การยับยั้ง Salmonella Typhimurium ในหลอดทดลองและบนใบสะระแหน่ด้วยน้ำมัน หอมระเหยไธม์
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
การศึกษานี้มีวัตถุประสงค์เพื่อทดสอบการยับยั้ง Salmonella Typhimurium ของน้ำมันหอมระเหยไธม์ (Thymus vulgaris) ในหลอดทดลองและบนใบสะระแหน่ โดยทำการคัดกรองฤทธิ์ต้านแบคทีเรียเบื้องต้นด้วยวิธี disc diffusion พบว่าน้ำมันหอมระเหยไธม์บริสุทธิ์ (20 µl/disc) สามารถยับยั้ง S. Typhimurium มีขนาดของโซนยับยั้งเท่ากับ 22.17 มิลลิเมตร และหาความเข้มข้นขั้นต่ำที่สุดที่สามารถยับยั้งเชื้อ (MIC) และความเข้มข้นขั้นต่ำที่สุดที่สามารถทำลายเชื้อ (MBC) ด้วยวิธี broth macrodilution พบว่าค่า MIC และ MBC มีค่าเท่ากัน คือ 0.2% เมื่อนำไปทดสอบหาระยะเวลาในการทำลายเชื้อ (Time kill assay) พบว่าน้ำมันหอมระเหยไธม์ ความเข้มข้น 0.2% (1xMIC) สามารถทำลายเชื้อเริ่มต้น (5.36 log CFU/ml) ลงได้ > 3 log ภายในระยะเวลา 5 นาที นอกจากนี้ยังได้ทดสอบประสิทธิภาพในการลดจำนวน S. Typhimurium ที่ใส่ลงบนใบสะระแหน่ ด้วยสารละลายน้ำมันหอมระเหยไธม์ความเข้มข้น 1xMIC (0.2%), 2xMIC (0.4%) โดยมีน้ำกลั่นปราศจากเชื้อเป็นชุดควบคุม พบว่า น้ำมันหอมระเหยไธม์ที่ความเข้มข้น 0.4% (2xMIC) มีประสิทธิภาพในการลดจำนวนเชื้อ S. Typhimurium ที่ใส่ลงบนใบสะระแหน่ได้แตกต่างจากน้ำกลั่นปราศจากเชื้อ (ชุดควบคุม) อย่างมีนัยสำคัญทางสถิติ (p<0.05) ผลการศึกษาในครั้งนี้แสดงให้เห็นว่าน้ำมันหอมระเหยไธม์มีประสิทธิภาพในการยับยั้งเชื้อ S. Typhimurium ทั้งในหลอดทดลองและบนใบสะระแหน่ ซึ่งอาจสามารถนำมาใช้เป็นอีกทางเลือกหนึ่งในการใช้เป็นสารล้างทำความสะอาดผักสดได้
Article Details
อนุญาตภายใต้เงื่อนไข Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
บทความที่ได้รับการตีพิมพ์เป็นลิขสิทธิ์ของ PBRU Science Journal
เอกสารอ้างอิง
Yemmireddy V, Adhikari A, Moreira J. Effect of ultraviolet light treatment on microbiological safety and quality of fresh produce: an overview. Front Nutr 2022;9:871243.
Bai Y, Li J, Huang M, Yan S, Li S, Xu J, et al. Prevalence and characterization of foodborne pathogens isolated from fresh-cut fruits and vegetables in Beijing, China. Int J Food Microbiol 2024;421:110804.
Kowalska B. Fresh vegetables and fruit as a source of Salmonella bacteria. Ann Agr Env Med 2023;30; 9-14.
Zhang G, Chen Y, Hu L, Melka D, Wang H, Laasri A., et al. Survey of foodborne pathogens, aerobic plate counts, total coliform counts, and Escherichia coli counts in leafy greens, sprouts, and melons marketed in the United States. J Food Prot 2018;81;400-11.
Zhang H, Yamamoto E, Murphy J, Locas A. Microbiological safety of ready-toeat fresh-cut fruits and vegetables sold on the Canadian retail market. Int J Food Microbiol. 2020;335:108855.
Srisamran J. Detection of indicator and pathogenic bacteria in raw vegetables and fruits sold in fresh markets and supermarkets, Bangkok, Thailand [Theses and Dissertations]. Bangkok: Chulalongkorn University; 2020.
Singh BR, Singh P, Agrawal S, Teotia U, Verma A, Sharma S, et al. Prevalence of multidrug resistant Salmonella in coriander, mint, carrot, and radish in Bareilly and Kanpur, Northern India. Foodborne Pathog Dis 2007;4:233-40.
Plumb I, Fields P, Bruce B. Salmonellosis, Nontyphoidal. CDC Yellow Book [Internet]. Health Information for International Travel: Oxford University Press; 2024 [cited 2023 October 10]. Available from: https:// wwwnc.cdc.gov/travel/yellowbook/2024/infections-diseases/salmonellosis-nontyphoidal
Centers for Disease Control and Prevention (CDC). Salmonella outbreak linked to cucumbers - June 2024 [Internet]. [cited 2025 August 2]. Available from: https://www.cdc. gov /salmonella/outbreaks/africana-06-24/index.html.
