ความรวดเร็ว น่าเชื่อถือ และ ความถูกต้องของวิธีตรวจวัดการปนเปื้อนสารเมทาบอไลต์ของ ไพรีทรอยด์ในน้ำนมสังเคราะห์ โดยเครื่องแก็สโครมาโตกราฟี-แมสสเปกโตรเมตรี

Main Article Content

ปริสา สนธิ
ไพบูลย์ ทุมรินทร์
พักรบ แก้วบัญดิษฐ
อลิษา วงษ์มาน
มาริษา ดวงแก้ว

บทคัดย่อ

ความเร็ว ความน่าเชื่อถือ และ ความถูกต้องของการตรวจวัดสารเมทาบอไลต์ของสารกำจัดแมลง ไพรีทรอยด์ (ซิส/ทรานส์ กรดเพอร์เมทรินิก) ที่ปนเปื้อนในน้ำนมสังเคราะห์ด้วยเครื่องแก๊สโครมาโตกราฟี- แมสสเปกโตรเมตรี ในการศึกษานี้ใช้ตัวอย่างน้ำนม 50 ไมโครลิตร ที่เติมสารมาตรฐานลงไป ดูดใส่ในหลอดขนาด 1.5 มิลลิลิตร แล้วนำไปปั่นแห้ง ด้วยเครื่อง miVac ที่อุณหภูมิ 40°C จนแห้ง จากนั้นนำตัวอย่างมาเติมด้วย ทูลูอีน 50 ไมโครลิตร ที่มีสารมาตรฐานภายในที่ระดับความเข้มข้น 0.1 ไมโครกรัม/มิลลิลิตร และเติมสารเปลี่ยนรูป MTBSTFA 50 ไมโครลิตร นำไปเขย่าด้วยเครื่องโซนิเคท 10 นาที และนำไปอบที่อุณหภูมิ 80 °C เป็นเวลา 10 นาที จากนั้นนำตัวอย่างมาวิเคราะห์ การศึกษาความถูกต้องของวิธีประกอบด้วย ความถูกต้องในการเลือก สัมประสิทธิ์การกําหนด (R2) ค่าต่ำสุดที่ตรวจวัดได้ (LOD) ค่าต่ำสุดที่วัดปริมาณได้ (LOQ) ความถูกต้อง และความเที่ยงตรงของวิธี ผลการศึกษาพบว่า ความสัมพันธ์เชิงเส้นในช่วงความเข้มข้น 0.05-10.00 ไมโครกรัม/มิลลิลิตร มีค่า R2 ≥0.995 และสามารถแยกสารที่สนใจออกจากสารรบกวนได้ดีมาก ค่า LOD และ LOQ คือ 0.01 และ 0.05 ไมโครกรัม/มิลลิลิตร ตามลำดับ  ค่าความถูกต้อง และความเที่ยงตรง พบว่า มีค่าร้อยละของการคืนกลับและค่าส่วนเบี่ยงเบนมาตรฐานสัมพัทธ์อยู่ที่ 83.85-104.54 และ 1.50-5.82 สำหรับ ซิส-กรดเพอร์เมทรินิก ตามลำดับ และ 87.28-105.19 และ 2.44-8.35 สำหรับ ทรานส์-กรดเพอร์เมทริ-นิก ตามลำดับ ดังนั้น วิธีการที่พัฒนาขึ้นนี้สามารถนำไปประยุกต์ตรวจสารปนเปื่อนในน้ำนมแม่ที่บริจาคก่อนที่จะให้ทารกแรกเกิดได้

Article Details

รูปแบบการอ้างอิง
สนธิ ป. ., ทุมรินทร์ ไ., แก้วบัญดิษฐ พ. ., วงษ์มาน อ. ., & ดวงแก้ว ม. . (2022). ความรวดเร็ว น่าเชื่อถือ และ ความถูกต้องของวิธีตรวจวัดการปนเปื้อนสารเมทาบอไลต์ของ ไพรีทรอยด์ในน้ำนมสังเคราะห์ โดยเครื่องแก็สโครมาโตกราฟี-แมสสเปกโตรเมตรี. วารสารพิษวิทยาไทย, 37(1), 16–26. สืบค้น จาก https://li01.tci-thaijo.org/index.php/ThaiJToxicol/article/view/246993
ประเภทบทความ
บทความวิจัย

เอกสารอ้างอิง

Yu CJ, Du CJ, Chiou HC, et al. Increased risk of attention-deficit/hyperactivity disorder associated with exposure to organophosphate pesticide in Taiwanese children. Andrology 2016; 4, 695–705.

Howard PH. Handbook of environmental fate and exposure data for organic chemicals, 2nd ed. Boca raton, FL, USA: Lewis publishers, 1989; Vol 3.

Timchalk C. Organophosphorus insecticide pharmacokinetics. In Hayes’ handbook of pesticide toxicology (third edition), 2nd ed. Cambridge, MA, USA: Academic press, 2010.

Battu RS, Singh B, Kang BK. Contamination of liquid milk and butter with pesticide residues in the Ludhiana district of Punjab state, India. Ecotox Environ Safe 2004; 59: 324–31.

Bedi JS, Gill JPS, Aulakh RS, et al. Pesticide residues in human breast milk: Risk assessment for infants in the Punjab, India. Sci Total Environ 2013; 463–64, 720–6.

