ความชุก และปัจจัยเสี่ยงของการติดเชื้อ Anaplasma marginale ในโคเนื้อในพื้นที่เขตรักษาพันธุ์สัตว์ป่าสลักพระ จังหวัดกาญจนบุรี
Main Article Content
บทคัดย่อ
การศึกษาครั้งนี้มีวัตถุประสงค์เพื่อศึกษาความชุกและปัจจัยเสี่ยงของการติดเชื้อ Anaplasma marginale ของโคเนื้อที่เลี้ยงภายในเขตอนุรักษ์พันธุ์สัตว์ป่าสลักพระ จังหวัดกาญจนบุรี โดยเก็บตัวอย่างเลือดโคเนื้อจำนวน 244 ตัวอย่างจากพื้นที่เขตรักษาพันธุ์สัตว์ป่าสลักพระ ประกอบด้วยพื้นที่ในเขตอำเภอเมือง(94 ตัวอย่าง) อำเภอศรีสวัสดิ์ (25 ตัวอย่าง) และอำเภอบ่อพลอย (125 ตัวอย่าง) โดยทำการตรวจหาการติดเชื้อ A. marginale โดยเทคนิคปฏิกิริยาลูกโซ่โพลิเมอเรส (PCR- Polymerase chain reaction) จากผลการตรวจพบเชื้อ A. marginale ทั้งหมดร้อยละ 54.1 (132/244) และปัจจัยที่นำมาศึกษาการติดเชื้อ A. marginale ประกอบด้วย พื้นที่ อายุ เพศ ขนาดฝูง ระบบการเลี้ยง ความหนาแน่นของจำนวนแมลง การถ่ายพยาธิ สัตว์เลี้ยงชนิดอื่นในฟาร์ม จำนวนเห็บที่พบบนตัวและคอกสัตว์ และพื้นที่บริเวณเลี้ยงสัตว์ พบว่าอำเภอบ่อพลอยมีการติดเชื้อ A. marginale สูงสุดร้อยละ 77.7 (73/125) รองลงมาคืออำเภอเมืองร้อยละ 45.7 (43/94) และอำเภอศรีสวัสดิ์ร้อยละ 28.07 (16/25) ปัจจัยที่มีอิทธิพลต่อการติดเชื้อ A. margianle คือ อายุ ขนาดฝูง และความหนาแน่นของจำนวนแมลง (P<0.05) จากผลการศึกษาครั้งนี้ได้ยืนยันถึงการติดเชื้อของโคเนื้อที่อาจเป็นพาหะของโรค Anaplasmosis และเป็นส่วนสำคัญของการแพร่กระจายเชื้อไปยังสัตว์ป่าที่อยู่บริเวณใกล้เคียง
Article Details
เอกสารอ้างอิง
คณะกรรมการยุทธศาสตร์โคเนื้อกรมปศุสัตว์. 2555. ยุทธศาสตร์โคเนื้อพ.ศ. 2555-2559. สํานักส่งเสริมและพัฒนาการปศุสัตว์กรมปศุสัตว์ กระทรวงเกษตรและสหกรณ์. หน้า 6-24.
จักริน ศรีวโรทัย มนต์ชัย ดวงจินดา วิโรจน์ ภัทรจินดา ยุพิน ผาสุข อนันตชัย ชัยยศวิทยากุล และยวงยศ จินดาทะจักร. 2551. การตรวจหาโรคไข้เห็บโดยใช้วิธี PCR ในโคนมพันธุ์ TMZ. วารสารวิจัย มข. 13(1): 55-62.
นิดารัตน์ ไพรคณะฮก เชาวฤทธิ์ บุญมาทิต และ นพพร ศราธพันธุ์. 2543. สภาวะของโรคและการทำนายความเสี่ยงต่อการติดเชื้อโรคไข้เห็บโคของโคนมในบางจังหวัดของประเทศไทย. วารสารสัตวแพทย์. 10(1): 13-23.
ปิยะ อรัณยกานนท์ กิจ ธีระพัฒน์ และรำพึง ดิสสะมาน. 2509. การศึกษาภูมิคุ้มกันของโคพันธุ์ต่างประเทศที่ฉีดวัคซีนอนาพลาสโมซีส. รายงานการประชุมทางวิชาการเกษตรศาสตร์ ครั้งที่ 5 สาขาพืชและชีววิทยา สาขาสัตว์ และสาขาเศรษฐศาสตร์เกษตร ณ มหาวิทยาลัย เกษตรศาสตร์. หน้า 403-408.
รุจีรัตน์ วรสิงห์ และสุธี รัตนะ. 2550. ปรสิตในทางเดินอาหารและในเลือดโคที่ตรวจพบในพื้นที่ลุ่มน้ำปากพนัง จังหวัดนครศรีธรรมราช. เรื่องเต็มการประชุมทางวิชาการของมหาวิทยาลัยเกษตรศาสตร์ ครั้งที่ 45: สาขาสัตว์ และสัตวแพทยศาสตร์. หน้า 329-338.
วีระศักดิ์ ฟุ้งเฟื่อง วัชราภรณ์ รวมธรรม กฤติยา เลิศชุณหะเกียรติ กาญจน์ คุ้มทรัพย์ และสากล กาญจนรจิต. 2549. การติดเชื้อ Anaplasma ในเนื้อทรายจากสถานีวิจัยเพาะเลี้ยงสัตว์ป่าห้วยทรายในจังหวัดเพชรบุรี. การประชุมทางวิชาการของมหาวิทยาลัยเกษตรศาสตร์ ครั้งที่ 44 : สาขาสัตว์ สาขาสัตวแพทยศาสตร์. หน้า 557-560.
