Effect of Ammonium Nitrate and Relative Humidity on Hyperhydricity in In Vitro Shoot Cultures of Eucalyptus Interspecific Hybrid (Eucalyptus camaldulensis Dehnh. X Eucalyptus pellita F.Muell.)
Article Sidebar
Main Article Content
Abstract
In vitro shoot cultures of Eucalyptus interspecific hybrid (Eucalyptus camaldulensis Dehnh. X Eucalyptus pellita F. Muell.) have hyperhydricity problem in process therefore experimenting of suitable medium formula. A 3×4 in factorial designs in RCBD with two factors namely, ammonium nitrate concentration at three level (82.5 mgl-1, 165 mgl-1 and 330 mgl-1) and four levels of filter (0, 1, 2 and 3 pore) to create different relative humidity. After four weeks, record relative humidity, hyperhydricity rate and number of shoots were record, One week after subculture to root induction medium root induction rate, quantity of root and root elongation were record.
The results showed that root elongation was significantly influenced by ammonium nitrate. Hyperhydricity rate, number of shoots, root induction rate, quantity of root and survival rate were significantly influenced by relative humidity, Number of shoots were decreased when relative humidity was decrease. Subculturing hyperhydricity shoot into root induction medium caused undeveloped or poor root and the plant died when applied to transplanting it died.
Analysis of data showed that treatment MSc9 had ammonium nitrate 82.5 mgl-1 and relative humidity 78.66% as the treatment best of low hyperhydricity rate, many shoot, high root induction rate and many number of root. Reduction of ammonium nitrate concentration to half of the standard formula at 82.5 mgl-1 can reduce production costs of seedlings.
Article Details
ข้าพเจ้าและผู้เขียนร่วม (ถ้ามี) ขอรับรองว่า ต้นฉบับที่เสนอมานี้ยังไม่เคยได้รับการตีพิมพ์และไม่ได้อยู่ในระหว่างกระบวนการพิจารณาตีพิมพ์ลงในวารสารหรือสิ่งตีพิมพ์อื่นใด ข้าพเจ้าและผู้เขียนร่วม (ถ้ามี) ยอมรับหลักเกณฑ์และเงื่อนไขการพิจารณาต้นฉบับ ทั้งยินยอมให้กองบรรณาธิการมีสิทธิ์พิจารณาและตรวจแก้ต้นฉบับได้ตามที่เห็นสมควร พร้อมนี้ขอมอบลิขสิทธิ์ผลงานที่ได้รับการตีพิมพ์ให้แก่วารสารวนศาสตร์ คณะวนศาสตร์ มหาวิทยาลัยเกษตรศาสตร์ กรณีมีการฟ้องร้องเรื่องการละเมิดลิขสิทธิ์เกี่ยวกับภาพ กราฟ ข้อความส่วนใดส่วนหนึ่ง หรือ ข้อคิดเห็นที่ปรากฏในผลงาน ให้เป็นความรับผิดชอบของข้าพเจ้าและผู้เขียนร่วม (ถ้ามี) แต่เพียงฝ่ายเดียว และหากข้าพเจ้าและผู้เขียนร่วม (ถ้ามี) ประสงค์ถอนบทความในระหว่างกระบวนการพิจารณาของทางวารสาร ข้าพเจ้าและผู้เขียนร่วม (ถ้ามี) ยินดีรับผิดชอบค่าใช้จ่ายทั้งหมดที่เกิดขึ้นในกระบวนการพิจารณาบทความนั้น”
References
Cassells, A. and R. Curry. 2001. Oxidative stress and physiological, epigenetic and genetic variability in plant tissue culture: implications for micropropagators and genetic engineers. Plant Cell Tiss. and Org. 64 (2-3): 145-157
Debergh, P.C. and L. Maene. 1984. Pathological and physiological problems related to the in vitro cultures of plants. Parasitica. 40: 69-75.
Edgard, A.T.P., C.O. Wagner, L.F. Marina, M.B.C. Sonia, S.A. Raul, A.M.S. Eldo, R.C. Carlos and P.B.F. Elizabeth. 2001. Hyperhydricity in in vitro eggplant regenerated plants: structural characteristics and involvement of BiP (Binding Protein). Plant Sci. 160: 857-868.
Franck, T., C. Kevers, T. Gaspar, J. Dommes, C. Deby, R. Greimers, D. Serteyn and G. Deby-Dupont. 2004. Hyperhydricity of Prunus avium shoots cultured on gelrite: a controlled stress response. Plant Physiol. Bioch. 42: 519-527
Gribble, K., J. Tingle, V. Sarafis, A. Heaton and P. Holford. 1998. Position of water in vitrified plants by NMR imaging. Protoplasma 201: 110-114
Grodzinski, B., I. Boesel and K. Horton. 1981. Effect of light and carbon dioxide on release of ethlene from leaves of Xanthium strumarium. Plant Physiol. 67: 272-3.
Kei-ichiro, U., C. Susan and S. Kalidas. 1998. Reduced hyperhydricity and enhanced growth of tissue culture-generated raspberry (Rubus sp.) clonal lines by Pseudomonas sp. Isolated from oregano. Process Biochem. 33 (4): 441-445.
Kozai, T., K. Fujiwara, M. Hayashi, J. Aitken-Christie. 1992. The in vitro environment and its control in micropropagation, pp. 247-282. In Kurata K., Kozai T. (Eds.), Transplant production system, Kluwer Academic Publishers, Dordrecht, The Netherlands.
Lai, C. C., H. M. Lin, H. S. Tsay, S. M. Nalawade and W. Fang. 2005. Hyperhydricity in shoot cultures of Scrophularia yoshimurae can be effectively reduced by ventilation of culture vessels. J. Plant Physiology. 162: 355-361
Manoj, K.Y., A.K. Gaur and G.K. Garg. 2003. Development of suitable protocol to overcome hyperhydricity in carnation during micropropagation. Plant Cell Tiss. 72: 153-156
Read, P.E. 1990. Environmental effects in micropropagations, pp. 95-125. In Ammirato PV, Evan DA, Shrap WR, Bajaj YPS (Eds.), Handbook of plant cell culture, Vol. 5. New York.
Roux, J. J. I.E. and S. J. Van. 1991. Micropropagation and tissue culture of Eucalyptus. Tree Physiol. 9: 435-477.
Sadhy, S., A. Piqueras, E. Hellin and E. Oimos. 2005. Prevention of hyperhydricity in micropropagated carnation shoots by bottom cooling: implications of oxidative stress. Plan Cell Tiss. Org. 81: 149-158
Tornero, O. P., J. Egea, E. Olmos and L. Burgos. 2001. Control of hyperhydricity in micropropagated apricot cultivars. In Vitro Cell. Dev. Biol.- Plant. 37: 250-254.
Whitehouse, A.B., Mark T.R. and G.A. Edward. 2002. Control of hyperhydricity in Eucalyptus axillary shoot cultures grown in liquid medium. Plan Cell Tiss. Org. 71: 245-252.
Zobayed, S.M.A., J. Armstrong and W. Armstrong. 2000. Evaluation of closed system, diffusive and humidity-induced convective throughflow ventilation on the growth and physiology of cauliflower in vitro, Plan cell Tiss. Org. 59: 113-123.
Zobayed, S.M.A., J. Armstrong and W. Armstrong. 2001. Micropropagation of potato: evaluation of closed, diffusive and forced ventilation on growth and tuberization. Ann. Bot. 87: 53-9.