ฤทธิ์ปกป้องเซลล์ของสารสกัดผลมะเกี๋ยงที่สกัดด้วยเอทานอลต่อความเสียหายจากภาวะออกซิเดชันที่เหนี่ยวนำด้วยโซเดียมไอโอเดตในเซลล์จอประสาทตามนุษย์ชนิด ARPE-19
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
ภาวะจอประสาทตาเสื่อมตามอายุ เป็นสาเหตุสำคัญของการสูญเสียการมองเห็นแบบถาวรในผู้สูงอายุ โดยภาวะเครียดออกซิเดชันในเซลล์จอประสาทตาเป็นสาเหตุสำคัญของการเกิดภาวะนี้ สารต้านอนุมูลอิสระจากธรรมชาติมีศักยภาพในการปกป้องเซลล์จอประสาทตาจากความเสียหายที่เกิดจากออกซิเดชัน มะเกี๋ยงเป็นผลไม้สีม่วงเข้มที่อุดมด้วยสารแอนโทไซยานิน ซึ่งมีฤทธิ์ในการต้านอนุมูลอิสระ อย่างไรก็ตาม ฤทธิ์ในการปกป้องเซลล์ ARPE-19 ยังไม่มีการทดสอบ การศึกษานี้มีวัตถุประสงค์เพื่อประเมินความสามารถในการต้านอนุมูลอิสระและฤทธิ์ปกป้องเซลล์ของสารสกัดมะเกี๋ยงต่อเซลล์จอประสาทตามนุษย์ (ARPE-19) ที่เหนี่ยวนำให้เกิดภาวะเครียดออกซิเดชันด้วยโซเดียมไอโอเดต (NaIO₃) ผลมะเกี๋ยงสายพันธุ์ (Cleistocalyx nervosum var. paniala) สกัดด้วยเอทานอล 95% (MKE95) เซลล์ ARPE-19 ถูกเลี้ยงด้วย MKE95 (2, 20 และ 200 ไมโครกรัมต่อมิลลิลิตร) ร่วมกับ NaIO₃ (1,200 ไมโครกรัมต่อมิลลิลิตร) เป็นเวลา 24 ชั่วโมง ผลการศึกษาพบว่า MKE95 ที่ความเข้มข้น 200 ไมโครกรัมต่อมิลลิลิตร สามารถลดการเกิดอนุมูลอิสระภายในเซลล์ได้อย่างมีนัยสำคัญทางสถิติ (p < 0.05) เพิ่มการทำงานของสารต้านอนุมูลอิสระภายในเซลล์ (SOD, CAT, GPx และ GSH) และลดระดับการทำงานของเอนไซม์ที่เหนี่ยวนำให้เกิดการตายของเซลล์ในแบบอะพอพโทซิส (caspase-9 และ -3) ผลการศึกษาเหล่านี้บ่งชี้ว่า MKE95 มีฤทธิ์ปกป้องเซลล์จากภาวะเครียดออกซิเดชันในเซลล์ ARPE-19 อย่างไรก็ตาม ผลการศึกษาเหล่านี้เป็นเพียงหลักฐานจากการทดลองในหลอดทดลองเท่านั้น จำเป็นต้องมีการศึกษาเพิ่มเติมในสัตว์ทดลองและแบบจำลองทางคลินิกเพื่อยืนยันศักยภาพในการป้องกันหรือชะลอการลุกลามของภาวะจอประสาทตาเสื่อม
Article Details
เอกสารอ้างอิง
Yang S, Lutty G. Understanding age-related macular degeneration (AMD): Relationships between the photoreceptor/retinal pigment epithelium/Bruch’s membrane/choriocapillaris complex. Mol Aspects Med. 2012;33(3):295–317.
Wong WL, Su X, Li X, et al. Global prevalence of age-related macular degeneration and disease burden projection for 2020 and 2040: a systematic review and meta-analysis. Lancet Glob Health. 2014;2(2):106–16.
Khotcharrat R, Patikulsila D, Hanutsaha P, et al. Epidemiology of age-related macular degeneration among the elderly population in Thailand. J Med Assoc Thai. 2015;98(8):790–7.
Brown MM, Brown GC. Age-related macular degeneration: Economic burden and value-based medicine analysis. Can J Ophthalmol. 2005;40(3):277–87.
Rajanala K, Dotiwala F, Upadhyay A. Geographic atrophy: pathophysiology and current therapeutic strategies. Front Ophthalmol. 2023;3:1327883.