สถาพร จิตตปาลพงศ์ และฉวีวรรณ เลียงวิจักษ์. 2531. การสำรวจพยาธิโปรโตซัวในเลือดของโคมนมที่หนองโพ. การประชุมทางวิชาการของมหาวิทยาลัยเกษตรศาสตร์ ครั้งที่ 26. หน้า 117-122.
สำนักการป่าชุมชน กรมป่าไม้. 2558. ฐานข้อมูลป่าชุมชน. Online available: http://www. forest.go.th/community_extension/index.php
อิทธิพล ชัยชนะพูนผล และพัชรา วิทูระกูล. 2539. อัตราการติดโรคพยาธิของโคนมในภาคเหนือ. การประชุมทางวิชาการของมหาวิทยาลัย เกษตรศาสตร์ ครั้งที่ 34 สาขาสัตว์ สัตวแพทยศาสตร์. หน้า 280-288.
อุษา เชษฐา รุจีรัตน์ วรสิงห์ และสนอง ศรีนันทพันธ์. 2538. การศึกษาปัญหาพยาธิในโคนมภาคใต้. การประชุมทางวิชาการของมหาวิทยาลัยเกษตรศาสตร์ ครั้งที่ 33 สาขาสัตว์ สัตวแพทยศาสตร์. หน้า 398-407.
Baldacchino, F., Muenworn, V., Desquesnes, M., Desoli, F., Charoenviriyaphap, T. and Duvallet, G. 2013. Transmission of pathogens by Stomoxys flies (Diptera, Muscidae): A review. Parasite. 20: 26
Carelli, G., Decaro, N., Lorusso, A., Elia, G., Lorusso, E. and Mari, V. 2007. Detection and quantification of Anaplasma marginale DNA in blood samples of cattle by real-time PCR. Vet. Microbiol. 124: 107-114.
Costa, V.M.M., Ribeiro, M.F.B., Duarte, A. L.L., Mangueira, J. M., Pessoa, A.F.A., Azevedo, S. S., Barros, A.T.M., Riet-Correa, F. and Labruna, M. B. 2013. Seroprevalence and risk factors for cattle anaplasmosis, babesiosis, and trypanosomiasis in a Brazilian semiarid region. Rev. Bras. Parasitol. Vet. Jaboticabal. 22: 207-213.
De la Fuente, J., Bussche, R.A., Prado, T.M. and Kocan, K.M. 2003. Anaplasma marginale msp1a genotype evolved underpositive selection pressure but are not markers for geographic isolates. J. Clin. Microbiol. 41: 1609–1616.
De la Fuente, J.,Passos, L.M.F., Bussche, R.A. van den, Ribeiro,M.F.B., Facury-Filho, E.J. and Kocan,K.M. 2004: Geneticdiversity and molecular phylogeny of Anaplasma marginale isolates from Minas Gerais, Brazil. Vet. Parasitol. 121: 307–316.
De la Fuente, J., Massung, R. B., Wong, S. J., Chu, F. K., Lutz, M. L., Meli, F. D., Loewenich, A.,
Grzeszczuk, A., Torina, S., Caracappa, A. J., Mangold, V., Naranjo, S., Stuen S. and Kocan, K.M. 2005. Sequence analysis of the msp4 gene of Anaplasma marginalestrains. J. Clin. Microbiol. 43: 1309–1317.
Gale, K.R., Dimmock, C.M., Gartside, M., Leatch, G. 1996. Anaplasma marginale: detection of carrier cattle by PCR. Int. J. Parasitol. 26: 1103–1109.
Kaewhom, P. 2014. Molecular detection of trypanosoma evansi among cattle and buffaloes blood. J. Mahanakorn Vet. Med. 9(1): 49-61.
Kocan, K.M., de la Fuente, J., Bouin, E.F., Coetzee, J.F. and Ewing, S.A.2010. The natural history of Anaplasma marginale. Vet. Parasitol. 167: 95-107.
Muenworn, V., Duvallet, G., Thainchum, K., Tuntakom, S., Tanasilchayakul, S., Prabaripai, A., Akratanakul, P., Sukonthabhirom, S. and Chareonviriyaphap, T. 2010. Geographic distribution of Stomoxyine flies (Diptera: Muscidae) and diurnal activity of Stomoxys calcitrans in Thailand. J. Med. Entomol. 47: 791-797.
OIE. 2012: Bovine Anaplasmosis. OIE manual of diagnostic tests and vaccines for terrestrial animals, 7th Edition. Office International des Epizooties, Paris, Chapter 2.4.1.
Rodriguez-Vivas, R. I., Mata, Y., Perez, E. and Wagner, G. 2004. The effect of management factors on the seroprevalence of Anaplasma marginale in Bos indicus cattle in the Mexican Tropics. Trop. Anim. Health Prod. 36: 135-143.
Saetiew, N., Simking, P., Saengow, S., Arunvipas, P., Wongnarkpet, S., Sarataphan, N. and Jittapalapong, S. 2012. Molecular prevalence of Anaplasma spp. infections of dairy cows inThailand. Conference of the Society for Tropical Veterinary Medicine, Phuket, Thailand (June18-21): 56.
Sambrook, J and Russel, D.W. 2001. Rapid isolation of yeast DNA. In: Molecular cloning, a laboratory manual (Sambrook J. and Russel D.W., eds.). Cold Spring Harbor Laboratory, New York, 631-632.
Silva, J. B. da, Castro, G. N. de S. and Fonseca, A. H. 2014. Longitudinal study of risk factors for anaplasmosis and transplacental transmission in herd cattle. Semina: CienciasAgrarias, Londrina. 35: 2491-2500.