การตรวจหาเชื้อแบคทีเรีย Coagulase-positive Staphylococci ที่ดื้อต่อยาในกลุ่มเมทธิซิลินที่แยกจากสุนัขที่เข้ารับการรักษาในโรงพยาบาลสัตว์คณะสัตวแพทยศาสตร์ มหาวิทยาลัยเกษตรศาสตร์ โดยใช้เทคนิค Duplex PCR
Main Article Content
บทคัดย่อ
ในปัจจุบัน Methicillin-resistant coagulase-positive Staphylococci (MRCPS) ในสุนัขเริ่มมีการพบและก่อปัญหามากขึ้น วิธีการตรวจสอบหาเชื้อในกลุ่มนี้ที่ใช้ในห้องปฏิบัติการทั่วไปคือ หาความไวต่อยาปฏิชีวนะ (Drugs susceptibility) โดยการใช้เทคนิค disk diffusion แต่อย่างไรก็ตามวิธีนี้มีข้อจำกัดคือ จำนวนเชื้อที่ใช้เวลาที่ใช้สาหรับการบ่มเชื้ออุณหภูมิ และ pH ของอาหารเลี้ยงเชื้อ ในการศึกษาครั้งนี้จึงใช้เทคนิค Duplex PCR ที่มีข้อดีคือ มีความไวและแม่นยำสูงเข้ามาช่วยยืนยันการดื้อยาของเชื้อ Methicillin-resistant coagulase-positive Staphylococci (MRCPS) โดยหายีนดื้อยา mec A และ ยีน fem B ซึ่งเป็นยีนที่จำเพาะต่อเชื้อในกลุ่ม coagulase-positive Staphylococci ทำการเก็บตัวอย่างจากสุนัขที่เข้ารับการักษาในโรงพยาบาลสัตว์ทั้งหมด 115 ตัว โดยวิธี nasal swab และ wound swab สามารถแยกเชื้อกลุ่ม coagulase-positive Staphylococci ได้ทั้งหมด 110 ตัวอย่าง (จากจมูก 60 ตัวอย่าง และแผล 50 ตัวอย่าง ) เมื่อนำมาทดสอบ disk diffusion ได้ผลการดื้อต่อยาปฏิชีวนะเมทธิซิลลิน 16 ตัวอย่าง และน่าสงสัยว่าดื้อต่อยาเมทธิซิลลิน (intermediated) 2 ตัวอย่าง หลังจากนั้นนำตัวอย่างไปตรวจโดยเทคนิค duplex PCR เพื่อหายีน mec A และ fem B พบว่าในกลุ่มที่ดื้อต่อยาเมทธิซิลลิน ให้ผลบวกทั้งหมด 16 ตัวอย่าง สำหรับในกลุ่มที่น่าสงสัยว่าดื้อต่อยาเมทธิซิลลิน (intermediated) ให้ผลบวก1 ตัวอย่าง และผลลบ 1 ตัวอย่าง การศึกษาครั้งนี้แสดงให้เห็นว่ามีการแตกต่างของผลการทดลองทั้ง 2 วิธี ซึ่งเป็นได้ว่าจะมาจากข้อเสียของเทคนิค disk diffusion ในขณะที่การตรวจหา ยีน mec A เป็นวิธีที่ได้รับการยอมรับว่าเป็น Gold – Standard สำหรับการตรวจหาเชื้อ methicillin-resistant coagulase-positive Staphylococci (MRCPS) ดังนั้นในการตรวจหาเชื้อในกลุ่ม methicillin-resistant coagulase-positive Staphylococci (MRCPS) จึงมีความจำเป็นที่จะต้องยืนยันโดยใช้เทคนิค duplex PRC
Article Details
เอกสารอ้างอิง
Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI). 2009. Performance Standards for Antimicrobial Susceptibility Testing: Nineteenth Informational Supplement. Approved standard, 10th ed. M02-A10 Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI), Wayne, P.A. Prevalence of methicillin-resistant S.aureus among staff and pets in a small animal referral hospital in the UK. J. Antimicrob. Chemother. 56: 692–697.
