การขยายพันธุ์ด้วยการเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อของกระเทียมน้ำ (Isoetes coromandelina L.f.) : ไลโคไฟต์หายากของประเทศไทย
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
การขยายพันธุ์กระเทียมน้ำซึ่งเป็นพืชที่ถูกคุกคามเนื่องจากการทำลายถิ่นที่อยู่อาศัยในประเทศไทย โดยการเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อด้วยการนำส่วนคล้ายคอร์ม (corm-like) มาฟอกกำจัดเชื้อด้วยคลอรอกซ์ (Clorox®) เมอร์คิวริกคลอไรด์ (HgCl2) และสารปฏิชีวนะเตตระไซคลิน (tetracycline) พบว่าการฟอกกำจัดเชื้อด้วยสารปฏิชีวนะเตตระไซคลิน 250 ppm นาน 20 นาที ตามด้วยคลอรอกซ์ 10 เปอร์เซ็นต์ (v/v) นาน 15 นาที และเมอร์คิวริกคลอไรด์ 0.2 เปอร์เซ็นต์ (w/v) นาน 10 นาที ทำให้ส่วนคล้ายคอร์มมีเปอร์เซ็นต์การรอดชีวิตสูงที่สุด (55.56 เปอร์เซ็นต์) เมื่อนำชิ้นส่วนคล้ายคอร์มที่ฟอกกำจัดเชื้อแล้วไปเพาะเลี้ยงบนอาหาร ½ MS เป็นเวลา 4 สัปดาห์ จากนั้นย้ายส่วนคล้ายคอร์มที่ปลอดเชื้อลงอาหารที่เติมสาร 2,4-dichlorophenoxyacetic acid (2,4-D) ที่ความเข้มข้น 0.5, 1, 1.5 และ 2 มิลลิกรัมต่อลิตร เพื่อชักนำให้เกิดแคลลัส พบว่าชิ้นส่วนคล้ายคอร์มที่เลี้ยงในอาหารที่เติม 2,4-D ความเข้มข้น 0.5 มิลลิกรัมต่อลิตร มีเปอร์เซ็นต์การรอดชีวิตสูงที่สุด (75 เปอร์เซ็นต์) และสามารถชักนำให้เกิดแคลลัส และเมื่อนำชิ้นส่วนคล้ายคอร์มที่ปลอดเชื้อเพาะเลี้ยงบนอาหาร ½ MS ที่เติม BA ความเข้มข้น 0, 0.5 และ 1 มิลลิกรัมต่อลิตร ร่วมกับ NAA ความเข้มข้น 0, 0.5 และ 1 มิลลิกรัมต่อลิตร เป็นเวลา 8 สัปดาห์ พบว่าส่วนคล้ายคอร์มที่เพาะเลี้ยงบนอาหารที่ไม่เติม BA มีความยาวใบมากที่สุด ขณะที่ส่วนคล้ายคอร์มที่เพาะเลี้ยงบนอาหารที่เติม NAA ความเข้มข้น 1 มิลลิกรัมต่อลิตร มีจำนวนรากมากที่สุด
Article Details
เอกสารอ้างอิง
[2] Hoot, S.B., Napier, N.S. and Taylor, W.C., 2004, Revealing unknown or extinct lineages within Isoetes (Isoetaceae) using DNA sequences from hybrids, Am. J. Bot. 91: 899-904.
[3] Pereira, J.B., Mittelbach, M. and Labiak, P.H., 2015, Studies on chromosome numbers and spore size in Brazilian Isoetes, Am. Fern J. 105: 226-237.
[4] Shukla, S.K., Singh, S.K., Shukla, P.K., Dubey, N.K., Khanam, H. And Srivastava, G.K., 2017, A new subspecies of Isoetes coromandelina (Isoetaceae) from Gujarat, India, Taiwania 62: 121-128.
[5] Chandra, S., Fraser-Jenkins, C.R., Kumari, A. and Srivastava, A., 2008, A summary of the status of threatened Pteridophytes of India, Taiwania 53: 170-209.
[6] Jonhduk, J., Youngil, R., Hyosig, W. and Hong-Keun, C., 2013, Morphological and molecular characterization of a new record of Isoetes coromandeliana subsp. coromandeliana form Cambodia, Plant Syst. Evol. 300: 43-50.
[7] Chomko, S., 2003, Autecology of Isoetes coromandeliana L.f.: Endangered Species of Thailand, Ph.D. Dissertation, Suranaree University of Technology, Nakhon Ratchasima, 198 p. (in Thai)
[8] Murashige, T. and Skoog, F., 1962, A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue culture, Physiol. Plantarum 15: 473-497.
[9] Smith, R.H., 1992, Plant Tissue Culture: Techniques and Experiments, Academic Press, California, 171 p.
[10] Collin, H.A. and Edwards, S., 1998, Plant cell culture, BIOS Scientific Publishers, England, 158 p.
[11] Razdan, M.K., 2003, Introduction to plant tissue culture, 2nd Ed., Science Publishers, Inc., New Hampshire, 375 p.
[12] Kaveeta, R., 1998, Plant Tissue Culture: Principle and Techniques, 2nd Ed., Kasetsart University, Bangkok, 219 p. (in Thai)
[13] Pierik, R.L.M., 1987, In vitro Culture of Higher Plants, Martinus Nijihoff Publishers, Boston, 344 p.
[14] Kijwijan, B., 2001, Plant Tissue Culture Technology, 2nd Ed., Klungnana Vitthaya Press, Khon Kaen, 207 p. (in Thai)
[15] Noimai, Y., 2012, Micropropagation of Nymphaea Hybrid ‘Chalong Kwan’, Master Thesis, Rajamangala University of Technology Thanyaburi, Pathum Thani, 87 p. (in Thai)
[16] Udorn, P., 2008, In vitro Culture of Nymphaea sp. (Jongkolnee). Master Thesis, Kasetsart University, Bangkok, 61 p. (in Thai)
[17] Pechkong, S., Sumanojitraporn, S. and Makkasap, C., 2010, Surface Sterilization Study and Growth Regulators Effect in Tissue Culture of Aquatic Plant Cryptocoryne albida, Aquatic Animal Genetics Research and Development Institute, Department of Fisheries, Bangkok, 21 p. (in Thai)
[18] Chopra, I. and Robert, M., 2001, Tetracycline antibiotics: Mode of action, applications, molecular biology, and epidemiology of bacterial resistance, Microbiol. Mol. Biol. Rev., 65: 232-260.
[19] Mehra, P.N. and Sulklyan, D.S., 1969, In vitro studies on apogamy, apospory and controlled differentiation of rhizome segments of the fern, Ampelopteris prolifera (Retz.) Copel, Bot. J. Linn. Soc., 62: 431-443.
[20] Padhya, M.A. and Mehta, A.R., 1982, Propagation of fern (Nephrolepis) through tissue culture, Plant Cell Rep. 1: 261-263.
[21] Byrne, T.E. and Caponetti, J.D., 1992, Morphogenesis in three cultivars of Boston fern II, callus production from stolon tips and plantlet differentiation from callus, Am. Fern J. 82: 1-11.
[22] Higuchi, H., Amaki, W. and Suzuki, S., 1987, In vitro propagation of Nephrolepis cordifolia, Prsel, Sci. Hort. 32: 105-113.
[23] Hu, J.B., Lui, J., Xie, C.H. and Gao, X.X., 2006, Corm induction and multiplication of Amorphophallus albus in vitro, J. Hort. Sci. Biotech. 81: 859-863.