Dunaief JL, Dentchev T, Ying GS, et al. The role of apoptosis in age-related macular degeneration. Arch Ophthalmol. 2002;120 (11):1435–42.
Yang S, Zhou J, Li D. Functions and diseases of the retinal pigment epithelium. Front Pharmacol. 2021;12:727870.
Strauss O. The retinal pigment epithelium in visual function. Physiol Rev. 2005;85(3):845–81.
Ambati J, Fowler BJ. Mechanisms of age-related macular degeneration. Neuron. 2012;75(1):26–39.
Wang J, Iacovelli J, Spencer C, et al. Direct effect of sodium iodate on neurosensory retina. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2014;55:1941–53.
Liu B, Wang W, Shah A, et al. Sodium iodate induces ferroptosis in human retinal pigment epithelium ARPE-19 cells. Cell Death Dis. 2021;12:230.
Reed JC. Mechanisms of apoptosis. Am J Pathol. 2000;157:1415–30.
Schmidt-Erfurth U, Chong V, Loewenstein A, et al. Guidelines for the management of neovascular age-related macular degeneration by EURETINA. Br J Ophthalmol. 2014;98(9): 1144–67.
Aung KH, Liu H, Ke Z, et al. Glabridin attenuates retinal degeneration induced by sodium iodate in vitro and in vivo. Front Pharmacol. 2020;11:566699.
Chang YY, Lee YJ, Hsu MY, et al. Protective effect of quercetin on sodium iodate-induced retinal apoptosis through the ROS-mediated mitochondrion-dependent pathway. Int J Mol Sci. 2021;22(8):4056.
Rebollo-Hernanz M, Aguilera Y, Martín-Cabrejas M, et al. Role of anthocyanins in oxidative stress and prevention of cancer in the digestive system. In: Preedy VR, editor. Cancer: Oxidative Stress and Dietary Antioxidants. London: Academic Press; 2020. p. 31.
Kim JH, Lee HJ, Lee EO, et al. Anthocyanins inhibit oxidative injury in ARPE-19 cells via activating heme oxygenase-1. J Microbiol Biotechnol. 2024;34(4):1–10.
Matsumoto H, Nakamura Y, Iida H, et al. Comparative distribution of blackcurrant anthocyanins in rabbit and rat ocular tissues. Exp Eye Res. 2006;83(2):348–56.
Sukprasansap M, Chanvorachote P, Tencomnao T. Cleistocalyx nervosum var. paniala berry protects against neurotoxicity via inhibition of ER stress-induced apoptosis. Food Chem Toxicol. 2017;103:279–88.
Panritdum P, Muangnoi C, Tuntipopipat S, et al. Cleistocalyx nervosum var. paniala extract and cyanidin-3-glucoside inhibit hepato-toxicity and apoptosis. Food Sci Nutr. 2024;12:2947–62.
Plafker SM, O’Mealey GB, Szweda LI. Mechanisms for countering oxidative stress in retinal pigment epithelium. Int Rev Cell Mol Biol. 2012;298:135–77.
Loreto C, La Rocca G, Anzalone R, et al. The role of intrinsic pathway in apoptosis activation and progression in Peyronie’s disease. BioMed Res Int. 2014;2014:616149.
Jamwal S, Kumar P, Kakkar V, et al. Protocols in apoptosis identification and affirmation. In: Clin Perspect Target Ther Apoptosis. Elsevier; 2021.
Tena N, Martín J, Asuero AG. State of the art of anthocyanins: antioxidant activity, sources, bioavailability, and therapeutic effects. Antioxidants. 2020;9(5):451.
Wang Y, Zhao L, Lu F, et al. Retinoprotective effects of bilberry anthocyanins in retinal degeneration model. Molecules. 2015;20(12): 22395–410.
Castañeda-Ovando A, Pacheco-Hernández ML, Páez-Hernández ME, et al. Chemical studies of anthocyanins: a review. Food Chem. 2009;113(4):859–71.
Tokarz P, Kaarniranta K, Blasiak J. Role of antioxidant enzymes in AMD pathogenesis. Biogerontology. 2013;14(5):461–82.
Nantacharoen W, Baek SJ, Plaingam W, et al. Cleistocalyx nervosum promotes antioxidant response via SIRT1/Nrf2 pathway. Molecules. 2022;27(18):5813.
Li P, Zhou L, Zhao T, et al. Caspase-9: structure, mechanisms and clinical application. Oncotarget. 2017;8(14):23996–24008.
