การตรวจสอบฤทธิ์ต้านแบคทีเรียของสารสกัดหยาบจากเปลือกผลไม้ตระกูลส้มห้าชนิด
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
โรคติดเชื้อจากแบคทีเรียเป็นปัญหาที่สำคัญของประชากรโลกที่ทำให้หลายประเทศสิ้นเปลืองงบประมาณเป็นจำนวนมาก อย่างไรก็ตามในช่วงหลายปีที่ผ่านมาได้มีรายงานการพบสารต้านจุลินทรีย์ในพืชสมุนไพรรวมทั้งผลไม้อย่างต่อเนื่องและคาดว่าสารดังกล่าวจะมีศักยภาพในการช่วยบำบัดโรคติดเชื้อสำคัญๆ ได้มากมาย การศึกษาครั้งนี้มีวัตถุประสงค์ในการนำเปลือกผลไม้ตระกูลส้ม 5 ชนิด ที่ได้รับความนิยมในการบริโภคสูง ได้แก่ ส้มโอ ส้มเขียวหวาน ส้มสายน้ำผึ้ง มะกรูด และมะนาว มาศึกษาฤทธิ์ต้านแบคทีเรียชนิดที่สำคัญ โดยใช้วิธีการสกัด 4 วิธี ได้แก่ การต้มสกัด การหมักด้วยเอทิลแอลกอฮอล์ การปั่นผงแห้งเปลือกผลไม้ในน้ำและการปั่นเปลือกผลไม้สด นำสารสกัดหยาบที่ได้มาทดสอบฤทธิ์ต้านแบคทีเรีย 3 ชนิด ได้แก่ Escherichia coli, Staphylococcus aureus และ Pseudomonas aeruginosa โดยวิธี agar disk diffusion ผลการศึกษาพบว่าสารสกัดหยาบจากเปลือกส้มทั้ง 5 ชนิด โดยวิธีการหมักด้วยเอทิลแอลกอฮอล์มีฤทธิ์ต้านแบคทีเรีย S. aureus ได้ สารสกัดหยาบจากการสกัดด้วยวิธีการปั่นผงแห้งเปลือกผลไม้ในน้ำมีฤทธิ์ต้านแบคทีเรียP. aeruginosaส่วนสารสกัดหยาบจากการสกัดด้วยวิธีการต้มสกัดและการปั่นเปลือกผลไม้สดไม่พบฤทธิ์ต้านแบคทีเรียที่นำมาทดสอบ นอกจากนี้ยังพบว่าฤทธิ์ต้านแบคทีเรียของสารสกัดจากเปลือกผลไม้ตระกูลส้มขึ้นกับปัจจัยหลายประการ ได้แก่ สารละลายที่ใช้ในการสกัด วิธีการสกัด และชนิดของแบคทีเรียที่นำมาทดสอบ โดยเปลือกผลไม้ตระกูลส้ม 5 ชนิดที่นำมาศึกษานี้มีสารต้านแบคทีเรียในระดับที่น่าสนใจ จึงควรศึกษาต่อไปถึงชนิดและปริมาณของสารออกฤทธิ์ เพื่อให้ได้ข้อมูลที่ชัดเจนสำหรับการนำเปลือกส้มเหล่านี้ไปประยุกต์ใช้เป็นสารต้านจุลินทรีย์ในผลิตภัณฑ์ต่าง ๆ ต่อไป
Article Details
มหาวิทยาลัยรามคำแหง
เอกสารอ้างอิง
Barco, L., Ramon, E., Cortini, E., Longo, A., DallaPozza, M.C., Lettini, A.A., et al. 2014. Molecular characterization of Salmonella enterica serotype 4,[5],12:I :-DT193 ASSuT strains from two outbreaks in Italy. Foodborne Pathog Dis. 11(2): 138-144.
Bengtsson-Palme, J., Kristiansson, E., Joakim Larsson, D.G. 2018. Environmental factors influencing the development and spread of antibiotic resistance. FEMS Microbiol Rev. 42(1): 68-80.
