ความชุกของเชื้อ Theileria spp. ของแพะในอำเภอวัฒนานคร จังหวัดสระแก้ว

Main Article Content

ไพทูล แก้วหอม
วรรณา ฐิตะสาร

บทคัดย่อ

โรคไทเลอริโอซิส (Theileriosis) เป็นโรคที่เกิดจากเชื้อ Theileria spp. ซึ่งพบได้ทั้งในเซลล์เม็ดเลือดแดง และเซลล์เม็ดเลือดขาวของสัตว์เลี้ยงในฟาร์ม เช่น โค กระบือ แพะ แกะ เป็นต้น ปรสิตสกุลนี้ทำให้อัตราการตายสูงในสัตว์เคี้ยวเอื้องขนาดเล็ก ซึ่งทำให้เกิดการสูญเสียทางเศรษฐกิจอย่างมากในการเลี้ยงสัตว์ ดังนั้นจึงมีความจำเป็นที่จะต้องมีการตรวจสอบการระบาดของเชื้อ Theileria spp. ของสัตว์เลี้ยงในฟาร์ม ดังนั้นวัตถุประสงค์ของการศึกษาครั้งนี้คือ การหาความชุกของเชื้อ Theileria spp ของแพะจาก 3 ตำบล ได้แก่ ห้วยโจด หนองแวง และท่าเกวียน ในอำเภอวัฒนานคร จังหวัดสระแก้ว โดยเก็บตัวอย่างเลือดแพะจำนวน 196 ตัว นำมาตรวจสอบโดยเทคนิคปฏิกิริยาลูกโซ่พอลิเมอเรส ผลการทดลองพบว่าผลผลิตของปฏิกิริยาลูกโซ่พอลิเมอเรส ที่ได้มีขนาดประมาณ 230 คู่เบส ความชุกของเชื้อ Theileria spp ของแพะในเขตตำบลห้วยโจด หนองแวง และท่าเกวียน มีค่าร้อยละ 32.70 (34/104), 57.50 (23/40) และ 46.15 (24/52) ตามลำดับ สำหรับความชุกรวมของอำเภอวัฒนานคร มีค่าร้อยละ 41.33 (81/196) นอกจากนี้ยังศึกษาปัจจัยในการเก็บตัวอย่างที่มีผลต่อการติดเชื้อ Theileria spp. พบว่าพื้นที่และช่วงเดือนหรือฤดูกาลของการเก็บตัวอย่างที่ต่างกันมีผลต่อการติดเชื้อ Theileria spp. อย่างมีนัยสำคัญทางสถิติ (P<0.05) สรุปได้ว่าเทคนิค PCR สามารถนำมาตรวจสอบหาความชุกของเชื้อ Theileria spp. ในเลือดแพะได้ และพบว่าการติดเชื้อ Theileria spp. ของแพะในอำเภอวัฒนานครค่อนข้างสูง ซึ่งอาจเนื่องมาจากเกษตรกรยังไม่ให้ความสำคัญในการป้องกันและกำจัดพาหะนำโรค

Article Details

How to Cite
แก้วหอม ไ. และ ฐิตะสาร ว. (2018) “ความชุกของเชื้อ Theileria spp. ของแพะในอำเภอวัฒนานคร จังหวัดสระแก้ว”, สัตวแพทย์มหานครสาร, 12(2), น. 57–66. available at: https://li01.tci-thaijo.org/index.php/jmvm/article/view/113331 (สืบค้น: 5 เมษายน 2025).
บท
บทความวิจัย

