ฤทธิ์ชีวภาพของสารสกัดจากมะยมในการยับยั้งสื่อสัญญาณแคลเซียม การยับยั้งจุลินทรีย์ และการต้านอนุมูลอิสระ
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
เมื่อนำสารสกัดหยาบเอทานอลจากลำต้นและใบมะยมมาศึกษาฤทธิ์ทางชีวภาพ เช่น การยับยั้งสื่อสัญญาณแคลเซียมซึ่งเกิดจากการกระตุ้นที่มากเกินพอ ฤทธิ์ต้านการเจริญของจุลินทรีย์ และฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระ การยับยั้งสื่อสัญญาณแคลเซียมวิเคราะห์ด้วยการเจริญของ Saccharomyces cerevisiae zds1D บนอาหารกึ่งแข็ง YPD ที่เติมแคลเซียมคลอไรด์ 165 มิลลิโมลาร์ สารสกัดหยาบจากใบมะยมออกฤทธิ์ยับยั้งการสื่อสัญญาณแคลเซียมได้เมื่อใช้สารสกัด 5.00 และ 1.67 มิลลิกรัม ขณะที่สารสกัดจากลำต้นมะยมไม่สามารถลดการสื่อสัญญาณแคลเซียมซึ่งเกิดจากการกระตุ้นที่ส่งผลยับยั้งการเจริญของยีสต์ ฤทธิ์ต้านจุลินทรีย์ของสารสกัดหยาบวิเคราะห์ด้วย disc diffusion ร่วมกับ broth microdilution และ agar microdilution ผลการทดลองแสดงให้เห็นว่าสารสกัดจากลำต้นมะยมสามารถยับยั้งการเจริญของจุลินทรีย์ที่ใช้ทดสอบ ได้แก่ Enterobacter aerogenes TISTR1540, Bacillus subtilis TISTR008, Staphylococcus aureus TISTR885 และ Saccharomyces cerevisiae TISTR5013 โดย S. aureus TISTR885 เป็นแบคทีเรียที่มีความไวสูงสุดต่อสารสกัดหยาบจากลำต้นมะยม มีค่าความเข้มข้นต่ำสุดของสารสกัดที่ยับยั้งการเจริญ (minimum inhibitory concentration, MIC) และมีค่าความเข้มข้นต่ำสุดของสารสกัดที่ฆ่าแบคทีเรีย (minimal bactericidal concentration, MBC) เท่ากับ 7.81 และ 31.25 มิลลิกรัมต่อมิลลิลิตร ตามลำดับ สารสกัดหยาบจากใบมะยมยับยั้งการเจริญของ Candida albicans TISTR5779 โดยให้ค่า MIC และค่าความเข้มข้นต่ำสุดที่ทำลายรา (minimum fungicidal concentration, MFC) เท่ากับ 31.25 และ 125 มิลลิกรัมต่อมิลลิลิตร อย่างไรก็ตาม ทั้งสารสกัดจากใบและลำต้นมะยมไม่สามารถยับยั้งการเจริญของ Escherichia coli TISTR780 เมื่อใช้ความเข้มข้น 1,000 มิลลิกรัมต่อมิลลิลิตร นอกจากนี้การวิเคราะห์ฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระด้วยวิธี DPPH และ ABTS แสดงให้เห็นว่าสารสกัดหยาบจากลำต้นมะยมมีฤทธิ์ในการต้านอนุมูลอิสระได้ดีกว่าสารสกัดจากใบมะยม โดยสารสกัดจากใบมะยมมีค่า IC50 ในการทำลายอนุมูลอิสระ DPPH และอนุมูลอิสระ ABTS เท่ากับ 30.34 และ 46.09 ไมโครกรัมต่อมิลลิลิตร ตามลำดับ โดยปริมาณสารประกอบฟินอลิกทั้งหมดของสารกัดจากลำต้นและใบมะยมมีค่าเท่ากับ 68.95±0.02 และ 47.37±0.01 ไมโครกรัมต่อมิลลิกรัมของสารสกัด เมื่อเปรียบเทียบเป็นปริมาณกรดแกลลิค
Article Details
บทความที่ได้รับการตีพิมพ์เป็นลิขสิทธิ์ของคณะวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี มหาวิทยาลัยธรรมศาสตร์ ข้อความที่ปรากฏในแต่ละเรื่องของวารสารเล่มนี้เป็นเพียงความเห็นส่วนตัวของผู้เขียน ไม่มีความเกี่ยวข้องกับคณะวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี หรือคณาจารย์ท่านอื่นในมหาวิทยาลัยธรรมศาสตร์ ผู้เขียนต้องยืนยันว่าความรับผิดชอบต่อทุกข้อความที่นำเสนอไว้ในบทความของตน หากมีข้อผิดพลาดหรือความไม่ถูกต้องใด ๆ
เอกสารอ้างอิง
Attrapadung, S., Yoshida, J., Kimura, K., Mizunuma, M., Miyakawa, T. and Thanomsub, B.W., 2009, Identifcation of ricinoleic acid as an inhibitor of Ca2+ signal mediated cell-cycle regulation in budding yeast, FEMS Yeast Res. 10: 38-43.
Bezprozvanny, I., 2009, Calcium signaling and neurodegenerative diseases, Trends Mol. Med. 15: 89-100.
Capiod, T., Shuba, Y., Skryma, R. and Prevarskaya, N., 2007, Calcium signalling and cancer cell growth, Subcell. Biochem. 45: 405-427.