Bloch, S.K, Felczykowska, A., Nejman-Falenezyk, B. 2012. Escherichia coli O104: H4 outbreak: have we learnt a lesson from it. ActaBiochem Pol. 59(4): 483-488
Campion, J.J., McNamara, P.J., Evans, M.F. 2004. Evaluation of ciprofloxacin-resistant Staphylococcus aureus in in vitro pharmacokinetic environment. Antimicrob Agents Chemother. 48(12): 4733-4744.
Chen, G.W., Lin, Y.H., Lin, C.H., Jen, H.C. 2018. Antibacterial activity of emulsified Pomelo (Citrus grandis Osbeck) peel oil and water soluble Chitosan on Staphylococcus aureus and Escherichia coli. Molecules.23: 840.doi: 10.3390/ molecules 23040840.
Clinical and Laboratory Standards Institute [CLSI]. 2012. Reference method for dilution antimicrobial susceptibility test for bacterial that grow aerobically. Approved Standard M7-A6.National Committee for Clinical and Laboratory Standards. Wayne, Penn, USA.
Choi, M.J., Jackson, K.A., Medus, C., Beal, J., Rigdon, C.E., Cloyd, T.C., et al. 2014. Notes from the fields: multistage outbreak of listeriosis linked to soft-ripened cheese - United States 2013. Morb Motal Wkly Rep. 63(13): 294-295
Levy, S.B., Marshall, B. 2004. Antibacterial resistance worldwide: causes, challenges and responses. Nat Med. 10:S122-S129.
Makni, M., Jemai, R., Kriaa, W., Chtourou, Y., Fetoui, H. 2018. Citrus limon from Tunisia: Phytochemical and Physicochemical properties and Biological activities. BioMed Research International. Article ID 6251546.
Panda, S.K., Mohanta, Y.K., Padhi, L., Park, Y.H., Mohanta, T.K., Bae, H. 2016. Large scale screening of ethnomedical plants for identification of potential antibacterial compounds. Molecules. 21(293): 1-20.
Ramadan, E.M., Abou-Taleb, K.A., Galal, G.F., Abdel-Hamid, N.S. 2017. Antibacterial, antibiofilm and antitumor activities of grape and mulberry leaves ethanolic extracts towards bacterial clinical strains. Ann Agric Sci. 62:151-159.
Ranibar, R., Dehkordi, F.S., Shahreza, M.H.S., Rahimi, E. 2018. Prevalence, identification of virulence factors, O-serogroups and antibiotic resistance properties of Shiga-toxin producing Escherichia coli strains isolated from raw milk and traditional dairy products. Antimicrobial Resistance and Infection Control. 7:53.doi http//:doi.org/10.1186/s13756-018-0345-x.
Sharma, C., Rokana, N., Chandra, M., Singh, B.P., Gulhane, R.D., Gill, J.P.S., et al. 2018. Antibacterial resistance: Its surveillance, impact, and alternative management strategies in dairy animals. Frontiers in Veterinary Science. 4:237. doi:10.3389/fvets.2017.00237.
Tagel, A.A., Shaban, S.M., Moussa, S.H., Elguindy, N.M, Diab, A.M., Mazrou, K.E., et al. 2018. Bioactivity and application of plant seeds’ extracts to fight resistant strains of Staphylococcus aureus. Ann Agric Sci. 63: 47-53.
Tayel, A.A., Abdel Monem, O.A., Moussa, S.H., Al Turki, A.I. 2013. Plant extracts as antimicrobials: prospects in food safety and health protection, In: Gionano, A., Costs, A. editors. Plant Extracts: Role in Agriculture, Health Effects and Medical Applications. NewYork: Nova Science Publishers, p 311-326.
Van Vuuren, S. and Holl, D. 2017. Antimicrobial natural product research: a review from a South African perspective for the year 2009-2016. J Enthnopharmacol. 208: 236-252.
World Health Organization [WHO]. 2014. Antimicrobial resistance: Global report on surveillance 2014. Geneva, Switzerland: WHO.