Bedi JS, Gill JPS, Aulakh RS, et al. Pesticide residues in bovine milk in Punjab, India: Spatial variation and risk assessment to human health. Arch Environ Contam Toxicol 2015; 69: 230–40.

Petropoulou SE, Gikas E, Tsarbopoulos A, et al. Gas chromatographic–tandem mass spectrometric method for the quantitation of carbofuran, carbaryl and their main metabolites in applicators’ urine. J Chromatogr A 2006; 1108: 99–110.

Scollon EJ, Starr JM, Godin SJ, et al. In vitro metabolism of pyrethroid pesticides by rat and human hepatic microsomes and cytochrome P450 isoforms. J ASPET 2009; 37: 221-8.

Crow JA, Borazjani A, Potter PM, et al. Hydrolysis of pyrethroids by human and rat tissues: Examination of intestinal, liver and serum carboxylesterases. Toxicol Appl Pharm 2007; 221: 1-12.

Tsunoda N. Simultaneous determination of the herbicides glyphosate, glufosinate and bialaphos and their metabolites bycapillary gas chromatography-ion-trap mass spectrometry. J Chromatogr A 1993; 637: 167-73.

Olsson AO, Baker SE, Nguyen JV, et al. A liquid chromatography−tandem mass spectrometry multiresidue method for quantification of specific metabolites of organophosphorus pesticides, synthetic pyrethroids, selected herbicides, and DEET in human urine. Anal Chem 2004; 76(9): 2453–61.

Guo XY, Sun LS, Huang MY, et al. Simultaneous determination of eight metabolites of organophosphate and pyrethroid pesticides in urine. J Environ Sci Health B 2017; 52: 1–9.

Arrebola FJ, Martínez-Vidal JL, Fernández-Gutiérrez A, et al. Monitoring of pyrethroid metabolites in human urine using solid-phase extraction followed by gas chromatography-tandem mass spectrometry. Anal Chim Acta 1999; 401: 45–54.

Valentina FD, Cinzia N, Marco P, et al. Pyrethroid pesticide metabolite in urine and microelements in hair of children affected by autism spectrum disorders: A preliminary investigation. Int J Environ Res Public Health 2016; 13: 388.

Sailent RSS, Chien-Che H, Chia-Jung H, et al. Relationship between organophosphate and pyrethroid insecticides in blood and their metabolites in urine: A pilot study. Int J Environ Res Public Health 2020; 17: 34.

European Commission. Directorate General Health and Food Safety: Guidance document on analytical quality control and method validation procedures for pesticide residues and analysis in food and feed 2017; rev. 0.

Official Method AOAC. Pesticide residues in foods by acetonitirile extraction and partitioning with magnesium sulphate. J AOAC Int 2007; 90: 485-92.

U.S. Department of Health and Human Services, Food and Drug Administration. Center for Drug Evaluation and Research (CDER), Center for Veterinary Medicine (CVM), guidance for industry bioanalytical method validation, Rockville, Maryland. May 2018 BP.

Isabel T, Marc DL, Erik VB. Trends in quality in the analytical laboratory. II. Analytical method validation and quality assurance. Trends AnalChem 2004; 23(8): 535-52.

Skoog DA, West DM, Holler FJ, et al. Fundamentals of analytical chemistry, 9th ed., international ed. Anal Bioanal Chem 2013; 405: 7903–4.

Carr GP, Wahlich JC. A practical approach to method validation in pharmaceutical analysis. J Pharm Biomed Anal 1990; 86: 613–8.

Horvai G, Gary D. Christian, et al. Analytical chemistry. Anal Bioanal Chem 2014; 406: 5255-6.

Amelung W, Alexander N, Laabs V. Multiresidue determination of pesticides in acid-clay soils from Thailand. J AOAC Int 2007; 90: 1659-69.

Vázquez PP, Mughari AR, Galera MM. Application of solid-phase microextraction for determination of pyrethroids in groundwater using liquid chromatography with post-column photochemically induced fluorimetry derivatization and fluorescence detection. J Chromatogr A 2008; 1188: 61-8.

Navickiene S, Aquino A, Bezerra DS. A matrix solid-phase dispersion method for the extraction of seven pesticides from mango and papaya. J Chromatogr Sei 2010; 48: 750-4.

Rissato SR, Galhiane MS, Apon BM, et al. Multiresidue analysis of pesticides in soil by supercritical fluid extraction/gas chromatography with electron-capture detection and confirmation by gas chromatography-mass spectrometry. J Agrie Food Chem 2005; 53: 62-9.

Albaseer SS, Rao RN, Swamy YV, et al. An overview of sample preparation and extraction of synthetic pyrethroids from water, sediment and soil. J Chromatogr A 2010; 35: 5537-54.

Rübensam G, Barreto F, Hoff RB, et al. Determination of avermectin and milbemycin residues in bovine muscle by liquid chromatography-tandem mass spectrometry and fluorescence detection using solvent extraction and low temperature cleanup. Food Control 2013; 29: 55-60.

Goulart SM, de Queiroz ME, Neves AA, et al. Low-temperature clean-up method for the determination of pyrethroids in milk using gas chromatography with electron capture detection. Talanta 2008; 75: 1320-3.

Scott RP. Gas chromatography, Book 2, Chrom-Ed Book Series. 2003. Available at http://www.library4science.com/eula.html2, accessed on Sep 20, 2019.