal disease in calves. Infection and Immunity, 67(9), 4879-4885.
Packiavathy, I. A. S. V., Priya, S., Pandian, S. K., & Ravi, A. V. (2014). Inhibition of biofilm development of uropathogens by curcumin an anti-quorum sensing agent from Curcuma longa. Food Chemistry, 148, 453-460.
Saeedi, P., Yazdanparast, M., Behzadi, E., Salmanian, A. H., Mousavi, S. L., Nazarian, S., & Amani, J.(2017). A review on strategies for decreasing E. coli O157:H7 risk in animals Microbial Pathogenesis, 103, 186-195.
Saeloh, D., & Visutthi, M. (2021). Efficacy of Thai plant extracts for antibacterial and anti-Biofilm activities against pathogenic bacteria. Antibiotics, 10(12), 1-9.
Sen A, & Batra A. (2012). Evaluation of antimicrobial activity of different solvent extracts of medicinal plant: Melia azedarach L. International Journal of Current Pharmaceutical Research. 4(2), 67-73.
Stompor-Gorący, M. (2021). The health benefits of emodin, a natural anthraquinone derived from rhubarb a summary update. International Journal of Molecular Sciences, 22(17), 1-16.
Techaoei, S. (2022). Time-kill kinetics and antimicrobial activities of Thai medical plant extracts against fish pathogenic bacteria. Journal of Advanced Pharmaceutical Technology and Research, 13(1), 25-29.
Ye, H., Shen, S., Xu, J., Lin, S., Yuan, Y., & Jones, G. S. (2013). Synergistic interactions of cinnamaldehyde in combination with carvacrol against food-borne bacteria. Food Control, 34(2), 619-623.
Zhang, Q. Y., Wang, F. X., Jia, K. K., & Kong, L. D. (2018). Natural product interventions for chemotherapy and radiotherapy-induced side effects. Frontiers in Pharmacology, 9, 1-25.
Zhang, Y., Zhou, L., Ma, W., Shi, X., Zhang, H., & Shi, X. (2017). Bidirectional solid fermentation using Trametes robiniophila Murr. for enhancing efficacy and reducing toxicity of rhubarb (Rheum palmatum L.). Journal of Traditional Chinese Medical Sciences, 4(3), 306-313.
ดาวน์โหลด
เผยแพร่แล้ว
ฉบับ
ประเภทบทความ
สัญญาอนุญาต
อนุญาตภายใต้เงื่อนไข Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
โปรดกรอกเอกสารและลงนาม "หนังสือรับรองให้ตีพิมพ์บทความในวารสารวิจัยมหาวิทยาลัยราชภัฏพระนคร สาขาวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี" ก่อนการตีพิมพ์
