ผลของสารกระตุ้นต่อการเจริญเติบโตและการเหนี่ยวนำการสร้างสารฟรุกแตนของแก่นตะวัน
คำสำคัญ:
แก่นตะวัน, สารกระตุ้น, อินนูลิน, ฟรุกโตโอลิโกแซคคาไรค์บทคัดย่อ
การวิจัยนี้มีวัตถุประสงค์เพื่อศึกษาผลของสารกระตุ้น จำนวน 2 ชนิด ได้แก่ สารละลายเมทิลจัสโมเนทและสาร สกัดจากยีสต์ที่ระดับความเข้มข้นแตกต่างกันต่อการเจริญเติบโตและการเหนี่ยวนำการสร้างสารฟรุกแตนของแก่นตะวันในสภาพแปลงปลูก วางแผนการทดลองแบบสุ่มบล็อกสมบูรณ์ (Randomized Complete Block Design : RCBD) ทำการทดลองละ 3 ซ้ำๆ ละ 10 ต้น ทำการฉีดพ่นสารกระตุ้นเพียงครั้งเดียวหลังการย้ายปลูก 30 วัน พบว่า ต้นแก่นตะวันเมื่อได้รับสารกระตุ้นทุกการทดลองส่งผลให้ความสูงต้นไม่มีความแตกต่างกันอย่างมีนัยสำคัญทางสถิติ (p>0.05) มีความสูงต้นอยู่ระหว่าง 1.17-1.43 เมตร ต้นแก่นตะวันที่ได้รับสารกระตุ้นจากชุดควบคุม สารละลายเมทิลจัสโมเนทที่ระดับความเข้มข้น 150 ไมโครโมลาร์ และสกัดยีสต์ที่ระดับความเข้มข้น 4 กรัมต่อลิตร ส่งผลให้เปอร์เซ็นต์น้ำหนักแห้งของต้นไม่แตกต่างกันทางสถิติ (p>0.05) ในขณะที่การใช้สารละลายเมทิลจัสโมเนทที่ระดับความเข้มข้น 100 ไมโครโมลาร์ และสกัดยีสต์ที่ระดับความเข้มข้น 4 กรัมต่อลิตร ส่งผลให้ปริมาณของแข็งที่ละลายได้ในน้ำมีความแตกต่างกันอย่างมีนัยสำคัญทางสถิติ (p<0.05) เมื่อเปรียบเทียบจากชุดควบคุม ทั้งนี้ต้นแก่นตะวันที่ได้รับสารสกัดจากยีสต์ที่ระดับความเข้มข้น 1 กรัมต่อลิตร ส่งผลให้ปริมาณ Reducing Sugar สูงสุด และการให้สารละลายเมทิลจัสโมเนทที่ระดับความเข้มข้น 100 ไมโครโมลาร์ ส่งผลให้แก่นตะวันมีปริมาณ Fructans (Inulin+Fructo-oligosaccharides) สูงสุด ซึ่งให้ผลแตกต่างกันอย่างมีนัยสำคัญทางสถิติ (p<0.05) เมื่อเปรียบเทียบกับชุดควบคุมการวิจัยนี้มีวัตถุประสงค์เพื่อศึกษาผลของสารกระตุ้น จำนวน 2 ชนิด ได้แก่ สารละลายเมทิลจัสโมเนทและ สารสกัดจากยีสต์ที่ระดับความเข้มข้นแตกต่างกันต่อการเจริญเติบโตและการเหนี่ยวนำการสร้างสารฟรุกแตนของแก่นตะวันในสภาพแปลงปลูก วางแผนการทดลองแบบสุ่มบล็อกสมบูรณ์ (Randomized Complete Block Design : RCBD) ทำการทดลองละ 3 ซ้ำๆ ละ 10 ต้น ทำการฉีดพ่นสารกระตุ้นเพียงครั้งเดียวหลังการย้ายปลูก 30 วัน พบว่า ต้นแก่นตะวันเมื่อได้รับสารกระตุ้นทุกการทดลองส่งผลให้ความสูงต้นไม่มีความแตกต่างกันอย่างมีนัยสำคัญทางสถิติ (p>0.05) มีความสูงต้นอยู่ระหว่าง 1.17-1.43 เมตร ต้นแก่นตะวันที่ได้รับสารกระตุ้นจากชุดควบคุม สารละลายเมทิลจัสโมเนทที่ระดับความเข้มข้น 150 ไมโครโมลาร์ และสกัดยีสต์ที่ระดับความเข้มข้น 4 กรัมต่อลิตร ส่งผลให้เปอร์เซ็นต์น้ำหนักแห้งของต้นไม่แตกต่างกันทางสถิติ (p>0.05) ในขณะที่การใช้สารละลายเมทิลจัสโมเนทที่ระดับความเข้มข้น 100 ไมโครโมลาร์ และสกัดยีสต์ที่ระดับความเข้มข้น 4 กรัมต่อลิตร ส่งผลให้ปริมาณของแข็งที่ละลายได้ในน้ำมีความแตกต่างกันอย่างมัยสำคัญทางสถิติ (p<0.05) เมื่อเปรียบเทียบจากชุดควบคุม ทั้งนี้ต้นแก่นตะวันที่ได้รับสารสกัดจากยีสต์ที่ระดับความเข้มข้น 1 กรัมต่อลิตร ส่งผลให้ปริมาณ Reducing Sugar สูงสุด และการให้สารละลายเมทิลจัสโมเนทที่ระดับความเข้มข้น 100 ไมโครโมลาร์ ส่งผลให้แก่นตะวันมีปริมาณ Fructans (Inulin+Fructo-oligosaccharides) สูงสุด ซึ่งให้ผลแตกต่างกันอย่างมีนัยสำคัญทางสถิติ (p<0.05) เมื่อเปรียบเทียบกับชุดควบคุม
เอกสารอ้างอิง
Vorasoot N, Jogloy S. Inulin: Non-digestable cabohydrate as soluable fiber from Kaentawan for human health. Khon Kaen Agric. 2006;34 (2): 85-91.
