การศึกษาฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระและฤทธิ์ต้านแบคทีเรีย Proteus mirabilis ของสารสกัดหยาบจากมะแขว่น

Main Article Content

จุฑามาศ ดวงกมล
อิสรียา ดุษฎีสุรพจน์
นันท์นภัส พุ่มนวล
ปิยธิดาภรณ์ ดิษฐเวชชัย
ภาสวิชญ์ วรรณภานพ
ณัฐิวุฒิ ธิติวิรัตน์
ปภังกร เจียมธีระนาถ

บทคัดย่อ

งานวิจัยนี้มีวัตถุประสงค์เพื่อศึกษาฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระ และศึกษาฤทธิ์ในการยับยั้งการเจริญเติบโตของแบคทีเรีย Proteus mirabilis ของสารสกัดหยาบจากมะแขว่นโดยใช้ตัวทำละลายที่มีขั้วต่างกันสองชนิด พบว่า สารสกัดหยาบจากมะแขว่นที่สกัดด้วยตัวทำละลายเมทานอลได้ผลดีที่สุดเมื่อเทียบกับการใช้ตัวทำละลายไดคลอโรมีเทน โดยให้ร้อยละของสารสกัดหยาบเท่ากับ 12.7 และ 7.7 ตามลำดับ สารสกัดหยาบจากมะแขว่นที่ใช้ตัวทำละลายเมทานอลมีบริเวณยับยั้งการเจริญของเชื้อแบคทีเรีย P. mirabilis เท่ากับ 23.83±0.624 มิลลิเมตร ในขณะที่ใช้ตัวทำละลายไดคลอโรมีเทนมีบริเวณการยับยั้ง เท่ากับ 15.33±0.623 มิลลิเมตร นอกจากนี้ยังคงพบว่าปริมาณฟีนอลิกรวม และปริมาณฟลาโวนอยด์รวมของสารสกัดหยาบจากมะแขว่นโดยใช้ตัวทำละลายเมทานอล มีค่าเท่ากับ 3.678±0.025 mgGAE/gDW และ 4.279±0.540 mgQE/gDW ส่วนสารสกัดที่ได้จากตัวทำละลายไดคลอโรมีเทน เท่ากับ 3.217±0.103 mgGAE/gDW และ 2.722±0.125 mgQE/gDW ตามลำดับ จากการทดลองสรุปได้ว่าสารสกัดหยาบจากมะแขว่นซึ่งเป็นสารธรรมชาติที่มีศักยภาพสามารถนำมาเป็นทางเลือกสำหรับการรักษาผู้ป่วยที่ติดเชื้อในทางเดินปัสสาวะ อย่างไรก็ตามจำเป็นต้องมีการศึกษาเพิ่มเติมรวมถึงการทดสอบในสัตว์และการทดสอบความเป็นพิษในแบบจำลองที่ใช้สัตว์เพื่อยืนยันการใช้สารสกัดจากมะแขว่นในการรักษาโรคติดเชื้อแบคทีเรียและโรคติดเชื้อแบคทีเรียอื่น ๆ ในอนาคตรวมทั้งความปลอดภัยในการใช้งาน

Article Details

รูปแบบการอ้างอิง
ดวงกมล จ., ดุษฎีสุรพจน์ อ., พุ่มนวล น., ดิษฐเวชชัย ป., วรรณภานพ ภ., ธิติวิรัตน์ ณ., & เจียมธีระนาถ ป. (2025). การศึกษาฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระและฤทธิ์ต้านแบคทีเรีย Proteus mirabilis ของสารสกัดหยาบจากมะแขว่น. วารสารวิจัย มหาวิทยาลัยเทคโนโลยีราชมงคลตะวันออก, 18(1), 114–124. https://doi.org/10.63271/rmuttorj.v18i1.264881
ประเภทบทความ
บทความวิจัย
ประวัติผู้แต่ง

จุฑามาศ ดวงกมล, มหาวิทยาลัยปทุมธานี

สาขาวิทยาศาสตร์พื้นฐานเเละวิทยาศาสตร์การเเพทย์ คณะสหเวชศาสตร์ มหาวิทยาลัยปทุมธานี ประเทศไทย

อิสรียา ดุษฎีสุรพจน์, สาธิตนานาชาติมหาวิทยาลัยมหิดล

สาธิตนานาชาติมหาวิทยาลัยมหิดล ประเทศไทย

นันท์นภัส พุ่มนวล, สาธิตนานาชาติมหาวิทยาลัยมหิดล

สาธิตนานาชาติมหาวิทยาลัยมหิดล ประเทศไทย

ปิยธิดาภรณ์ ดิษฐเวชชัย, โรงเรียนเบญจมราชูทิศ

โรงเรียนเบญจมราชูทิศ ประเทศไทย

ภาสวิชญ์ วรรณภานพ, โรงเรียนสาธิตนานาชาติ สถาบันเทคโนโลยีพระจอมเกล้าเจ้าคุณทหารลาดกระบัง

