ฤทธิ์ยับยั้งแบคทีเรียและฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระของสารสกัดใบพิกุล
คำสำคัญ:
ฤทธิ์ยับยั้งแบคทีเรีย พิกุลสาร พฤกษเคมี ฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระบทคัดย่อ
งานวิจัยนี้มีจุดประสงค์เพื่อศึกษาฤทธิ์การยับยั้งเชื้อแบคทีเรียของสารสกัดใบพิกุลการตรวจเบื้องต้นเพื่อหาสารพฤกษเคมีและฤทธิ์การต้านอนุมูลอิสระของสารสกัดใบพิกุลการทดสอบฤทธิ์ยับยั้งแบคทีเรียด้วยวิธี agar well diffusion ผลที่ได้พบว่าสารสกัดใบพิกุลสามารถยับยั้งเชื้อแบคทีเรียแกรมบวก Bacillis cereus ATCC 11778, Micrococcus luteus TISTR884, Methicilin Resistant Staphylococcus aureus 142 (MRSA142) และ Staphylococcus aureus TISTR517 ด้วยบริเวณยับยั้งเท่ากับ 21.7, 21.3, 29.0 และ 21.8 มิลลิเมตร ตามลำดับ ในขณะที่แบคทีเรียแกรมลบดื้อต่อสารสกัดใบพิกุล และพบว่าค่าความเข้มข้นต่ำสุดที่สามารถยับยั้ง (MIC) เชื้อแบคทีเรีย B. cereus ATCC 11778 ของสารสกัดใบพิกุลเท่ากับ 9.38 มิลลิกรัมต่อมิลลิลิตร และ MIC สำหรับ M. luteus TISTR884, MRSA142 และ S. aureus TISTR517 มีค่าเท่ากับ 18.75 มิลลิกรัมต่อมิลลิลิตร ค่าความเข้มข้นต่ำสุดในการฆ่า (MBC) เชื้อแบคทีเรีย B. cereus ATCC 11778, M. luteus TISTR884 และ S. aureus TISTR517 ของสารสกัดใบพิกุลในการฆ่า เท่ากับ 300 มิลลิกรัมต่อมิลลิลิตร และ MBC สำหรับ MRSA142 เท่ากับ 600 มิลลิกรัมต่อมิลลิลิตร ตามลำดับ การทดสอบเบื้องต้นเพื่อหาสารพฤกษเคมีผลปรากฏว่า สารสกัดใบพิกุลมีสารฟลาโวนอยด์ฟีนอล และซาโปนิน เป็นองค์ประกอบ สารสกัดใบพิกุลมีกิจกรรมต้านอนุมูลอิสระเท่ากับ 3.2 ไมโครกรัม Ascorbic acid ต่อกรัมน้ำหนักสด และมีค่า IC50 เท่ากับ 23.35 ไมโครกรัมต่อมิลลิลิตร นอกจากนี้พบว่าสารสกัดใบพิกุลมีปริมาณสารฟลาโวนอยด์เป็นองค์ประกอบเท่ากับ 0.8 มิลลิกรัม Quercetin ต่อกรัมน้ำหนักสด ขณะที่ปริมาณสารฟีนอร์ลิกในสารสกัดใบพิกุลเท่ากับ 0.72 มิลลิกรัมต่อกรัม gallic acid ต่อกรัมน้ำหนักสด
เอกสารอ้างอิง
Aziz, A.F.A., & Iqbal, M. (2013). Antioxidant activity and phytochemical composition of Cynometracauliflora.
Journal of Experimental and Integrative Medicine, 3(4), 337-341.
Barreira, J. C., Ferreira, I. C., Oliveira, M. B., & Pereira, J. A. (2010). Antioxidant potential of chestnut (Castanea
sativa L.) and almond (Prunus dulcis L.) by-products. Food Science and Technology International,16(3), 209-16.
Dewanto, V., Wu, X., Adom, K. K., & Liu, R. H. (2002). Thermal processing enhances the nutritional value of tomatoes by increasing total antioxidant activity. Journal of Agricultural and Food Chemistry,8(10), 3010-4.