References

Altangerel, K., Sivakumar, T. Inpankaew, T. Jittapalapong, S. Terkawi, M.A. Ueno, A. Xuan, X. Igarashi, I. and Yokoyama, N. 2011. Molecular Prevalence of Different Genotypes of Theileria orientalis Detected from Cattle and Water Buffaloes in Thailand. J. Parasitol. 97 (6): 1075-1079.
Aktas, M., Altay, K. and Dumanli, N. 2005. Survey of Theileria parasites of sheep in eastern Turkey using polymerase chain reaction. Small Rumin. Res. 60: 289-293.
Altay, K., Dumanli, N., Holman, P.J. and Aktas, M. 2005. Detection of Theileria ovis in naturally infected sheep by nested PCR. Parasitol. 127: 99-104.
Anim, J., Ali Z., Maqbool, A., Muhammad, K., Khan, M.S. and Younis, M. 2013. Prevalence of Theileria annulata infected hard ticks of cattle and buffalo in Punjab, Pakistan. Pak. Veter. J. 23(1): 20-26.
Cao, S., Zhang, S., Jia, L., Xue, S., Yu, L., Kamyingkird, K., Moumouni, P.F.A., Moussa, A.A.E.M., Zhou, M. Zhang, Y., Terkawi, M.A., Masatani, T., Nishikawa, Y. and Xuan, X. 2013. Molecular detection of Theileria species in sheep from northern China. J. Vet. Med. Sci. 75 (9): 1227-1230.
Chae, J.S., Waghela, S.D., Craig, T.M., Kocan, A.A., Wagner, G.G. and Holman, P.J. 1999. Two Theileria cervi SSU rRNA gene sequence types found in isolates from white-tailed deer and elk in North America. W. Diseases. 35 (3): 458-465.
Chaisi, M.E., Sibeko, K.P., Collins, N.E., Potgieter, F.T. and Oosthuizen, M.C. 2011. Identification of Theileria parva and Theileria sp. (buffalo) 18S rRNA gene sequence variants in the African Buffalo (Syncerus caffer) in southern Africa. Vet. Parasitol. 182: 150-162.
Chomczynsky, P. and Sacchi, N. 1987. Single-step method of RNA isolation by acid guanidinium thiocyanate phenol choroform extraction. Anal. Biochem. 162: 156-159.
Hana, J.I., Janga, H.J., Leeb, S.J. and Naa, K.J. 2009. High prevalence of Theileria spp. in wild Chinese Water Deer (Hydropotes inermis argyropus) in South Korea. Parasitol. 164 (2-4): 311-314.
Irshad, N., Qayyum, M., Hussain, M. and Qasim, K.M. 2010. Prevalence of Tick Infestation and Theileriosis in Sheep and Goats. Pak Vet. 30 (3): 178-180.
Kaewhom, P. 2014. Molecular detection of Trypanosoma evansi among cattle and buffaloes blood. J. Mahanakorn Vet. Med. 9 (1): 49-61. (in Thai)
Kgomotso, P., Oosthuizen, C., Collins, N., Geysen, D., Rambritch, N., Latif, A., Groenevel, H., Potgieter, F. and Coetzer, J. 2008. Development and evaluation of a real-time polymerase chain reaction test for the detection of Theileria parva infections in Cape buffalo (Syncerus caffer) and cattle. Parasitol. 155: 37-48.
Kursat, A., Dumanli, N. and Aktas, M. 2007. Molecular identification, genetic diversity and distribution of Theileria and Babesia species infecting small ruminants. Parasitol. 147: 161-165.
Mans, B.J., Pienaar, R. and Latif, A.A. 2015. A review of Theileria diagnostics and epidemiology. Int. J. Parasitol. Parasites Wildl. 4: 104-118.
Moretti, A., Mangili, V., Salvatori, R., Maresca, C., Scoccia, E., Torina, A., Moretta, I., Gabrielli, S., Tampier, M.P. and Pietrobelli, M. 2010. Prevalence and diagnosis of Babesia and Theileria infections in horses in Italy: A preliminary study. Vet. Journal. 184: 346-350.
Moumouni, P.F.A., Aboge, G.O., Terkawi, M.A., Masatani, T., Cao, S., Kamyingkird, K., Jirapattharasate, C., Zhou, M., Wang, G. Liu, M., Iguchi, A., Vudriko, P., Ybanez, A.P., Inokuma, H., Shirafuji-Umemiya, R., Suzuki, H. and Xuan, X. 2015. Molecular detection and characterization of Babesia bovis, Babesia bigemina, Theileria species and Anaplasma marginale isolated from cattle in Kenya. Parasites & Vectors. 8: 496.
Pulforda, D.J., McFaddena, A.M.J., Hamiltonb, J.S. and Donaldc, J. 2016. Investigation of the index case herd and identification of the genotypes of Theileria orientalis associated with outbreaks of bovine anaemia in New Zealand in 2012. Vet. Journal. 64 (1): 21-28.
Saetiew, N., Simking, P., Saengow, S., Kurajog, B., Yimming, B., Saeng-chuto, K., Chimnoi, W., Kengradomkij, C., Yangtara, S., Suksai, S., Thaprathom, N., Seneemanoma, C., Penghirun, K., Desquesnes, M., Herder, S., Morand, S. and Jittapalapong, S. 2014. Seasonal effect on Anaplasma marginale infections of beef cattle in previously flooding areas. Proceedings of the 52nd Kasetsart University Annual Conference: Animal, Veterinary Medicine, Nakhon Pathom, Thailand, 4-7 February 2014: 267–277.