อิทธิพลของการกระตุ้นเชิงกลต่อการเจริญเติบโตและการสะสมกรดซาลิไซลิกของต้นกล้าข้าวพันธุ์หอมธรรมศาสตร์

Main Article Content

วรรณระวี จิตจักร
สมชาย ชคตระการ
ดุสิต อธินุวัฒน์

Abstract

The aim of this study was to determine the effect of touching frequency and duration of mechanical stimulation on the growth and salicylic accumulation of Hom Thammasat rice seedling. The experimental design was conducted in 4×3 factorial in CRD with 20 replications, including 2 factors: (1) rice seeding touching durations for 10, 20, and 30 min per time and (2) touching frequency of rice seeding for 1, 2, 3, and 4 times per day. The results revealed that Hom Thammasat rice seedling mechanical stimulated by electric duster with speed rate of 256.8 cm per min for 30 min, with 1 time per day, showed suitable plant growth index and highest significant (p ≤ 0.05) of salicylic acid accumulation in rice seedling with 3.084±0.272 to 7.219±0.399 mg per g fresh weight. Our results are alternative methods for the farmers to apply to rice seedling before transplanting in paddy field for preventing plants from stress conditions.

Downloads

Download data is not yet available.

Article Details

How to Cite
จิตจักร ว., ชคตระการ ส., & อธินุวัฒน์ ด. (2020). อิทธิพลของการกระตุ้นเชิงกลต่อการเจริญเติบโตและการสะสมกรดซาลิไซลิกของต้นกล้าข้าวพันธุ์หอมธรรมศาสตร์. Thai Journal of Science and Technology, 9(4), 554–563. https://doi.org/10.14456/tjst.2020.58
Section
วิทยาศาสตร์ชีวภาพ
Author Biographies

วรรณระวี จิตจักร

สาขาเทคโนโลยีการเกษตร คณะวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี มหาวิทยาลัยธรรมศาสตร์ ศูนย์รังสิต ตำบลคลองหนึ่ง อำเภอคลองหลวง จังหวัดปทุมธานี 12120

สมชาย ชคตระการ

สาขาเทคโนโลยีการเกษตร คณะวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี มหาวิทยาลัยธรรมศาสตร์ ศูนย์รังสิต ตำบลคลองหนึ่ง อำเภอคลองหลวง จังหวัดปทุมธานี 12120

ดุสิต อธินุวัฒน์

สาขาเทคโนโลยีการเกษตร คณะวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี มหาวิทยาลัยธรรมศาสตร์ ศูนย์รังสิต ตำบลคลองหนึ่ง อำเภอคลองหลวง จังหวัดปทุมธานี 12120

References

จริงแท้ ศิริพานิช, 2549, ชีววิทยาหลังการเก็บเกี่ยวและการวายของพืช, ศูนย์ส่งเสริมและฝึกอบรมการเกษตรแห่งชาติ, นครปฐม, 453 น.

เชฐชุดา เชื้อสุวรรณ, 2561, อุตสาหกรรมข้าว, แหล่งที่มา : https://www.krungsri.com/bank/getmedia/578889e0-fc28-4e20-bc48-31f0dbe04a3d/IO_Rice_2018_TH.aspx, 3 ธันวาคม 2562.

พีรเดช ทองอำไพ, 2529, ฮอร์โมนพืชและสารสังเคราะห์ : แนวทางการใช้ประโยชน์ในประเทศไทย, คณะเกษตร มหาวิทยาลัยเกษตรศาสตร์, กรุงเทพฯ, 196 น.

อภิชาติ เถาว์โท และเสริมศักดิ์ อาวะกุล, 2526, ความรู้เบื้องต้นเกี่ยวกับการปลูก, ไทยวัฒนาพานิช, กรุงเทพฯ.

อรรคพล สันติวิภานนท์, เสาวรัตน์ จันทะโร และกนกวรรณ เสรีภาพ, 2555, การใช้พอลิเอมีนเพื่อยืดอายุการเก็บรักษาหลังการเก็บเกี่ยวของผลกล้วยหอมทอง, ว.พฤกษศาสตร์ไทย 4(พิเศษ): 169-175.

Alvarez, M.E., Pennell, R.I., Meijer, P.J., Ishikawa, A., Dixon, R.A. and Lamb, C., 1998, Reactive oxygen intermediates mediate a systemic signal network in the establishment of plant immunity, Cell 92: 773-784.

Balzergue, C., Dartevelle, T., Godon, C., Laugier, E., Meisrimler, C., Teulon, J.M., Creff, A., Bissler, M., Brouchoud, C., Hagège, A., Müller, J., Chiarenza, S., Javot, H., Becuwe-Linka, N., David, P., Péret, B., Delannoy, E., Thibaud, M.C., Armengaud, J., Abel, S., Pellequer, J.L., Nussaume, L. and Desnos, T., 2017, Low phosphate activates STOP1-ALMT1 to rapidly inhibit root cell elongation, Nat. Commun. 15: 1-16.

Bechtold, U. and Field, B., 2018, Molecular mechanisms controlling plant growth during abiotic stress, J. Exp. Bot. 69: 2753-2758.

Bessire, M., Chassot, C., Jacquat, A.C., Humphry, M., Borel, S. and Petetot, J., 2007, A permeable cuticle in Arabidopsis leads to a strong resistance to Botrytis cinerea, EMBO J. 26: 2158-2168.

Biddington, N.L. and Dearman, A.S., 1985, The effect of mechanically induced stress on the growth of cauliflower, lettuce and celery seedlings, Ann. Bot. 55: 109-119.

