ผลการใช้วัตถุดิบโปรตีนทางเลือกร่วมกับการเสริมเอนไซม์โปรติเอสในอาหารต่อสมรรถภาพการผลิตและค่าการย่อยได้แบบปรากฏของโปรตีนที่ลำไส้เล็กส่วนปลายในไก่เนื้อ
Main Article Content
บทคัดย่อ
การศึกษาผลของการได้รับอาหารที่มีกากเรปซีดและเนื้อและกระดูกป่นเป็นวัตถุดิบโปรตีนทางเลือกร่วมกับการเสริมเอนไซม์โปรติเอสต่อสมรรถภาพการผลิต ลักษณะซาก และค่าการย่อยได้แบบปรากฏของโปรตีนที่ลำไส้เล็กส่วนปลายในไก่เนื้อ ประกอบด้วย 2 การทดลอง ได้แก่ การทดลองที่ 1 การศึกษาสมรรถภาพการผลิตและลักษณะซาก ใช้ไก่ Ross 308 เพศผู้ จำนวน 1,200 ตัว แบ่งเป็น 4 กลุ่ม กลุ่มละ 10 ซ้ำ ซ้ำละ 30 ตัว และการทดลองที่ 2 การศึกษาค่าการย่อยได้แบบปรากฏของโปรตีนที่ลำไส้เล็กส่วนปลาย ใช้ไก่ Ross 308 เพศผู้ จำนวน 120 ตัว แบ่งเป็น 4 กลุ่ม กลุ่มละ 6 ซ้ำ ซ้ำละ 5 ตัว ทั้งสองการทดลองใช้อาหารทดลองเหมือนกัน คือ 1) อาหารพื้นฐานข้าวโพดและ
กากถั่วเหลือง [CS], 2) อาหาร CS ที่ลดโปรตีน 0.5% + เอนไซม์โปรติเอส 125 พีพีเอ็ม [CS(-)+P], 3) อาหารพื้นฐานที่มีกากเรปซีดและเนื้อและกระดูกป่น [CSRM] และ 4) อาหาร CSRM ที่ลดโปรตีน 0.5% + เอนไซม์โปรติเอส 125 พีพีเอ็ม [CSRM(-)+P] โดยคำนวณให้มีระดับโปรตีนและพลังงานที่ใช้ประโยชน์ได้เท่ากันทุกกลุ่ม ใช้แผนการทดลองแบบสุ่มสมบูรณ์ ผลการทดลองพบว่าในระยะไก่เล็ก (อายุ 1-17 วัน) ไก่เนื้อกลุ่ม CSRM มีน้ำหนักตัวที่เพิ่มขึ้นด้อยกว่ากลุ่ม CS (P<0.05) ขณะที่กลุ่ม CS(-)+P และ CSRM(-)+P มีน้ำหนักตัวที่เพิ่มขึ้น ปริมาณอาหารที่กิน อัตราการเปลี่ยนอาหารเป็นน้ำหนักตัว และอัตราการตายเทียบเท่ากับกลุ่ม CS และ CSRM ตามลำดับ ทั้งนี้ไม่พบความแตกต่างของสมรรถภาพการผลิตในระยะไก่รุ่น (อายุ 18-35 วัน) และตลอดระยะทดลอง (35 วัน) ในทุกกลุ่มทดลอง นอกจากนี้พบว่ากลุ่ม CSRM และ CSRM(-)+P มีเปอร์เซ็นต์หน้าอกต่ำกว่ากลุ่ม CS (P<0.05) ผลจากการทดลองไม่พบความแตกต่างของค่าการย่อยได้แบบปรากฏของโปรตีนที่ลำไส้เล็กส่วนปลายระหว่างกลุ่มทดลอง อย่างไรก็ตามพบว่าไก่เนื้อกลุ่ม CSRM(-)+P ให้ผลตอบแทนทางเศรษฐกิจดีกว่ากลุ่มอื่น ดังนั้นจึงสามารถใช้กากเรปซีดและเนื้อและกระดูกป่นเป็นวัตถุดิบโปรตีนทางเลือกร่วมกับเสริมเอนไซม์โปรติเอสในอาหารไก่เนื้อที่มีการลดระดับโปรตีน เพื่อลดต้นทุนการผลิตไก่เนื้อได้
Article Details
เอกสารอ้างอิง
Angel, R. and J. O. B. Sorbara. 2014. Why is it important to understand substrates if we are to optimize exogenous enzyme efficacy? Poult. Sci. 93: 2375-2379.