Frieri, M., Kumarb, K., & Boutinc, A. (2017). Antibiotic resistance. Journal of Infection and Public Health,10, 369-378.
Gadamsetty, G., Maru, S., & Sarada, N.C. (2013). Antioxidant and anti-inflammatory activities of the methanolic leaf extract of traditionally used medicinal plant Mimusops elengi L. Journal of Pharmaceutical and Reserch, 5(6), 125-130.
Ganesh, G., Abhishek, T., Saurabh, M.,& Sarada, N.C. (2014). Cytotoxic and apoptosis induction potential of Mimusops elengi L. in human cervical cancer (SiHa) cell line. Journal of King Saud University - Science, 26, 333–337.
Gill, A. O., & Holley, R. A. (2006). Disruption of Escherichia coli, Listeria monocytogenes and Lactobacillus sakeicellular membranes by plant oil aromatics. International Journal of Food Microbiology, 106, 1-9.
Ikram, E.H.K., Eng, K.H., Jalil, A.M.M., Ismail, A., Idris, S., & Azlan, A. (2009). Antioxidant capacity and total phenolic content of Malaysian underutilized fruits. Journal of Food Composition and Analysis, 22(5), 388-393.
Indrawattana, N., & Vanaporn,Muthita. (2015). Nosocomial infection. Journal of Medicine and Health Sciences,
(1), 81-92.
Murugan, N. B., Mishra, B. K., & Paul. B. (2018). Antioxidant and antibacterial evaluation of medicinal plants used in the starter culture (Wanti) of fermented rice beverage in West Garo hills, Meghalaya. Journal of Pharmacognosy and Phytochemistry, 7(1), 1669-1674.
Mostafa, A.A., Al-Askar, A.A., Almaary, K.S., Dawoud, T.M., Sholkamy, E.N.,& Bakri M.M. (2017). Antimicrobial activity of some plant extracts against bacterial strains causing food poisoning diseases. Saudi Journal of Biological Sciences, 25(2), 361-366
On-Anong, S., Gornganok, P., Kolip, P & Charuwan, D. (2019). Antibacterial and Antioxidant Activity of Nam-Nam Fruit. Extract, 11(2), 156-167.
Radji, M., Agustama, R.A., Elya, B.,& Tjampakasari, C.R. (2013). Antimicrobial activity of green tea extract against isolates of methicillin-resistant Staphylococcus aureus and multi-drug resistant Pseudomonas aeruginosa. Asian Pacific Journal of Tropical Biomedicine, 3, 663-667.
Saritha, K., Rajesh, A., Manjulatha, K., Setty, O.H.,&Yenugu, S. (2015). Mechanism of antibacterial action of the alcoholic extracts of Hemidesmusindicus (L.) R. Br. ex Schult, Leucasaspera (Wild.), Plumbagozeylanica L., and Tridaxprocumbens (L.) R. Br. ex Schult. Frontiers in Microbiology, 6, 577.
Sehgal, S., Gupta, V., Gupta, R., &Saraf, S.A. (2011). Analgesic and antipyretic activity of Mimusops elengi L. (bakul) leaves. Pharmacologyonline, 3, 1-6.
Shan, B., Cai, Y-Z., Brooks, J.D., & Corke, H. (2007).The in vitro antibacterial activity of dietary spice and medicinal herb extracts. International Journal of Food Microbiology, 117, 112-119.
Tantipaibulvut, S., Nuamsetti, T., & Dechayuenyong, P. (2012). Antibacterial Activity of Some Fruit-Peel Extracts. KKU Research Journal, 17(6), 880-894.
Tiwari, B. K., Valdramidi, V. P., O’Donnell, C. P., Muthukumarappan, K., Bourke, P., & Cullen, P. J. (2009). Application of natural antimicrobials for food preservation. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 57, 5987-6000.
Valle Jr, D. L., Andrade, J. I., Puzon, J. J. M., Cabrera, E. C., & Rivera, W. L. (2015). Antibacterial activities of ethanol extracts of Philippine medicinal plants against multidrug-resistant bacteria. Asian Pacific Journal of Tropical Biomedicine, 5(7), 532-540.