รัชดา อุยยืนยงค์, สุนิดา เมืองโคตร. การยับยั้งแบคทีเรียก่อให้เกิดโรคที่ปนเปื้อนในผักกาดหอมด้วยสารสกัดจากพืชสมุนไพรไทย. วารสารการเกษตรราชภัฏ. 2563;2:67-76.
El-Tawil AM. Colorectal cancers and chlorinated water. World J Gastrointest Oncol 2016;8:402-9.
Kang JH, Park JB, Song KB. Inhibitory activities of quaternary ammonium surfactants against Escherichia coli O157:H7, Salmonella Typhimurium, and Listeria monocytogenes inoculated on spinach leaves. LWT-Food Sci Technol 2019;102:284-90.
Kang JH, Song KB. Combined washing effect of noni extract and oregano essential oil on the decontamination of Listeria monocytogenes on romaine lettuce. Int J Food Sci 2020;55:3515-23.
Hammoudi Halat D, Krayem M, Khaled S, Younes S. A focused insight into thyme: Biological, chemical, and therapeutic properties of an indigenous mediterranean herb. Nutrients 2022;14:2104.
Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI). Performance standards for antimicrobial susceptibility testing. Vol 43. 33th ed. CLSI supplement M100: Wayne, PA; USA. 2023. Available from: https://clsi.org/ shop/standards/m100/
Clinical and Laboratory Standards Institute. Methods for dilution antimicrobial susceptibility tests for bacteria that grow aerobically. Vol 32. 9th ed. CLSI document M07-A9: Wayne, PA; USA. 2012. Available from: https://clsi.org/qse
Yuan W, Teo CHM, Yuk HG. Combined antibacterial activities of essential oil compounds against Escherichia coli O157:H7 and their application potential on fresh-cut lettuce. Food Control 2019; 96:112-8.
Kang JH, Song KB. Inhibitory effect of plant essential oil nanoemulsions against Listeria monocytogenes, Escherichia coli O157:H7, and Salmonella Typhimurium on red mustard leaves. Innov Food Sci Emerg Technol 2018;45:447-54.
Paudel SK, Bhargava K, Kotturi H. Antimicrobial activity of cinnamon oil nanoemulsion against Listeria monocytogenes and Salmonella spp. on melons. LWT-Food Sci Technol 2019;111;682-7.
Schubert M, Spiegel H, Schillberg S, Nölke G. Aspergillus-specific antibodies-targets and applications. Biotechnol Adv 2018;36:1167-84.
Ishak A, Mazonakis N, Spernovasilis N, Akinosoglou K, Akinosoglou C. Bactericidal versus bacteriostatic antibacterials: clinical significance, differences and synergistic potential in clinical practice. J Antimicrob Chemother 2024;80:1-17.
Penalver P, Huerta B, Borge C, Astorga R, RomeroR, Perea A. Antimicrobial activity of five essential oils against origin strains of the Enterobacteriaceae family. Apmis 2005;113:1-6.
Ed-Dra A, Nalbone L, Filali FR, Trabelsi N, El Majdoub YO, Bouchrif B., et al. Comprehensive evaluation on the use of Thymus vulgaris essential oil as natural additive against different serotypes of Salmonella enterica. Sustain 2021;13:4594.
Rocha JBT, de Andrade JP, dos Santos L. Optimization of extraction parameters for phenolic compounds from Commiphora gileadensis leaves using ethanol-water mixtures. Process 2023;12:1567.
Ebani VV, Nardoni S, Bertelloni F, Tosi G, Massi P, Pistelli L, et al. In vitro antimicrobial activity of essential oils against Salmonella enterica serotypes Enteritidis and Typhimurium strains isolated from poultry. Molecules 2019;24:900.
Thosar N, Basak S, Bahadure RN, Rajurkar M. Antimicrobial efficacy of five essential oils against oral pathogens: An in vitro study. Eur J Dent 2013;7:S071-7.
Sateriale D, Forgione G, De Cristofaro GA, Pagliuca C, Colicchio R, Salvatore P, et al. Antibacterial and antibiofilm efficacy of thyme (Thymus vulgaris L.) essential oil against foodborne illness pathogens, Salmonella enterica subsp. enterica serovar Typhimurium and Bacillus cereus. Antibiotics 2023;12:485.
Cuaron JA, Dulal S, Song Y, Singh AK, Montelongo CE, Yu W, et al. Tea tree oil-induced transcriptional alterations in Staphylococcus aureus. Phytother Res 2013;27:390-6.
Kang JW., Kang DH. Antimicrobial efficacy of vacuum impregnation washing with malic acid applied to whole paprika, carrots, king oyster mushrooms and muskmelons. Food Control 2017;82:126-35.
Gutierrez J, Rodriguez G, Barry-Ryan C, Bourke P. Efficacy of plant essential oils against foodborne pathogens and spoilage bacteria associated with ready-to-eat vegetables: antimicrobial and sensory screening. J Food Prot 2008;71:1846-54.