Chanklan, R., Aihara, E., Koga, S., Takahashi, H.,
Mizunuma, M. and Miyakawa, T., 2008a, Inhibition of Ca2+-signaling-dependent growth regulation by radicicol in budding yeast, Biosci. Biotechnol. Biochem. 72: 132-138.
Chanklan, R., Mizunuma, M., Kongkathip, N., Hasitapan, K., Kongkathip, N. and Miyakawa, T., 2008b, Identification of Saccharomyces cerevisiae Tub1 -tubulin as a potential target for NKH-7, a cytotoxic 1-naphthol derivative compound, Biosci. Biotechnol. Biochem. 72: 1023-1031.
Habib, M.R., Sayeed, M.A., Rahman, M.M., Hasan, M.R. and Saha, A., 2011, In vitro evaluation of cytotoxic, antibacterial, antioxidant and phytochemical screening of petroleum ether extract of Phyllanthus acidus, Int. J. Appl. Bio. Pharm. Tech. 2: 420-427.
Jagessar, R.C., Mars, A. and Gomes, G., 2008, Selective antimicrobial properties of Phyllanthus acidus leaf extract against Candida albicans, Escherichia coli and Staphylococcus aureus using stokes disc diffusion, well diffusion, streak plate and a dilution method, Nat. Sci. 6: 24-38.
Jain, N.K. and Singhai, A.K., 2011, Protective effects of Phyllanthus acidus (L.) Skeels leaf extracts on acetaminophen and thioacetamide induced hepatic injuries in Wistar rats, Asian Pac. J. Trop. Med. 4: 470-474.
Leeya, Y., Mulvany, M.J., Queiroz, E.F., Marston, A., Hostettmann, K. and Jansakul C., 2010, Hypotensive activity of an n-butanol extract and their purified compounds from leaves of Phyllanthus acidus (L.) Skeels in rats, Eur. J. Phamacol. 649: 301-313.
Lui, W., Lui, J., Yin, D. and Zhao, X., 2015, Influence of ecological factors on the production of active substances in the anti-cancer plant Sinopodophyllum hexandrum (Royle) T.S. Ying, PLoS One. 10: e0122981.
Nguyen, T.T.K., Laosinwattana, C., Teerarak, M. and Pilasombut, K., 2017, Potential antioxidant and lipid peroxidation inhibition of Phyllantus acidus leaf extract in minced pork, Asian-Australas. J. Anim. Sci. 30: 1323-1331.
Ogasawara, Y., Yoshida, J., Shiono, Y., Miyakawa, T. and Kimura, K., 2008, New Eremophilane sesquiterpenoid compounds, Eremoxylarins A and B directly inhibit calcineurin in a manner independent of immunophilin, J. Antibiot. 61: 496-502.
Rahman, M.M., Habib, M.R., Hasan, S.M.R., Sayeed, M.A. and Rana, M.S., 2011, Antibacterial, cytotoxic and antioxidant potential of methanolic extract of Phyllanthus acidus L., Int. J. Drug Dev. Res. 3: 154-161.
Re, R., Pellegrini, N., Proteggente, A., Pannala, A., Yang, M. and Rice-Evans, C., 1999, Antioxidant activity applying an improved ABTS radical cation decolorization assay, Free Radic. Biol. Med. 26: 1231-1237.
Rusnak, F. and Mertz, P., 2000, Calcineurin: Form and function, Physiol. Rev. 80:1483-1521.
Sarker, S.D., Nahar, L. and Kumarasamy, Y., 2007, Microtitre plate-based antibacterial assay incorporating resazurin as an indicator of cell growth, and its application in the in vitro antibacterial screening of phytochemicals, Methods 42: 321-324.
Shitamukai, A., Mizunuma, M., Hirata, D., Takahashi, H. and Miyakawa, T., 2000, A Positive screening for drugs that specifically inhibit the Ca2+-signaling activity on the basis of the growth promoting effect on a yeast mutant with a peculiar phenotype, Biosci. Biotechnol. Biochem. 64: 1942-1946.
Subrata, K.B., Anusua, C., Joysree, D., Utpal, K.K., Manik, C.S., and Sheikh, Z.R., 2011, Assessment of cytotoxicity, antibacterial activity and phytochemical screening of ethanol extract of Phyllanthus acidus L. (family: Euphorbiacceae ) bark, J. Appl. Pharm. Sci., 6:112-114.
Unander, D.W., Webster, G.L. and Blumberg, B.S., 1995, Usage and bioassays in Phyllanthus (Euphorbiaceae). IV. Clustering of antiviral uses and other effect, J. Ethnopharmacol. 45: 1-18.
Velioglu, Y.S., Mazza, G., Gao, L. and Oomah, B.D., 1998, Antioxidant activity and total phenolics in selected fruits, vegetables, and grain products, J. Agric. Food Chem. 46: 4113-4117.
Vongvanich, N., Kittakoop, P., Kramyu, J., Tanticharoen, M. and Thebtaranonth, Y., 2000, Phyllanthusols A and B, cytotoxic norbisabolane glycosides from Phyllanthus acidus Skeels, J. Org. Chem. 65: 5420-5423.
Yamasaki, K., Hashimoto, A., Kokusenya, Y., Miyamoto, T. and Sato, T., 1994, Electrochemical method for estimating the antioxidative effects of methanol extracts of crude drugs, Chem. Pharm. Bull. (Tokyo) 42: 1663-1665.
Yoshida, J., Nomura, S., Nishizawa, N., Ito, Y. and Kimura, K., 2011, Glycogen synthase kinase-3β inhibition of 6-(methylsulfinyl) hexyl isothiocyanate derived from wasabi (Wasabi japonica Matsum), Biosci. Biotechnol. Biochem. 75: 136-139.
