ผลของสารสกัดจากสาหร่ายทุ่นต่อการเปลี่ยนแปลงของสารประกอบฟีนอลิกในยางพารา และการประยุกต์ใช้เพื่อสร้างความต้านทานต่อเชื้อไฟทอปธอร่า
คำสำคัญ:
Phenolic Compounds, Hevea brasiliensis, Sargassum polycystum, Phytophthora, Plant Resistanceบทคัดย่อ
หลังจากฉีดพ่นใบยางพาราชำาถุงด้วยสารสกัดจากสาหร่ายทุ่น (Sargassum polycystum) ที่ความเข้มข้น 0.25
มิลลิกรัมต่อมิลลิลิตรเป็นเวลา 1,3 และ 5 วัน พบการสะสมของสคอพอเลตินเพิ่มขึ้นอย่างมีนัยสำาคัญทุกช่วงเวลาเมื่อเทียบ
กับชุดควบคุมที่ฉีดพ่นด้วยน้ำากลั่น ส่วนกรดซาลิซิลิกมีปริมาณเพิ่มขึ้นในวันที่ 1 และ 5 สำาหรับกรดพาราคูมาริกพบการเพิ่มขึ้น
เฉพาะในวันที่ 1 ขณะที่ปริมาณของกรดวานิลลิกและคาเทชินไม่พบการเปลี่ยนแปลง เมื่อนำาสารสกัดมาประยุกต์ใช้ฉีดพ่นต้น
ยางพาราชำาถุงเพื่อชักนำาความต้านทานเป็นเวลา 24 ชั่วโมงแล้วตามด้วยการฉีดพ่นเชื้อไฟทอปธอร่า พบว่าต้นยางติดเชื้อลดลง
มากกว่า 50% เมื่อเปรียบเทียบกับต้นที่ฉีดพ่นด้วยเชื้อเพียงอย่างเดียว นอกจากนี้ยังพบว่าต้นที่ฉีดพ่นด้วยเชื้อไฟทอปธอร่า
เป็นเวลา 5 วัน มีปริมาณของสารประกอบฟีนอลิกทั้ง 5 ชนิดสูงกว่าชุดควบคุมอย่างมีนัยสำาคัญรวมทั้งตรวจพบการสะสมของ
ลิกนินและฟอร์มใหม่ของเอนไซม์เปอร์ออกซิเดส ในขณะที่การฉีดพ่นด้วยสารสกัดจากสาหร่ายพบการเพิ่มขึ้นเฉพาะสคอพอลิติน
และกรดซาลิซิลิกโดยไม่พบลิกนินและฟอร์มใหม่ของเอนไซม์เปอร์ออกซิเดส จึงชี้ให้เห็นว่าสารสกัดจากสาหร่ายในการทดลองนี้มี
คุณสมบัติชักนำาให้ต้นยางพาราทนต่อการรุกรานของเชื้อไฟทอปธอร่าผ่านการเพิ่มขึ้นของสคอพอเลตินซึ่งเป็นสารไฟโตอเล็กซินและกรดซาลิซิลิกซึ่งเป็นโมเลกุลส่งสัญญาณในระบบ systemic acquired resistance (SAR) แต่ไม่ผ่านวิถีการสังเคราะห์ลิกนิน
References
Chanwun, T., Muhamad, N., Chirapongsatonkul, N. & Churngchow, N. (2013). Hevea brasiliensis cell suspension peroxidase: purification, characterization and application for dye decolorization. AMB Express, 3, 14.
Churngchow, N. & Rattarasarn, M. (2001). Biosynthesis of scopoletin in Hevea brasiliensis leaves inoculated with Phytophthora palmivora. Journal of Plant Physiology, 158, 875-882.
Cirak, C., Radusiene, J., AKSOY, H.M., Mackinaite, R., Stanius, Z., Camas, N. & Odabas, M.S. (2014). Differential Phenolic Accumulation in Two Hypericum Species in Response to Inoculation with Diploceras hypericinum and Pseudomonas putida. Plant Protection Science, 50(3), 199-128.
Deluc, L., Barrieu, F., Marchive, C., Lauvergeat, V., Decendit, A., Richard, T., Carde, J.-P., Mérillon, J.-M. & Hamdi, S. (2006). Characterization of a grapevine R2R3-MYB transcription factor that regulates the phenylpropanoid pathway. Plant physiology, 140, 499-511.
Devi, R.P. & Marimuthu, P. (2011). Effect of Botanical Formulation of Polygonum Minus (P-40) on Control of Alternaria Solani. Journal of Plant Patholology & Microbiology, 2, 104.
Ederli, L., Madeo, L., Calderini, O., Gehring, C., Moretti, C., Buonaurio, R., Paolocci, F. & Pasqualini, S. (2011). The Arabidopsis thaliana cysteine-rich receptor-like kinase CRK20 modulates host responses to Pseudomonas syringae pv. tomato DC3000 infection. Journal of Plant Physiology, 168, 1784-1794.
Erulan, V., Soundarapandian, P., Thirumaran, G. & Ananthan, G. (2009). Studies on the effect of Sargassum polycystum (C. Agardh, 1824) extract on the growth and biochemical composition of Cajanus cajan (L.) Mill sp. American-Eurasian Journal of Agricultural & Environmental Sciences, 6, 392-399.
