องค์ประกอบของสารสีในเนื้อหอยและปริมาณแคลเซียมคาร์บอเนตในเปลือกหอยแมลงภู่ (Perna viridis)

Main Article Content

รติกร สมิตไมตรี
จินตนา สและน้อย
กังสดาลย์ บุญปราบ

บทคัดย่อ

บทคัดย่อ


หอยแมลงภู่ (Perna viridis) เป็นสัตว์ทะเลที่มีเพศแยก สีของเนื้อหอยแมลงภู่ในแต่ละเพศจะมีความแตกต่างกันตามระยะของการพัฒนาการการเจริญเติบโต ซึ่งขนาดและความแข็งของเปลือกก็มีความแตกต่างกันในแต่ละระยะการเจริญเติบโต จึงเป็นที่มาของการศึกษาองค์ประกอบของสารสีในเนื้อหอย และปริมาณแคลเซียมคาร์บอเนตที่สะสมอยู่ในเปลือกหอยจำนวน 4 ขนาด (2.00-3.00, 3.01-4.00, 4.01-5.00 และ 5.01-8.00 ซม.) ทั้งเพศผู้และเพศเมีย โดยใช้เทคนิค thin-layer chromatography (TLC) และเทคนิค EDTA titrimetric method ตามลำดับ ผลการศึกษาพบสารแคโรทีนอยด์ที่มีสีเหลืองถึงส้มในสารสกัดจากเนื้อหอยแมลงภู่ทั้งเพศเมียและเพศผู้จากทุกขนาดของเปลือกหอยที่นำมาศึกษา ซึ่งจำแนกได้ 2 กลุ่ม คือ กลุ่ม xanthophyll และกลุ่ม carotene  กลุ่ม xanthophyll (ค่า Rf = 0.41) ประกอบด้วยสารสีชนิด fucoxanthin (ค่า Rf = 0.27) ที่มีสีเหลืองถึงส้ม และสารสีชนิดอื่น ๆ ที่มีสีเหลืองถึงส้มคล้ายกันทั้งในสารสกัดจากหอยแมลงภู่เพศเมียและเพศผู้ในทุกขนาด ซึ่งมีค่า Rf ใกล้เคียงกัน กลุ่ม carotene ประกอบด้วยสารสีชนิดเบต้าแคโรทีน (ค่า Rf = 0.96) ส่วนปริมาณแคลเซียมคาร์บอเนตที่สะสมในเปลือกหอยแมลงภู่พบว่าเปลือกหอยแมลงภู่เพศผู้ขนาด 5.01-8.00 ซม. มีปริมาณแคลเซียมคาร์บอเนตมากที่สุด โดยมีค่าเฉลี่ย 714.52±50.59 mg CaCO3/g shell แตกต่างจากขนาดอื่นอย่างมีนัยสำคัญทางสถิติ (p < 0.05) นอกจากนี้ยังพบว่าความยาวของเปลือกหอยแมลงภู่แต่ละขนาดมีความสัมพันธ์กับการสะสมแคลเซียมคาร์บอเนตในเปลือกของหอยแมลงภู่อย่างมีนัยสำคัญทางสถิติ (p < 0.05) ในขณะที่ขนาดของเปลือกหอยไม่มีอิทธิพลต่อองค์ประกอบของสารสีที่สะสมในตัวหอยแมลงภู่ 


คำสำคัญ : สารสี; หอยแมลงภู่; แคลเซียมคาร์บอเนต; แคโรทีนอยด์

Article Details

ประเภทบทความ
Biological Sciences
ประวัติผู้แต่ง

รติกร สมิตไมตรี

ภาควิชาวิทยาศาสตร์ทางทะเล คณะประมง มหาวิทยาลัยเกษตรศาสตร์ แขวงลาดยาว เขตจตุจักร กรุงเทพมหานคร 10900

จินตนา สและน้อย

ภาควิชาวิทยาศาสตร์ทางทะเล คณะประมง มหาวิทยาลัยเกษตรศาสตร์ แขวงลาดยาว เขตจตุจักร กรุงเทพมหานคร 10900

กังสดาลย์ บุญปราบ

ภาควิชาผลิตภัณฑ์ประมง คณะประมง มหาวิทยาลัยเกษตรศาสตร์ แขวงลาดยาว เขตจตุจักร กรุงเทพมหานคร 10900