Jonas, D., Speck, M., Daschner F. D. and Grundmann, H. 2002. Rapid PCR-Based identification of Methicillin-Resistant Staphylococcus aureus from Screening Swabs. J. Clin. Microb. 40: 1821-1823.
Datta, P., Gulati, N., Singla, N., Vasdeva, H. R. and Bala, K. 2011. Evaluation of various methods for the detection of meticillin resistant Staphylococcus aureus strains and susceptibility patterns. J. Med. Microb. 60: 1613-1616.
Devriese, L.A., Vancanneyt, M., Baele, M., Vaneechoutte, M., De Graef, E., Snauwaert, C., Cleenwerck, I., Dawyndt, P., Swings, J., Decostere. A. and Haesebrouck, F. 2005. Staphylococcus pseudintermedius sp. nov., a coagulase-positive species from animals. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 55: 1569–1573.
Hartman, B. J. and Tomasz, A. 1984. Low-affinity penicillin- binding-protein associated with b-lactam resistance in Staphylococcus aureus. J. Bacteriol. 158: 513–516.
John, H. L. 2003. Methicillin (Oxacillin)-Resistant Staphylococcus aureus Strains Isolated from Major Food Animals and Their Potential Transmission to Humans. Appl. Environ. Microb. 69: 6489-6494.
Towner, K. J., Talbot D. C. S., Curran R., Webster C. A. and Humphreys H. 1998. Development and evaluation of a PCR-based immunoassay for the rapid detection of methicillin-resistant Staphylococcus aureus. J. Med. Microb. 47: 607-613.
Leonard, F.C. and Markey, B.K. 2008. Meticillin-resistant S. aureus in animals: A review. The Vet J. 175: 27-36.
Madiraju, M.V.V.S., Brunner, D.P. and Wilkinson., B.J. 1987. Effects of temperature, NaCl, and methicillin on penicillin-binding proteins, growth, peptidoglycan synthesis, and autolysis in MRSA. Antimicrob. Agents. Chemother. 31: 1727-1733.
Morris D.O., Rook K.A., Shofer F.S., Rankin S.C. 2006. Screening of Staphylococcus aureus, Staphylococcus intermedius, and Staphylococcus schleiferi isolates obtained from small companion animals for antimicrobial resistance: A retrospective review of 749 isolates (2003–04). Vet. Dermatol. 17: 332–337.
Morris, D.O., Mauldin, E.A., O’Shea, K., Shofer, F.S. and Rankin, S.C. 2006. Clinical, microbiological, and molecular characterization of methicillin-resistant Staphylococcus aureus infections of cats. Am. J. Vet. Res. 67: 1421–1425.
Murray, P.R., Baron, E.J., Jorgensen, J.H., Pfaller, M. A. and Yolken, R.H. 2003. Manual of Clinical Microbiology, 8th edn. Washington, DC: American Society for Microbiology.
Sierra-Madero, J.G., Knapp, C., Karaffa, C. and Washington, J.A. 1988. Role of beta-lactamase and different testing conditions in oxacillin-border line-susceptible Staphylococci. Antimicrob. agents chemother. 32: 1754-1757.
Skov, R., Smyth, R., Larsen, A. R., Bolmstrom, A., Karlsson, A., Mills, K., Frimodt-Moller, N. and Kahlmeter, G. 2006. Phenotypic detection of methicillin resistance in Staphylococcus aureus by disk diffusion testing and Etest on Mueller-Hinton agar. J. Clin. Microbiol. 44: 4395–4399.
Takashi, S., Ken, K., Yoshikazu, T., Namiko, T., Shinichi, K. and Keiichi H. 2006. Methicillin-Resistant Staphylococcus pseudintermedius in a Veterinary Teaching Hospital. J. Clin. Microb. 45: 1118-1125.
Van Duijkeren, E., Box, E., Heck, A.T.A., Wannet, M.E.O.C. and Fluit, A.C. 2004. Methicillin-resistant Staphylococci isolated from animals. Vet. Microb. 103: 91-97.