การศึกษาการเปลี่ยนแปลงทางจุลพยาธิวิทยาของเนื้อเยื่อหอยตะโกรมกรามขาวในระยะความเป็นพิษกึ่งเฉียบพลันของปรอท
Main Article Content
บทคัดย่อ
ปรอท จัดเป็นโลหะหนักที่เป็นพิษที่มีการปนเปื้อนสู่สิ่งแวดล้อมทั่วทุกแห่ง มีการสะสมเพิ่มขึ้นตามลำดับขั้นในห่วงโซ่อาหาร ดังนั้นพิษจากปรอทในมนุษย์เกิดได้จากการกินอาหารที่มีการปนเปื้อนสารปรอท หอยสองฝา เช่น หอยนางรม มีการนำมาเป็นตัวบ่งชื้ทางชีวภาพ (biomarker) ในสิ่งแวดล้อม การศึกษาครั้งนี้ได้ทำการศึกษาความเป็นพิษกึ่งเฉียบพลันของสารปรอทต่อการเปลี่ยนแปลงทางจุลพยาธิวิทยาด้วยกล้องจุลทรรศน์แบบใช้แสงและกล้องจุลทรรศน์อิเล็กตรอนแบบส่องกราด (Crassostrea belcheri) ทำการทดลองจากหอยนางรมทั้งหมด 200 ตัว แบ่งเป็นกลุ่มควบคุม 1 กลุ่มและกลุ่มทดลอง 4 กลุ่ม ประกอบด้วย กลุ่มที่ได้รับเมอร์คิวริค คลอดไรด์ (HgCl2) ที่ความเข้มข้น 2.5, 5, 10 และ 15 ไมโครกรัมต่อลิตร ตามลำดับ และทุกกลุ่มทำการเก็บตัวอย่างหอยนางรมแบบสุ่มทุก 3 วัน เป็นระยะเวลา 1 เดือน พบว่าการได้รับสารปรอทแบบกึ่งเฉียบพลันทำให้การปิดเปิดของเปลือกหอยลดลงและหลั่งเมือกออกมามากขึ้น ต่อมทางเดินอาหารมีการเปลี่ยนแปลงทางพยาธิสภาพมากที่สุด พบฮีโมไซต์และเมลาโนแมคโครฟาจ เซ็นเตอร์ ไขมันสะสมลดลง การฝ่อลีบของต่อมทางเดินอาหาร และมีการแทรกตัวของฮีโมไซต์เพิ่มขึ้นร่วมกับการฝ่อลีบที่เหงือก นอกจากนี้พบว่าความเข้มข้นของ HgCl2 ที่ 15 ไมโครกรัมต่อลิตรก่อให้เกิดเสียหายของพยาธิมากที่สุดอย่างมีนัยสำคัญทางสถิติ (p<0.05) จากผลการศึกษาแสดงให้เห็นว่าหอยนางรมสามารถนำมาใช้เป็นตัวบ่งชี้ทางชีวภาพของความเป็นพิษกึ่งเฉียบพลันของสารปรอทในสิ่งแวดล้อมได้
Article Details
เอกสารอ้างอิง
2. ดาราวดี ใจคุ้มเกล้า. 2546. การสะสมของสารปรอทในหอยนางรมและหอยแมลงภู่จากบริเวณอ่าวไทยและทะเลอันดามัน. วิทยานิพนธ์ปริญญาวิทยาศาสตร์มหาบัณฑิต, สาขาวิชาวิทยาศาสตร์สิ่งแวดล้อม, มหาวิทยาลัยบูรพา. 110 หน้า.
3. มณีย์ กรรณรงค์. 2547. การเจริญเติบโต การปนเปื้อนของแบคทีเรียในหอยตะโกรมกรามขาว, หอยตะโกรมกรามดำและหอยนางรมปากจีบ บริเวณแหล่งเลี้ยงอ่าวบ้านดอน จังหวัดสุราษฎร์ธานี. ผลงานวิชาการการสัมมนาทางวิชาการครั้งที่ 44 ศูนย์วิจัยและพัฒนาประมงชายฝั่งนครศรีธรรมราช. สิงหาคม – กันยายน 2547: 60-74.
4. ศิริวรรณ ลาภทับทิมทอง. 2544. การสะสมโลหะหนักบางชนิดในหอยเศรษฐกิจ บริเวณชายฝั่งทะเลของอ่าวไทยและทะเลอันดามัน. วิทยานิพนธ์ปริญญาวิทยาศาสตร์มหาบัณฑิต, สาขาวิชาวิทยาศาสตร์สิ่งแวดล้อม, มหาวิทยาลัยบูรพา. 130 หน้า.
5. ศิริลักษณ์ วงษ์วิจิตรสุข. 2552. Biomarker กับบทบาทที่สำคัญในงานอาชีวอนามัยและความปลอดภัย. วารสาร มฉก.วิชาการ. 12(24): 89-99.