Orafti. Active food scientific monitor, An Orafti Newsletter, Nr. 12-spring. 2005.
Kolida S, Tuohy K, and Gibson G.R. Prebiotic effects of inulin and oligofructose. British Journal of Nutrition. 2002; 87(2). 193-197.
Singh A, and Dwivedi P. Methyl-jasmonate and salicylic acid as potent elicitors for secondary metabolite production in medicinal plants: A review. Journal of Pharmacognosy and Phytochemistry. 2018;7(1): 750-757.
Putalun W. Plant Tissue Culture: Study Guide for Producing Pharmacologically Active Secondary Substances. Khon Kaen Pimpattana Company Limited, Khon Kaen. 2008;120 p.
Jirapongpattana R, Jirakiattikul Y, Rithichai P. Effects of Jasmonicacid and Yeast Extract on Secondary Metabolite Contents in Shoot Culture of Dioscorea birmanicaPrain & Burkill. Thai Science and Technology Journal. 2017;25(3): 487-496.
Shabani L, Ehsanpour A.A., Asghari G, Emami J. Glycyrrhizin production by in vitro cultured Glycyrrhiza glabra elicited by methyl jasmonate and salicylic acid. Russian Journal of Plant Physiology. 2009;56(5): 621-626.
Chaichana N, Dheeranupattana S. Effects of methyl jasmonate and salicylic acid on alkaloid production from in vitro culture of Stemona sp. International Journal of Bioscience, Biochemistry and Bioinformatics. 2012;2(3): 146-150.
Moharramnejad S, Azam A. T., Panahandeh J, Dehghanian Z, Ashraf M. Effect of methyl jasmonate and salicylic acid on in vitro growth, stevioside production, and oxidative defense system in Stevia rebaudiana. Sugar Tech. 2019;21(6): 1031-1038.
Van Nguyen K, Pongkitwitoon B, Pathomwichaiwat T, Viboonjun U, Prathanturarug S. Effects of methyl jasmonate on the growth and triterpenoid production of diploid and tetraploid Centella asiatica (L.) Urb. hairy root cultures. Scientific reports. 2019;9(1): 1-8.
Marsh Z, Yang T, Nopo-Olazabal L, Wu S, Ingle T, Joshee N, Medina-Bolivar F. Effect of light, methyl jasmonate and cyclodextrin on production of phenolic compounds in hairy root cultures of Scutellaria lateriflora. Phytochemistry. 2014;107: 50-60.
Khitka B. Influence of Methyl Jasmonate on Antioxidant Activity and Nutritional Value of Red Oak Lettuce in Hydroponics Farming System. Khon Kaen Agric. 2014; 42(1): 652-657.
Yodyotee Y. Induced Resistance and Expression of PR-1 Gene in Hevea brasiliensis muell. arg. by Various Stimulants. Degree of Master of Science in Biochemistry. Prince of Songkla University. 2011; 120 p.
Ahmadi F.I., Karimi K, and Struik P.C. Effect of exogenous application of methyl jasmonate on physiological and biochemical characteristics of Brassica napus L. cv. Talaye under salinity stress. South African Journal of Botany. 2018;115: 5-11.
Miller G.L. Use of Dinitrosalicylic Acid Reagent for Determination of Reducing Sugar. Prince of Songkla University Anal. Chem. 1959;31(3), 426–428.
George W. L. Official Methods of Analysis 21th Ed., AOAC INTERNATIONAL, Gaithersburg, MD, Method. 2019.
George W.L. Official Methods of Analysis. 17th Ed., AOAC INTERNATIONAL, Gaithersburg, MD. 2000.
Promchan T, Thanajansri C, Chansanguan P. Effects of Methyl Jasmonate Solution on the Growth Rate of American Marigolds Hybrid. Songklanakarin Journal of Plant Science. 2016; 3(2): 41-48.
Hasanloo T, Khavari-Nejad R.A., Majidi E, Ardakani M.S. Flavonolignan production in cell suspension culture of Silybum marianum, Pharma boil. 2009; 46: 876-882.
ดาวน์โหลด
เผยแพร่แล้ว
รูปแบบการอ้างอิง
ฉบับ
ประเภทบทความ
สัญญาอนุญาต
ลิขสิทธิ์ (c) 2022 วารสารนเรศวรพะเยา
อนุญาตภายใต้เงื่อนไข Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
ผู้นิพนธ์ต้องรับผิดชอบข้อความในบทนิพนธ์ของตน มหาวิทยาลัยพะเยา ไม่จำเป็นต้องเห็นด้วยกับบทความที่ตีพิมพ์เสมอไป ผู้สนใจสามารถคัดลอก และนำไปใช้ได้ แต่จะต้องขออนุมัติเจ้าของ และได้รับการอนุมัติเป็นลายลักษณ์อักษรก่อน พร้อมกับมีการอ้างอิงและกล่าวคำขอบคุณให้ถูกต้องด้วย