โรงเรียนสาธิตนานาชาติ สถาบันเทคโนโลยีพระจอมเกล้าเจ้าคุณทหารลาดกระบัง ประเทศไทย

ณัฐิวุฒิ ธิติวิรัตน์, โรงเรียนสาธิตนานาชาติ สถาบันเทคโนโลยีพระจอมเกล้าเจ้าคุณทหารลาดกระบัง

โรงเรียนสาธิตนานาชาติ สถาบันเทคโนโลยีพระจอมเกล้าเจ้าคุณทหารลาดกระบัง ประเทศไทย

ปภังกร เจียมธีระนาถ, โรงเรียนนานาชาติเอกมัย

โรงเรียนนานาชาติเอกมัย ประเทศไทย

เอกสารอ้างอิง

Baliyan, S., Mukherjee, R., Priyadarshini, A., Vibhuti, A., Gupta, A., Pandey, R. P., & Chang, C.-M. (2022). Determination of antioxidants by DPPH radical scavenging activity and quantitative phytochemical analysis of Ficus religiosa. Molecules, 27(4), 1326. https://doi.org/10.3390/molecules27041326

Bartges, J. W. (2004). Diagnosis of urinary tract infections. The Veterinary Clinics of North America: Small Animal Practice, 34(4), 923–933. https://doi.org/10.1016/j.cvsm.2004.03.001

Charoensup, R., Duangyod, T., Phuneerub, P., & Singharachai, C. (2016). Pharmacognostic specification of Zanthoxylum limonella (Dennst.) Alston: Fruits and seeds in Thailand. Journal of Advanced Pharmaceutical Technology & Research, 7(4), 134–138. https://doi.org/10.4103/2231-4040.191421

Charoenying, P., Teerarak, M., & Laosinwattana, C. (2010). An allelopathic substance isolated from Zanthoxylum limonella Alston fruit. Scientia Horticulturae, 125(3), 411–416. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2010.04.045

Das, N. G., Dhiman, S., Talukdar, P. K., Rabha, B., Goswami, D., & Veer, V. (2015). Synergistic mosquito-repellent activity of Curcuma longa, Pogostemon heyneanus and Zanthoxylum limonella essential oils. Journal of Infection and Public Health, 8(4), 323–328. https://doi.org/10.1016/j.jiph.2015.02.005

Domig, K. J., Mayrhofer, S., Zitz, U., Mair, C., Petersson, A., Amtmann, E., Mayer, H. K., & Kneifel, W. (2007). Antibiotic susceptibility testing of Bifidobacterium thermophilum and Bifidobacterium pseudolongum strains: Broth microdilution vs. agar disc diffusion assay. International Journal of Food Microbiology, 120(1–2), 191–195. https://doi.org/10.1016/j.ijfoodmicro.2007.07.064

Elcocks, E. R., Spencer-Phillips, P. T. N., & Adukwu, E. C. (2020). Rapid bactericidal effect of cinnamon bark essential oil against Pseudomonas aeruginosa. Journal of Applied Microbiology, 128(4), 1025–1037. https://doi.org/10.1111/jam.14538

Gupta, K., Grigoryan, L., & Trautner, B. (2017). Urinary tract infection. Annals of Internal Medicine, 167(7), ITC49–ITC64. https://doi.org/10.7326/AITC201710030

Jacobsen, S. M., & Shirtliff, M. E. (2011). Proteus mirabilis biofilms and catheter-associated urinary tract infections. Virulence, 2(5), 460–465. https://doi.org/10.4161/viru.2.5.17783

Kalyani, H. A., Aithal, K. S., & Srinivasan, K. K. (1989). In vitro anthelmintic activity of essential oil from the fruits of Zanthoxylum limonella. Fitoterapia, 60(2), 160–162.