Chakhatrakan, S., Chakhatrakan, V., Motoda, Y. and Ota, Y., 1994, Effect of stimulation on growth and yield of vegetable crop, Jap. J. Crop Sci. 63: 546-548.

Chassot, C., Nawrath, C. and Métraux, J.P., 2007, Cuticular defect lead to full immunity to a major plant pathogen, Plant J. 49: 972-980.

D’Maris, A.D. and Daniel, F.K., 2017, How does the multifaceted plant hormone salicylic acid combat disease in plants and are similar mechanisms utilized in humans?, BMC Biol. 15: 23.

Food and Agriculture Organization of the United Nations (FAO), 2018, Rice Market Monitor April 2018, Available Source: http://www.fao.org/3/I9243EN/i9243en.pdf, May 22, 2019.

Hayat, Q., Hayat, S., Irfan, M. and Ahmad, A., 2010, Effect of exogenous salicylic acid under changing environment: A review, Environ. Exp. Bot. 68: 14-25.

Kazushige, S., 1974, Studies on the feeding habits of the brown planthopper, Nilaparvarta lugen (STÅL) (Hemiptera: Delphacidae): IV. Probing stimulant, Appl. Entomol. Zool. 9: 204-213.

Kováčik J., Grúz, J., Baèkor, M., Strnad, M. and Repcák, M., 2009, Salicylic acid-induced changes to growth and phenolic metabolism in Matricaria chamomilla plants, Plant Cell Rep. 28: 135-143.

Mauch-Mani, B. and Mauch, F., 2005, The role of abscisic acid in plant – Pathogen interactions, Curr. Opin. Plant Biol. 8: 409-414.

Miller, G., Schlauch, K., Tam, R., Cortes, D., Torres, M.A., Shulaev, V., Dangl, J.L. and Mittler, R., 2009, The plant NADPH oxidase RBOHD mediates rapid systemic signaling in response to diverse stimuli, Sci. Signal. 2(84): ra45.

Mittler, R., Vanderauwera, S., Suzuki, N., Miller, G., Tognetti, V.B., Vandepoele, K., Gollery, M., Shulaev, V. and van Breusegem, F., 2011, ROS signaling: The new wave?, Trends Plant Sci. 16: 300-309.

Miura, K. and Y. Tada, 2014, Regulation of water, salinity, and cold stress responses by salicylic acid, Front. Plant Sci. 5: 1-12.

Nolan, T., Chen, J. and Yin, Y., 2017, Cross-talk of Brassinosteroid signaling in controlling growth and stress responses, Biochem. J. 474: 2641-2661.

Senaratna, T., Touchell, D., Bunn, E. and Dixon, K. 2000, Acetyl salicylic acid (aspirin) and salicylic acid induce multiple stress tolerance in bean and tomato plants, Plant Growth Regulation 30: 157-161.

Shi, G.R., Cai, Q.S., Liu, Q.Q. and Wu, L., 2009, Salicylic acid-mediated alleviation of cadmium toxicity in hemp plants in relation to cadmium uptake, photosynthesis, and antioxidant enzymes, Acta Physiologiae Plantarum 31: 969-977.

Suzuki, N., Miller, G., Salazar, C., Mondal, H.A., Shulaev, E., Cortes, D. F., Shuman, J.L., Luo, X., Shah, J., Schlauch, K., Shulaev, V. and Mittler, R., 2013, Temporal-spatial interaction between reactive oxygen species and abscisic acid regulates rapid systemic acclimation in plants, Plant Cell 25: 3553-3569.

Tayane, R.S., Ericka, V., Belkis, V. and Selma, G.F.L., 2007, Salicylic acid degradation from aqueous solutions using Pseudo monas fluorescens HK44: parameters studies and application tools, Braz. J. Microbiol. 38: 39-44.

van Loon, L.C., Bakker, P.A. and Pieterse, C.M., 1998, Systemic resistance induced by rhizosphere bacteria, Ann. Rev. Phytopathol. 36: 453-83.

Wang, L.J. and Li, S.H.H., 2006, Salicylic acid-induced heat or cold tolerance in relation to Ca2+ homeostasis and antioxidant systems in young grape plant, J. Food Sci. 170: 685-694.

Wang, D.H., Li, X.X., Su, Z.K. and Ren, H.X., 2009, The role of salicylic acid in response of two rice cultivars to chilling stress, Biologia Plantarum 53: a545.

Wang, H., Wang, H., Shao, H. and Tang, X., 2016, Recent advances in utilizing transcription factors to improve plant abiotic stress tolerance by transgenic technology, Front. Plant Sci. 7: a67.

Wang W., Wang X., Huang M., Cai J., Zhou Q., Dai T., Cao, W. and Jiang, D., 2018, Hydrogen peroxide and abscisic acid mediate salicylic acid-induced freezing

tolerance in wheat, Front. Plant Sci. 9: 1-13.

Yuan, S., Weiming, H., Xu, P. and Ming, D., 2011, Partial mechanical stimulation facilitates the growth of the rhizomatous plant Leymus secalinus: Modulation by clonal integration, Ann. Bot. 107: 693-697.

Zhang, C., Li, X., He, Y., Zhang, J., Yan, T. and Liu, X., 2017, Physiological investigation of C4-phosphoenolpyruvate-carboxylase-introduced rice line shows that sucrose metabolism is involved in the improved drought tolerance, Plant Physiol. 115: 328-342.

Zhu, J.K., 2016, Abiotic stress signaling and responses in plants, Cell 167: 313-324.