การศึกษาการเจริญเติบโตของตัวอ่อนพยาธิและความดกไข่ของพยาธิใบไม้ในลำไส้ Echinostoma revolutum ในไก่บ้าน
Main Article Content
บทคัดย่อ
การศึกษาวิจัยการตรวจพบการเจริญเติบโตของไข่พยาธิ และความไข่ดกของพยาธิใบไม้ในลำไส้ Echinostoma revolutum ในไก่บ้าน (Gallus gallus domesticus) โดยทำการคัดแยกตัวอ่อนพยาธิใบไม้ E. revolutum ระยะเมตาเซอร์คาเรียจากหอยขม (Filopaludina martensi martensi) และทำการป้อนระยะติดต่อตัวอ่อนพยาธิใบไม้ระยะเมตาเซอร์คาเรียจำนวน 50 ตัว ต่อลูกไก่บ้านอายุ 3 วัน 1 ตัว (n=60 ตัว) จากนั้นทำการตรวจหาไข่พยาธิจากอุจจาระไก่ เพื่อหาจำนวนไข่และตรวจนับไข่พยาธิในมดลูกของพยาธิ ตรวจนับปริมาณไข่ต่อกรัมมูลไก่ (EPG) และศึกษาสัณฐานวิทยาและการเจริญของไข่พยาธิ จากผลการศึกษาวิจัยพบว่าพยาธิใบไม้ชนิดนี้สามารถดำรงชีวิตอยู่ในตัวไก่บ้านได้ 36 วัน และหลังจากการป้อนตัวอ่อนระยะติดต่อพยาธิใบไม้ชนิดนี้ พบว่าค่าความชุกของการติดเชื้อเท่ากับ 60.0% (36/60) และจากการป้อนตัวอ่อนพยาธิใบไม้ระยะติดต่อทั้งหมด 1,800 ตัวในไก่บ้าน สามารถตรวจพบตัวพยาธิใบไม้ 465 ตัว (27.1%) ส่วนใหญ่จะพบในลำไส้ ส่วน jejunum และ ileum และมีส่วนน้อยที่พบใน caeca และนอกจากนั้นยังพบว่าพยาธิใบไม้ระยะโตเต็มวัยสามารถสร้างไข่ได้ประมาณวันที่ 10 หลังจากทำให้ติดโรค และสามารถตรวจพบไข่พยาธิได้ในมูลไก่บ้านจากการใช้วิธีตรวจด้วยเทคนิคการตกตะกอน formalin-ether ได้นับตั้งแต่วันที่ 10 หลังการป้อนตัวอ่อนพยาธิใบไม้เข้าไป สำหรับการนับจำนวนไข่พยาธิ หรือ EPG นั้นพบว่าปริมาณไข่จะเพิ่มขึ้นตั้งแต่วันที่ 10-16 จากนั้นจะเริ่มคงที่ไปจนถึงวันที่ 36 หลังการป้อนตัวอ่อนพยาธิใบไม้ ไข่ของพยาธิจะเริ่มมีการเจริญเติบโตตั้งแต่วันแรกจนถึงวันที่ 10 ภายหลังจากที่วางไข่ปนออกมากับอุจจาระ และสามารถเจริญเป็นตัวอ่อนระยะที่ 1 ไมราซีเดียม ที่สมบูรณ์ได้หลังจากวันที่ 10 ไปแล้วก่อนที่มันจะฟักออกมาจากไข่ในภายหลัง
Article Details
เอกสารอ้างอิง
Chai, J.Y., Sohn, W.M., Na, B.K. and De, N.V. 2011. Echinostoma revolutum: Metacercariae in Filopaludina snails from Nam Dinh Province, Vietnam, and adults from experimental Hamsters. Korean J. Parasitol. 49(4): 449-455.
Chantima, K., Chai, J.Y. and Wongsawad, C. 2013. Echinostoma revolutum: Freshwater snails as the second intermediate hosts in Chiang Mai, Thailand. Korean J. Parasitol. 51 (2): 183-189.
Christensen, N.O., Simonsen, P.E., Odaibo, A.B. and Mahler, H. 1990. Establishment, survival and fecundity in Echinostoma caproni (Trematoda) infections in hamsters and birds. J. Helminthol. Soc. Washington. 57(2): 104-107.
Davis, N.E. 2005. Storage and incubation of Echinostoma revolutum eggs recovered from wild Branta canadensis, and their infectivity to Lymnaea tomentosa snails. J. Helminthol. 79(4): 321-326.
Elkins, D.B., Sithithaworn, P., Haswell-Elkins, M.S., Kaewkes, S., Awacharagan, P. and Wongratanacheewin, S. 1991. Opisthorchis viverrini: relationships between egg counts, worms recovered and antibody levels within an endemic community in Northeast Thailand. Parasitol. 102(2): 283-288.
Franco, J., Huffman, J.E. and Fried, B. 1986. Infectivity, growth and development of Echinostoma revolutum (Digenea: Echinostomatidae) in the golden hamster, Mesocricetus auratus. J. Parasitol. 72(1): 142-147.
Fried, B. 1984. Infectivity, growth and development of Echinostoma revolutum (Trematoda) in the domestic chick. J. Helminthol. 58(3): 241-244.