Khruengsai, S., Sripahco, T., & Pripdeevech, P. (2023). Antibacterial activity and synergic effects of the essential oils of Amomum verum Blackw and Zanthoxylum limonella (Dennst.) Alston. Archives of Microbiology, 205(3), Article 102. https://doi.org/10.1007/s00203-023-03436-9

Khruengsai, S., Promhom, N., Sripahco, T., & Pripdeevech, P. (2023). Optimization of enzyme-assisted microwave extraction of Zanthoxylum limonella essential oil using response surface methodology. Scientific Reports, 13, Article 12872. https://doi.org/10.1038/s41598-023-40142-4

Kleiman, M., Ryu, K. A., & Esser-Kahn, A. P. (2016). Determination of factors influencing the wet etching of polydimethylsiloxane using tetra-n-butylammonium fluoride. Macromolecular Chemistry and Physics, 217(2), 284–291. https://doi.org/10.1002/macp.201500225

Nadon, S., Leksawasdi, N., Jantanasakulwong, K., Rachtanapun, P., Ruksiriwanich, W., Sommano, S. R., Khaneghah, A. M., Castagnini, J. M., Barba, F. J., & Phimolsiripol, Y. (2023). Antioxidant and antimicrobial properties and GC-MS chemical compositions of Makwaen pepper (Zanthoxylum myriacanthum) extracted using supercritical carbon dioxide. Plants, 12(11), 2211. https://doi.org/10.3390/plants12112211

Palasuwan, A., Soogarun, S., Lertlum, T., Pradniwat, P., & Wiwanitkit, V. (2005). Inhibition of Heinz body induction in an in vitro model and total antioxidant activity of medicinal Thai plants. Asian Pacific Journal of Cancer Prevention, 6(4), 458–463.

Panumgul, L., Puwarawuttipanit, W., Poungkaew, A., & Rongrungruang, Y. (2021). Factors predicting sepsis in medical patients. Nursing Science Journal of Thailand, 39(3), 74–90. [in Thai]

Pattanawongsa, A., Klongsiriwet, C., Thaina, P., Prammano, A., Maneechai, N., Saengphrom, P., Yusakul, G., & Utsintong, M. (2021). In vitro and in vivo effects of Zanthoxylum limonella (Dennst.) Alston crude extracts and volatile oil on blood glucose reduction (TJPS-2021-0321. R1). Thai Journal of Pharmaceutical Sciences, 45(6).

Pitasawat, B., Champakaew, D., Choochote, W., Jitpakdi, A., Chaithong, U., Kanjanapothi, D., Rattanachanpichai, E., Tippawangkosol, P., Riyong, D., Tuetun, B., & Chaiyasit, D. (2007). Aromatic plant-derived essential oil: An alternative larvicide for mosquito control. Fitoterapia, 78(3), 205–210. https://doi.org/10.1016/j.fitote.2007.01.003

Saeed, N., Khan, M. R., & Shabbir, M. (2012). Antioxidant activity, total phenolic and total flavonoid contents of whole plant extracts Torilis leptophylla L. BMC Complementary and Alternative Medicine, 12, Article 221. https://doi.org/10.1186/1472-6882-12-221

Schaffer, J. N., & Pearson, M. M. (2017). Proteus mirabilis and urinary tract infections. In M. A. Mulvey, D. J. Klumpp, & A. E. Stapleton (Eds.), Urinary tract infections (Chapter 17). American Society for Microbiology. https://doi.org/10.1128/9781555817404.ch17

Supabphol, R., & Tangjitjareonkun, J. (2014). Chemical constituents and biological activities of Zanthoxylum limonella (Rutaceae): A review. Tropical Journal of Pharmaceutical Research, 13(12), 2119–2130.

Tangjitjaroenkun, J., Supabphol, R., & Chavasiri, W. (2012). Antioxidant effect of Zanthoxylum limonella Alston. Journal of Medicinal Plants Research, 6(8), 1407–1414. https://doi.org/10.5897/JMPR10.846

Tangjitjaroenkun, J., Chavasiri, W., Thunyaharn, S., & Yompakdee, C. (2012). Bactericidal effects and time–kill studies of the essential oil from the fruits of Zanthoxylum limonella on multi-drug resistant bacteria. Journal of Essential Oil Research, 24(4), 363–370. https://doi.org/10.1080/10412905.2012.692907

Wipoosanapan, P. (2018). Antioxidant and antimutagenic activity of extracts from pericarp and seed of Zanthoxylum limonella Alston (Master’s thesis, Chulalongkorn University). Chulalongkorn University Theses and Dissertations (Chula ETD). https://digital.car.chula.ac.th/chulaetd/2383

Wongkattiya, N., Akekawatchai, C., Sanguansermsri, P., Fraser, I. H., Pratoomsoot, C., & Sanguansermsri, D. (2018). Chemical compositions and biological properties of essential oils from Zanthoxylum rhetsa (Roxb.) DC and Zanthoxylum limonella Alston. African Journal of Traditional, Complementary and Alternative Medicines, 15(2), 12–18. https://doi.org/10.21010/ajtcam.v15i2.2

Wongsrisom, N., Jinata, J., Manosan, B., Kuntakhoo, J., Wankuan, S., & Sriyam, S. (2014). Anti-bacterial activities of essential oils from Mah-Khwuaen (Zanthoxylum limonella Alston). KMUTT Research and Development Journal, 37(1), 3–15.