ผลของ Phenylalanine ต่อความงอกของเมล็ดและสารต้านอนุมูลอิสระของต้นอ่อนทานตะวัน
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
phenylalanine (Phe) เป็นสารตั้งต้นในการสังเคราะห์สารทุติยภูมิหลายชนิด มีบทบาทในการส่งเสริมการเจริญเติบโตและการสร้างสารทุติยภูมิของพืช ดังนั้นการทดลองนี้จึงมีวัตถุประสงค์เพื่อศึกษาผลของ Phe ต่อความงอกของเมล็ด การเจริญเติบโต และสารต้านอนุมูลอิสระของต้นอ่อนทานตะวัน (Helianthus annuus L.) จากการแช่เมล็ดทานตะวันในสารละลาย Phe ความเข้มข้น 0, 100, 200, 400, 600 และ 800 mg/L นาน 8 ชั่วโมง พบว่า เมล็ดมีเปอร์เซ็นต์ความงอกไม่แตกต่างกันทางสถิติ แต่การแช่เมล็ดในสารละลาย Phe ความเข้มข้น 400 mg/L เมล็ดงอกได้เร็วขึ้น โดยเมล็ดมีความงอกเมื่อนับครั้งแรกสูงสุดและระยะเวลาในการงอกเฉลี่ยต่ำที่สุด การพ่นสารละลาย Phe ความเข้มข้น 100, 200 และ 400 mg/L เมื่อต้นอ่อนอายุ 4 วันหลังเพาะ เก็บเกี่ยวต้นอ่อนเมื่ออายุ 5 วันหลังเพาะ พบว่าการพ่นสารละลาย Phe ทุกความเข้มข้นส่งเสริมการเจริญเติบโตของต้นอ่อน โดยมีความสูงต้น น้ำหนักสดและน้ำหนักแห้งสูงกว่าการไม่พ่นสารอย่างมีนัยสำคัญ การพ่นสารละลาย Phe ความเข้มข้น 400 mg/L ส่งผลให้ต้นอ่อนทานตะวันมีปริมาณสารประกอบฟีนอลิกทั้งหมดสูงสุดและมีฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระ DPPH ดีที่สุด ส่วนปริมาณสารฟลาโวนอยด์ทั้งหมดมีค่าไม่แตกต่างกันทางสถิติทั้งที่พ่นและไม่พ่น Phe
Article Details
เอกสารอ้างอิง
Cevallos-Casals, B.A and Cisneros-Zevallos, L., 2010, Impact of germination on phenolic content and antioxidant activity of 13 edible seed species, Food Chem. 119: 1485-1490.
Pajạk, P., Socha, R., Gałkowska, D., Rožnowski, J. and Fortuna, T., 2014, Phenolic profile and antioxidant activity in selected seeds and sprouts, Food Chem. 143: 300-306.
El-Din, K.M.G. and El-Wahed, M.S.A.A., 2005, Effect of some amino acids on growth and essential oil content of chamomile plant, Int. J. Agri. Biol. 7: 376-380.
Talaat, I.M., Khattab, H.I. and Ahmed, A.M., 2014, Changes in growth, hormones levels and essential oil content of Ammi visnaga L. plants treated with some bioregulators, Saudi J. Biol. Sci. 21: 355-365.
Seo, J.M., Arasu, M.V., Kim, Y.B., Park, S.U., and Kim, S.J., 2015, Phenylalanine and LED lights enhance phenolic compound production in Tartary buckwheat sprouts, Food Chem. 177: 204-213.
Reham, M.S., Khattab M.E., Ahmed S.S. and Kandil, M.A.M., 2016, Influence of foliar spray with phenylalanine and nickel on growth, yield quality and chemical composition of genoveser basil plant, Afr. J. Agric. Res. 11: 1398-1410.
ISTA, 2008, International Rules for Seed Testing, Edition 2008, The International Seed Testing Association, Bassersdorf.
Geneve, R.L., 2005, Vigor Testing in Flower Seed, pp. 311-322, In McDonald, M.B. and Kwong, F.Y. (Eds.), Flower Seeds Biology and Technology, CABI, Wallingford.
Chumsri, P., Sirichote, A. and Itharat, A., 2008, Studies on the optimum conditions for the extraction and concentration of roselle (Hibiscus sabdariffa Linn.) extract, Songklanakarin J. Sci. Technol. 30: 133-139.
Folin, O. and Ciocalteu, V., 1927, On tyrosine and tryptophane determination in proteins, J. Biol. Chem. 27: 627-650.
Zhu, H., Wang, Y., Liu, Y., Xia, Y. and Tang, T., 2010, Analysis of flavonoids in Portulaca oleracea L. by UV-Vis spectrophotometry with comparative study on different extraction technologies, Food Anal. Methods. 3: 90-97.
Yamasaki, K., Hashimoto A., Kokusenya Y., Miyamoto T. and Sato T., 1994, Electrochemical method for estimating the antioxidative effects of methanol extracts of crude drugs, Chem. Pharm. Bull. 42: 1663-1665.
Copeland, L.O. and McDonald, M.B., 1995, Principle of Seed Science and Technology, Chammam and Hall, London. 409 p.
Treesurn, S. and Junmatong, C., 2017, Effect of salicylic acid soaking on seed germination, growth and antioxidant capacity of sunflower seedlings, Songklanakarin J. Pl. Sci. 4: 36-40. (in Thai).
Hopkins, W.G. and Hüner, N.P.A., 2009, Introduction to Plant Physiology, 4th Ed., John Wiley and Sons, Hoboken, NJ., 503 p.
Koca, N. and Karaman, Ş., 2015, The effects of plant growth regulators and L-phenylalanine on phenolic compounds of sweet basil, Food Chem. 166: 515-521.