Aviagen. 2014. Ross 308 Broiler Nutrition Specifications. Available Source: https://en.aviagen.com/assets/Tech_Center/Ross_Broiler/Ross308BroilerNutritionSpecs2014-EN.pdf, March 5, 2016.
Haase, V. H. 2010. Hypoxic regulation of erythropoiesis and iron metabolism. Am. J. Physiol. Renal. Physiol. 299: F1-F13.
Kaczmarek, S. A., A. Barri, M. Hejdysz, and A. Rutkowski. 2016. Effect of different doses of coated butyric acid on growth performance and energy utilization in broilers. Poult. Sci. 95: 851-859.
Khattak, F. M., T. N. Pasha, Z. Hayat, and A. Mahmud. 2006. Enzymes in poultry nutrition. J. Anim. Pl. Sci. 16(1-2): 1-7.
Liu, M. 2000. Nutritional evaluation of high ash meat and bone meal for poultry. MS Thesis, University of Manitoba Winnipeg, Canada.
Meng, X., B. A. Slominski, C. M. Nyachoti, L. D. Campbell, and W. Guenter. 2005. Degradation of cell wall polysaccharides by combinations of carbohydrase enzymes and their effect on nutrient utilization and broiler chicken performance. Poult. Sci. 84: 37-47.
Miraglia, D., R. Mammoli, R. Branciari, D. Runucci, and B.T. Cenci Goga. 2006. Characterization of muscle fiber type and evaluation of the presence of giant fibres in two meat chicken hybrids. Vet. Res. Commun. 30(Suppl. 1): 357-360.
Organisation for Economic Co-operation and Development and Food and Agriculture Organization of the United Nations (OECD-FAO). 2018. OECD-FAO Agricultural Outlook 2018-2027. OECD Publishing. Paris. 107 p.
Rada, V., M. Foltyn, M. Lichovnikova, and A. Musilova. 2013. Effects of protease supplementation of low protein broiler diets on growth parameters and carcass characteristic. Proceedings of International PhD Students Conference, Mendel University in Brno, Czech Republic, 20-21 November 2013: 268-272.
Salazar-Villanea, S., E. M. A. M. Bruininx, H. Gruppen, W. H. Hendriks, P. Carré, A. Quinsac and A. F. B. van der Poel. 2016. Physical and chemical changes of rapeseed meal protein during toasting and their effects on in vitro digestibility. J. Anim. Sci. Biotechnol. 7: 62.
Ward, N. E. 2014. Choosing enzyme solution depends on many factors. Feedstuffs 86: 1-4.
West, G. and G. Norton. 1991. Rapeseed proteinase inhibitors, pp. 928-933. Proceeding of the 8th International Rapeseed Congress. Saskatchewan, Canada.
Yan, F., J. Dibner, C. D. Knight, M. Vazquez-Anon, N. Odetallah, and S. Carter. 2011. Effect of dietary protein and protease supplementation on performance and gut health of broiler chicks. Poult. Sci. 90(E-Suppl. 1): 19.
Yuan, L., S. Q. Wang, Z. X. Wang, H. Zhu, and K. Huang. 2015. Effects of exogenous protease supplementation on endogenous trypsin activity and gene expression in broilers. Genet. Mol. Res. 14: 13633-13641.