Gurav, S.S. & Gurav, N.S. (2013). Indian Herbal Drug Microscopy. Springer Science & Business Media.
Jayasuriya, K.E., Wijesundera, R.L.C. & Deraniyagala, S.A. (2003). Isolation of anti-fungal phenolic com pounds from petioles of two Hevea brasiliensis (rubber) genotypes and their effect on Phytophthora meadii. Annals of applied biology, 142, 63-69
Jeandet, P., Hébrard, C., Deville, M.-A., Cordelier, S., Dorey, S., Aziz, A. & Crouzet, J. (2014). Deciphering the role of phytoalexins in plant-microorganism interactions and human health. Molecules, 19, 18033-18056.
Kawano, T. & Bouteau, F. (2013). Salicylic acid-induced local and long-distance signaling models in plants, in: Long-Distance Systemic Signaling and Communication in Plants. Springer, 23-52.
Klarzynski, O., Descamps, V., Plesse, B., Yvin, J.-C., Kloareg, B. & Fritig, B. (2003). Sulfated fucan oligosaccharides elicit defense responses in tobacco and local and systemic resistance against tobacco mosaic virus. Molecular Plant-Microbe Interactions, 16, 115-122.
Khoddami, A., Wilkes, M.A. & Roberts, T.H. (2013). Techniques for analysis of plant phenolic compounds. Molecules, 18, 2328-2375.
Kumar, S., Sahoo, D. & Levine, I. (2015). Assessment of nutritional value in a brown seaweed Sargassum wightii and their seasonal variations. Algal Research, 9, 117-125.
Lattanzio, V., Lattanzio, V.M. & Cardinali, A. (2006). Role of phenolics in the resistance mechanisms of plants against fungal pathogens and insects. Phytochemistry: Advances in research, 661, 23-67.
Lehner, G., & Cardemil, L. (2003). Differences in wound-induced changes in cell-wall peroxidase activities and isoform patterns between seedlings of Prosopis tamarugo and Prosopis chilensis. Tree Physiology, 23(7), 443-452.
Martins, S., Mussatto, S.I., Martinez-Avila, G., Montañez-Saenz, J., Aguilar, C.N.& Teixeira, J.A. (2011). Bioactive phenolic compounds: production and extraction by solid-state fermentation. A review. Biotechnology Advances, 29, 365-373.
Noiraksar, T. & Ajisaka, T. (2008). Taxonomy and distribution of Sargassum (Phaeophyceae) in the Gulf of Thailand. Journal of Applied Phycology, 20, 963.
Pereira, D.M., Valentão, P., Pereira, J.A. & Andrade, P.B. (2009). Phenolics: from chemistry to biology. Molecules, 14(6), 2202-2211.
Passardi, F., Cosio, C., Penel, C. & Dunand, C. (2005). Peroxidases have more functions than a Swiss army knife. Plant Cell Reports, 24, 255-265.
Prithiviraj, B., Perry, L. G., Badri, D. V., & Vivanco, J. M. (2007). Chemical facilitation and induced pathogen resistance mediated by a root-secreted phytotoxin. New Phytologist, 173(4), 852-860.
Ramos, R.L.B., Tovar, F.J., Junqueira, R.M., Lino, F.B. & Sachetto-Martins, G. (2001). Sugarcane expressed sequences tags (ESTs) encoding enzymes involved in lignin biosynthesis pathways. Genetics and Molecular Biology, 24, 235-241.
Rioux, L.-E., Turgeon, S.L. & Beaulieu, M. (2009). Effect of season on the composition of bioactive polysaccharides from the brown seaweed Saccharina longicruris. Phytochemistry, 70, 1069-1075.
Sbaihat, L., Takeyama, K., Koga, T., Takemoto, D. & Kawakita, K. (2015). Induced resistance in Solanum lycopersicum by algal elicitor extracted from Sargassum fusiforme. The Scientific World Journal, 2015, 9.
Sugiono, W.S.B. & Soehono, L.A. (2014). Extraction optimization by response surface methodology and characterization of fucoidan from brown seaweed Sargassum polycystum. International Journal of ChemTech Research, 6, 195-205.
Thanseem, I., Venkatachalam, P. & Thulaseedharan, A. (2003). Sequence characterization of β-1, 3-glucanase
gene from Hevea brasiliensis through genomic and cDNA cloning. Indian Journal of Natural Rubber Research, 16, 106-114.
Vagiri, M., Ekholm, A., Andersson, S.C., Johansson, E. & Rumpunen, K. (2012). An optimized method for analysis of phenolic compounds in buds, leaves, and fruits of black currant (Ribes nigrum L.). Journal of Agricultural and Food Chemistry, 60, 10501-10510.
Vanholme, R., Demedts, B., Morreel, K., Ralph, J. & Boerjan, W. (2010). Lignin biosynthesis and structure. Plant physiology, 153, 895-905.
Win, L.L. & Saing, K.M. (2008). Effectiveness of Myanmar brown seaweed (Sargassum spp.) extract as organic
fertilizer in pot trial of rice. GMSARN International Conference on Sustainable Development: Issues and Prospects for the GMS, 1-4.
Downloads
เผยแพร่แล้ว
How to Cite
ฉบับ
บท
License
Copyright (c) 2018 วารสารมหาวิทยาลัยนราธิวาสราชนครินทร์

This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.