ความหนาของนิวโรเอพิทีเลียมในระยะการเจริญของเอ็มบริโอไก่ไข่พันธุ์ฮายไลน์บราวน์

Main Article Content

Phinidda Cha-umphol
Pannigan Chaichanasak

บทคัดย่อ

การศึกษาเอ็มบริโอลูกไก่มีความสำคัญอย่างมากในการเป็นต้นแบบสำหรับการพัฒนาของเอ็มบริโอระยะแรก โดยเฉพาะในเรื่องของระบบประสาทที่มีการพัฒนาในระยะแรกสุด การเจริญของเซลล์ Neuroblast ในเนื้อเยื่อ Neuroepithelium จะแบ่งตัวอย่างรวดเร็วและมีการสร้างตัวเป็น Neural tube ก่อนที่จะพัฒนาเป็นระบบประสาทส่วนกลางต่อไป และด้วยเหตุนี้เองผู้วิจัยจึงต้องการศึกษาขนาดความหนาของ Neuroepithelium ในระยะของการพัฒนาของเอ็มบริโอไก่ไข่สายพันธุ์ “ฮายไลน์บราวน์” ในระยะการเจริญที่ 10, 12 และ 18 ของไก่ในประเทศไทย  ด้วยการทำสไลด์ตัวเอ็มบริโอไก่ไข่ทั้งสามระยะดังกล่าวพร้อมตรวจสอบโครงสร้างที่ได้ต้องเป็นไปตามอายุกับการพัฒนาตามที่เคยมีรายงานมาก่อนแล้ว จากนั้นจึงใช้ภาพจากการส่องผ่านกล้องจุลทรรศน์วัดขนาดความหนาของเนื้อเยื่อด้วยโปรแกรมจากกล้องจุลทรรศน์ ซึ่งได้ผลการวิจัยดังนี้คือ ระยะที่ 10 มีความหนาเฉลี่ยเท่ากับ 37.77 ไมโครเมตร ส่วนระยะ 12 มีความหนาเฉลี่ยเท่ากับ 29.02 ไมโครเมตร และในระยะที่ 18 หรือเอ็มบริโออายุได้ 3 วันจะมีความหนาของเนื้อเยื่อเฉลี่ยเท่ากับ 27.57 ไมโครเมตร  ซึ่งจะตรงกับรายงานวิจัยการศึกษาของเนื้อเยื่อประสาทที่กล่าวว่ามีการยืดขยายตัวในแนวระนาบก่อนเพื่อที่จะพัฒนาส่วนของสมองโดยการปรับเนื้อเยื่อและช่องน้ำสมอง จากการเจริญของหลอดประสาทเป็นเนื้อเยื่อสมองสามส่วนในระยะที่ 10 คือสมองส่วน Prosencephalon Mesencephalon และ Rhombencephalon ตามลำดับ ต่อจากนั้นเมื่อเข้าระยะที่ 12 และระยะที่ 18 จะเจริญพัฒนาให้เป็นเนื้อเยื่อสมองทั้งห้าส่วนคือ Telencephalon Diencephalon Mesencephalon Metencephalon และ Myelencephalon ที่ยังต้องอยู่ในพื้นที่จำกัดคือ Area pellucida จึงทำให้เนื้อเยื่อ Neuroepithelium มีความหนาที่ลดลง 

Article Details

รูปแบบการอ้างอิง
Cha-umphol, P. และ Chaichanasak, P. (2019) “ความหนาของนิวโรเอพิทีเลียมในระยะการเจริญของเอ็มบริโอไก่ไข่พันธุ์ฮายไลน์บราวน์”, สัตวแพทย์มหานครสาร, 14(1), น. 13–22. available at: https://li01.tci-thaijo.org/index.php/jmvm/article/view/159263 (สืบค้น: 21 ธันวาคม 2025).
ประเภทบทความ
บทความวิจัย

เอกสารอ้างอิง

Hamburger, V. and H. L. Hamilton. 1951. A series of normal stages in the development of the chick embryo. J. Morphol. 88(1): 49-92.
Hamburger, V. and H. L. Hamilton. 1992. A series of normal stages in the development of the chick embryo. Dev. Dyn. 195: 231-72.
Lawson, A., and M. A. 1992. England. Studies on wound healing in the neuroepithelium of the chick embryo. Anat. Rec. 233(2): 291-300.
Nagele, R. G., K. T. Bush, F. J. Lynch, and H. Y. Lee. 1991. A morphometric and computer-assisted three-dimensional reconstruction study of neural tube formation in chick embryos. Anat. Rec. 231(4): 425-436.
Psychoyos, D, and R. Finnell. 2009. Assay for neural induction in the chick embryo. J. Vis. Exp. 13:(24): 1027
Witschi, E. 1956. Development of Vertebrates. Saunders, Philadelphia.
Zhou, Z., Z. Chen, J., Shan, W. Ma, L. Li, J. Zu, and J. Xu. 2015. Monitoring brain development of chick embryos in vivo using 3.0 T MRI: subdivision volume change and preliminary structural quantification using DTI. BMC. Dev. Biol. 15: 29.