6. สำนักงานเศรษฐกิจการเกษตร. 2560. (สืบค้นข้อมูลเมื่อ 5 เมษายน 2561). สถิติการเกษตรของประเทศไทย. เข้าถึงได้จาก: https://www. oae.go.th/download/download_journal/2560/yearbook59.pdf.
7. Azevedo, B.F., Furieri, L.B., Pecanha, F.M., Wiggers, G.A., Vassallo, P.F., Simoes, M.R., Fiorim, J., de Batista, P.R., Fioresi, M., Rossoni, L., Stefanon, I., Alonso, M.J., Salaices, M. and Vassallo, D.V. 2012. Toxic Effects of mercury on the cardiovascular and central nervous systems. J. Biomed. Biotechnol. 2012: 1-11.
8. Bigas, M., Durfort, M. and Poquet, M. 2001. Cytological effects of experimental exposure to Hg on the gill epithelium of the European flat oyster Ostrea edulis: ultrastructural and quantitative changes related to bioaccumulation. Tissue & Cell. 33(2): 178-188.
9. Devi, V.U. 1996. Changes in oxygen consumption and Biochemical composition of the Marine Fouling Dreissinid bivalve Mytilopsis sallei (Recluz) exposed to Mercury. Ecotoxicol. Environ. Saf. 33(2): 168-174.
10. Di Giulio, R.T. and Newman, M.C. 2013. Ecotoxicology. In: Casarett and Doull’s Toxicology. 8th ed. Klassen, C.D. (ed). McGraw-Hill Education. New York. 1473.
11. Flora, S.J.S. 2014. Metals. In: Biomarkers in toxicology. Gupta, R.C. (ed.) Academic Press. MA. 1088 p.
12. Gosling, E. 2015. Marine Bivalve Molluscs. 2nd ed. Wiley Blackwell. NJ. 537 p.
13. Hodgson, E., Roe, R.M., Mailman, R.B. and Chambers, J.E. 2015. Dictionary of Toxicology. 3rd ed. Elsevier. CA. 372 p.
14. Howard, D.W., Lewis, E.J., Keller, B.J. and Smith, C.S. 2004. Histological techniques for marine bivalve mollusks and crustaceans. 2nd ed. NOAA Technical Memorandum NOS NCCOS 5. Oxford. 218 p.
15. Kaplan, B.L.F., Sulentic, C.E.W., Holsapple, M.P. and Kaminski, N.E. 2013. Toxic responses of the immune system. In: Casarett and Doull’s Toxicology. 8th ed. Klassen, C.D. (ed). McGraw-Hill Education. New York. 1473.
16. Kadar, E., Costa, V., Santos, R.S. and Lopes, H., 2005. Behavioural response to the bioavailability of inorganic mercury in the hydrothermal mussel Bathymodiolus azoricus. J. Exp. Biol. 208: 505-513.
17. Kumar, B, Smita, K. and Flores, L.C. 2017. Plant mediated detoxification of mercury and lead. Arab. J. Chem. 10: S2335-S2342.
18. Marchi, B., Burlando, B., Moore, M.N. and Viarengo, A. 2004. Mercury- and copper-induced lysosomal membrane destabilisation depends on [Ca2+]i dependent phospholipase A2 activation. Aquat. Toxicol. 66(2): 197–204.
19. Mason, R.P., Choi, A.L., Fitzgerald, W.F., Hammerschmidt, C.R., Lamborg, C.H., Soerensen, A.L. and Sunderland, E.M. 2012. Mercury biogeochemical cycling in the ocean and policy implications. Environ. Res. 119: 101-117.
20. Moore, M.N., 1991. Lysosomal changes in the response of molluscan hepatopancreatic cells to extracellular signals. Histochem. J. 23(10): 495–500.
21. Nikinmaa, M. 2014. Introduction: What is Aquatic Toxicology?. In: An introduction to aquatic toxicology. 1st ed. Academic Press. MA. 236 p.
22. Ramakritinan, C.M., Chandurvelan, R. and Kumaraguru, A.K. 2012. Acute Toxicity of Metals: Cu, Pb, Cd, Hg and Zn on Marine Molluscs, Cerithedia cingulate G., and Modiolus philippinarum H. Indian J. Geomarine Sci. 41(2): 141-145.
23. Sheir, S.K., Handy, R.D. and Galloway, T.S. 2010. Tissue injury and cellular immune responses to mercuric chloride exposure in the common mussel Mytilus edulis: Modulation by lipopolysaccharide. Ecotoxicol. Environ. Saf. 73(6): 1338-1344.
24. Tall, B.D. and Nauman, R.K. 1981. Scanning electron microscopy of Cristispira species in Chesapeake Bay oysters. Appl. Environ. Microbiol. 42(2): 336-343.
25. Viarengo, A., Marro, A., Marchi, B., Burlando, B., 2000. Single and combined effects of heavy metals and hormones on lysosomes of haemolymph cells from the mussel Mytilus galloprovincialis. Mar. Biol. 137(5-6): 907–912.