ผลของเนื้อเยื่อเริ่มต้นและสารควบคุมการเจริญเติบโตต่อการเพาะเลี้ยงแคลลัสของเจตมูลเพลิงแดงเพื่อผลิตสารพลัมบาจิน
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
การเพาะเลี้ยงเซลล์และแคลลัสเป็นทางเลือกหนึ่งในการผลิตสารทุติยภูมิที่มีฤทธิ์ทางเภสัชวิทยาในพืชสมุนไพร เจตมูลเพลิงแดงเป็นพืชสมุนไพรของไทยที่มีรากเป็นแหล่งสะสมของสารพลัมบาจินซึ่งเป็นสารในกลุ่ม naphthoquinone ที่มีฤทธิ์ทางเภสัชวิทยาหลายประการ การชักนำแคลลัสจากชิ้นส่วนใบและปล้องของเจตมูลเพลิงแดงบนอาหารแข็งสูตร MS ที่ใช้วิตามินของสูตร B5 และเติม NAA 0.2 มิลลิกรัมต่อลิตร ร่วมกับ 2,4-D 0.2 หรือ 0.4 มิลลิกรัมต่อลิตร kinetin หรือ BA ความเข้มข้น 0.1-0.3 มิลลิกรัมต่อลิตร โดยรวมพบว่าชิ้นส่วนใบเกิดแคลลัสได้ดีกว่าปล้อง และสูตรอาหารที่เติม BA ชักนำให้เกิดแคลลัสได้ดีกว่าที่เติม kinetin ซึ่งแคลลัสที่ได้มีลักษณะเป็น friable callus ยกเว้นการใช้ BA ที่ความเข้มข้น 0.2-0.3 มิลลิกรัมต่อลิตร กับชิ้นส่วนใบที่ทำให้เกิด compact callus สำหรับผลการวิเคราะห์ปริมาณสารพลัมบาจินพบการสะสมของสารพลัมบาจินในแคลลัสจากใบมากกว่าจากปล้อง การใช้ BA ทำให้แคลลัสสะสมสารพลัมบาจินได้มากกว่าการใช้ kinetin แต่พบว่า 2,4-D ที่มีความเข้มข้นสูงมีแนวโน้มยับยั้งการสะสมสารพลัมบาจิน งานวิจัยนี้พบว่าการเพาะเลี้ยงที่ให้ผลดีที่สุด คือ เพาะเลี้ยงแผ่นใบบนอาหารสูตร MS-B5 ที่มี NAA 0.2 มิลลิกรัมต่อลิตร 2,4-D 0.2 มิลลิกรัมต่อลิตร และ BA 0.1 มิลลิกรัมต่อลิตร ซึ่งทำให้ได้แคลลัสที่มีน้ำหนักสดและน้ำหนักแห้งสูง และมีการสะสมสารพลัมบาจินได้มากที่สุด
Article Details
เอกสารอ้างอิง
[2] Komaraiah, P., Kavi Kishor, P.B. and Ramakrishna, S.V., 2001, Production of plumbagin from cell suspension cultures of Plumbago rosea L., Biotechnol. Lett. 23: 1269-1272.
[3] Ramachandra Rao, S. and Ravishankar, G.A., 2002, Plant cell cultures: Chemical factories of secondary metabolites, Biotechnol. Adv. 20: 101-153.
[4] Murthy, H.N., Lee, E.J. and Paek, K.Y., 2014, Production of secondary metabolites from cell and organ cultures: Strategies and approaches for biomass improvement and metabolite accumulation, Plant Cell Tiss. Organ. Cult. 118: 1-16.
[5] Murashige, T. and Skoog, F., 1962, A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue culture, Physiol. Plant. 15: 473-479.
[6] Gamborg, O.L., Miller, R.A. and Ojimar, K., 1968. Nutrient requirements of suspension cultures of soybean root cell, Exp. Cell Res. 50: 151-158.
[7] Tsay, H.S. and Agrawal, D.C., 2005, Tissue culture technology of Chinese medicinal plant resources in Taiwan and their sustainable utilization, Int. J. Appl. Sci. Eng. 3: 215-223.
[8] Jamwal, K., Bhattacharya, S. and Puri, S., 2018, Plant growth regulator mediated consequences of secondary metabolites in medicinal plants, J. Appl. Res. Med. Aromat. Plants 9: 26-38.
[9] Rajendran, L., Ravishankar, G.A., Venkataraman, L.V. and Prathiba, K.R., 1992, Anthocyanin production in callus cultures of Daucus carota L. as influenced by nutrient stress and osmoticum, Biotechnol. Lett. 14: 707-714.
[10] Lubaina, A.S. and Murugan, K., 2012, Effect of growth regulators in callus induction, plumbagin content and indirect organogenesis of Plumbago zeylanica, Int. J. Pharm. Sci. 4: 334-336.