Fried, B. and Graczyk, T.K. 2004. Recent advances in the biology of Echinostoma species in the ‘‘revolutum’’ group. In: Baker, J., Muller, R., Rollinson, D., editors. Advances in Parasitology 58. Academic Press, London; p. 140-195.
Fried, B., Mueller, T.J. and Frazer, B.A. 1997. Observations on Echinostoma revolutum and Echinostoma trivolvis in single and concurrent infections in domestic chicks. Int. J. Parasitol. 27(11): 1319-1322.
Fujino, T., Nakano, T., Washioka, H., Tonosaki, A., Ichikawa, H. and Fried, B. 2000. Comparative ultrastructure of eggs in Echinostoma paraensei, E. caproni, and E. trivolvis (Trematoda: Echinostomatidae). Parasitol. Res. 86(5): 427-430.
Hosier, D.W. and Fried, B. 1986. Infectivity, growth and distribution of Echinostoma revolutum in Swiss Webster and ICR mice. Proc. Helminthol. Soc. Washington. 53(2): 173-176.
Huffman, J.E. and Fried, B. 1990. Echinostoma and Echinostomiasis. In: Baker, J., Muller, R., editors. Advances in Parasitology 29. Academic Press, London; 1990. p. 215-270.
Humphries, J.E., Reddy, A. and Fried, B. 1997. Infectivity and growth of Echinostoma revolutum (Froelich, 1802) in the domestic chick. Int. J. Parasitol. 21(1): 129-130.
Hussein, A.A., Hassan, I.M. and Khalifa R.M.A. 2010. Development and hatching mechanism of Fasciola eggs, light and scanning electron microscopic studies. Saudi J. Biol. Sci. 17(3): 247-251.
Idris, N., and Fried, B. 1996. Development, hatching and infectivity of Echinostoma caproni (Trematoda) eggs, and histologic and histochemical observations on the miracidia. Parasitol. Res. 82(2): 136-142.
Kanev, I. 1994. Life-cycle, delimitation and redescription of Echinostoma revolutum (Froelich, 1802) (Trematoda: Echinostomatidae). Syst. Parasitol. 28(2): 125-144.
Krejci, K.G. and Fried, B. 1994. Light and scanning electron microscopic observations of the eggs, daughter rediae, cercariae, and encysted metacercariae of Echinostoma trivolvis and E. caproni. Parasitol. Res. 80(1): 42-47.
Lee, J.J., Jung, B.K., Lim, H., Lee, M.Y., Choi, S.Y., Shin, E.H., and Chai, J.Y. 2012. Comparative morphology of minute intestinal fluke eggs that can occur in human stools in the Republic of Korea. Korean J. Parasitol. 50(3): 207-213.
Munoz-Antoli, C., Sotillo, J., Monteagudo, C., Fried, B., Marcilla, A. and Toledo, R. 2007. Development and pathology of Echinostoma caproni experimentally infected mice. J. Parasitol. 93(4): 854-859.
Nollen, P.M. 1994. The hatching behavior of Echinostoma trivolvis miracidia and their responses to gravity, light and chemicals. Int. J. Parasitol. 24(5): 581-587.
Odaibo, A.B., Christensen, N.O. and Ukoli F.M.A. 1988. Establishment, survival and fecundity in Echinostoma caproni (Trematoda) infections in NMRI mice. Proc. Helminthol. Soc. Washington. 55(2): 265-269.
Odaibo, A.B., Christensen, N.O. and Ukoli F.M.A. 1989. Further studies on the population regulation in Echinostoma caproni infections in NMRI mice. Proc. Helminthol. Soc. Washington. 56(2): 192-198.
Schmidt, J. 1998. Glycan vesicle formation in vitellocytes and hatching vacuoles in eggs of Echinostoma caproni and Fasciola hepatica (Digenea). Tissue Cell. 30(4): 416-426.
Srisawangwong, T., Chantaluk, S., Sithithaworn, P., and Charoensiri, D.J. 2004. Infectivity, growth and fecundity of Echinostoma malayanum in mice. Southeast Asian J. Trop. Med. Public Health. 35(1): 302-305.
Toledo, R. 2009. Echinostomes in the definitive host: A model for the study of host-parasite relationships. In: Fried, B., Toledo, R., editors. The Biology of Echinostomes. Springer, New York, p. 89-109.
Toledo, R., Carpena, I., Espert, A., Sotillo, J., Munoz-Antoli, C. and Esteban, J.G. 2006. A Quantitative approach to the experimental transmission success of Echinostoma friedi (Trematoda: Echinostomatidae) in rats. J. Parasitol. 92(1): 16-20.
Toledo, R., Espert, A., Carpena, I., Munoz-Antoli, C. and Esteban, J.G. 2003. An experimental study of the reproductive success of Echinostoma friedi (Trematoda: Echinostomatidae) in the golden hamster. Parasitol. 126(5): 433-441.
Toledo, R., Espert, A., Carpena, I., Munoz-Antoli, C., Fried, B. and Esteban J.G. 2004. The comparative development of Echinostoma caproni (Trematoda: Echinostomatidae) adults in experimentally infected hamsters and rats. Parasitol. Res. 93(6): 439-444.