เอกสารอ้างอิง

[1] ลือชัย ดรุณชู, 2550, คู่มือการเลี้ยงหอยแมลงภู่, กรมประมง กระทรวงเกษตรและสหกรณ์, กรุงเทพฯ.
[2] วันทนา อยู่สุข, 2541, หอยทะเล, ภาควิชาวิทยาศาสตร์ทางทะเล คณะประมง มหาวิทยาลัยเกษตรศาสตร์, กรุงเทพฯ.
[3] Louda, J.W., Neto, R.R., Magalhaes, A.R.M. and Schneider, V.F., 2008, Pigment alterations in the brown mussel Perna perna, Comp. Biochem. Physiol. B 150: 385-349.
[4] Maoka, T., 2011, Carotenoids in marine animals, Mar. Drugs. 9: 278-293.
[5] Tewari, A., Joshi, H.V., Raghunathan, C., Kumar, S.V.G. and Khambhaty, Y., 2001, Effect of heavy metal pollution on growth, carotenoid content and bacterial flora in the gut of Perna viridis (L.) in in situ condition, Curr. Sci. 81: 819-828.
[6] Petes L.E., Menge B.A., Chan F. and Webb M.A.H., 2008, Gonadal tissue color is not a reliable indicator of sex in rocky intertidal mussels, Aquat. Biol. 3: 63-70.
[7] นิรนาม, หอยแมลงภู่และการเลี้ยงหอยแมลงภู่, แหล่งที่มา : http://pasusat.com, 2 กุมภาพันธ์ 2561.
[8] เสรี นิยมเดชา, 2558, การเปรียบเทียบวงจรการสืบพันธุ์และขนาดแรกสืบพันธุ์ของหอยแมลงภู่ (Perna viridis) ระหว่างชายฝั่งอ่าวไทยและทะเลอันดามัน, วิทยานิพนธ์ปริญญาโท, มหา วิทยาลัยสงขลานครินทร์, สงขลา, 128 น.
[9] Bigatti, G., Miloslavich, P. and Penchaszadeh P.E., 2005, Sexual differentiation and size at first maturity of the invasive mussel Perna viridis (Linnaeus, 1758) (Mollusca: Mytilidae) at La Restinga Lagoon (Margarita Island, Venezuela), Amer. Malac. Bull. 20: 65-69.
[10] Zhang, C. and Zhang, R., 2006, Matrix proteins in the outer shells of molluscs, Mar. Biotechnol. 8: 572-586.
[11] บพิธ จารุพันธ์ และนันทพร จารุพันธ์, 2552, สัตววิทยา, พิมพ์ครั้งที่ 5, สำนักพิมพ์มหาวิทยาลัย เกษตรศาสตร์, กรุงเทพฯ.
[12] Matsushiro, A. and Miyashita, T., 2004, Evolution of hard-tissue mineralization: comparison of the inner skeletal system and the outer shell system, J. Bone. Miner. Metab. 22: 163-169.
[13] Furuhashia, T., Schwarzinger, C., Miksik, I., Smrz, M. and Beran, A., 2009, Molluscan shell evolution with review of shell calcification hypothesis, Comp. Biochem. Physiol. B 154: 351-371.
[14] Schöne, B.R. and Surge, D., 2014, Bivalve shells: Ultra high-resolution paleoclimate archives, Pages Magazine 22: 20-21.
[15] Chentanez, T., Kuanpitak, S. and Chentanez, V., 1982, Relative growth of shell and muscle and positional changes of muscle scars during shell growth of green mussel, Perna viridis L., J. Sci. Soc. TH 8: 33-51.
[16] Paula, S.Md. and Silveira, M., 2009, Studies on molluscan shells: Contributions from microscopic and analytical methods, Micron 40: 669-690.
[17] Quach, H.T., Steeper R.L. and Griffin W.G., 2004, An improved method for the extraction and thin-layer chromatography of chlorophyll a and b from spinach, J. Chem. Educ. 81: 385-387.
[18] Nielsen, S.S., 2010, Complexometric determination of calcium, pp. 61-66, In Nielsen, S.S. (Ed.), Food Analysis Laboratory Manual, Springer, New York.
[19] SoídoI, C., VasconcellosII, M.C., DinizI A.G. and PinheiroI J., 2009, An improvement of calcium determination technique in the shell of molluscs, Braz. Arch. Biol. Technol. 52: 93-98.
[20] วิลาส รัตนานุกูล, สีของพืช ผัก และผลไม้สำคัญอย่างไร, แหล่งที่มา : ttp://biology.ipst.ac.th, 2 กุมภาพันธ์ 2561.
[21] Tanaka, Y., Sasaki, N. and Ohmiya A., 2008, Biosynthesis of plant pigments: anthocyanins, betalains and carotenoids, Plant J. 54: 733-749.
[22] New World Encyclopedia writers, Chromatophore, Available Source: http://www.newworldencyclopedia.org/entry/Chromatophore, March 19, 2018.
[23] Kantha, S.S., 1989, Carotenoids of edible molluscs; A review, J. Food Biochem. 13: 429-442.
[24] Madin, K., 2010, Ocean acidification: A risky shell game, Oceanus 48: 6-7.
[25] Gazeau, F., Parker L.M., Comeau, S., Gattuso, J.P., O’Connor, W.A., Martin, S., Pörtner, H.O. and Ross, P.M., 2013, Impacts of ocean acidification on marine shelled molluscs, Mar Biol. 160: 2207-2245.
[26] Seed, R., 1968, Factors influencing shell shape in the mussel Mytilus edulis, J. mar. biol. Ass. UK 48: 561-584.