อิทธิพลของสารควบคุมการเจริญเติบโตและคุณภาพแสงต่อการพัฒนาของ โปรโตคอร์มกล้วยไม้สำเภาอินทนนท์ในสภาพปลอดเชื้อ
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
การเพาะเลี้ยงโปรโตคอร์มของกล้วยไม้สำเภาอินทนนท์ (Cymbidium mastersii Griff. ex Lindl.) บนอาหารสูตร MS เติมชนิดและความเข้มข้นของไซโตไคนินแตกต่างกันในสภาพปลอดเชื้อเป็นเวลา 12 สัปดาห์ พบว่า อาหารสูตรที่เติม TDZ 1.0 มิลลิกรัมต่อลิตร สามารถชักนำให้เกิดตายอด (11.7 ตายอด) และเกิดยอดใหม่ (8.9 ยอด) สูงที่สุด และเมื่อเลี้ยงโปรโตคอร์มบนอาหารสูตรที่เติม IBA 0.5 มิลลิกรัมต่อลิตร หรือ IAA 1.0 มิลลิกรัมต่อลิตร สามารถชักนำให้โปรโตคอร์มเพิ่มจำนวนมากที่สุด (11.1 และ 9.4 โปรโตคอร์มต่อชิ้นส่วน ตามลำดับ) นอกจากนี้การเพาะเลี้ยงภายใต้แสงจากหลอด LED warm white สามารถกระตุ้นการเจริญและพัฒนาให้จำนวนโปรโตคอร์มใหม่เพิ่มสูงที่สุด (9.5 โปรโตคอร์มต่อชิ้นส่วน) รวมไปถึงจำนวนตายอด (1.8 ตายอดต่อชิ้นส่วน) และแสงขาวจากหลอด Fluorescent สามารถส่งเสริมให้ตายอดเกิดพัฒนาการเป็นยอดใหม่เพิ่มขึ้นมากที่สุด (4.2 ยอดต่อชิ้นส่วน)
Article Details
เอกสารอ้างอิง
The Botanical Garden Organization Ministry of Natural Resources and Environment, 2021, Thailand orchid Paying homage to the Queen Mother, Chiangmai Documentary Design Company Limited, Chiangmai, 320 p.
Kaewthongprakum, P., Tangtragoon, T., Sutigoolabud, P. and Kanpington, A., 2019, Environmental factors affecting the growth of Anoectochilus burmanicus Rolfe, Ban Pong Krai, Pong Yang Sub District, Mae Rim District, Chiang Mai Province, RMUTSV Res. J. 11(1): 181-196.(in Thai)
Suwannarach, N., Kumla, J., Rachanarin, C. and Srimuang, K.O., 2021, In vitro symbiotic seed germination of Epipactis flava (Orchidaceae) promoted by endophytic fungus, Tulasnella phuhinrongklaensis, Chiang Mai J. Sci. 48: 787-792.
Kunakhonnuruk, B., Inthima, P. and Kongbangkerd, A., 2018, In vitro propagation of Epipactis flava Seidenf., an endangered rheophytic orchid: a first study on factors affecting asymbiotic seed germination, seedling development and greenhouse acclimatization, PCTOC, 135(3):419-432.
Kunakhonnuruk, B., Inthima, P. and Kongbangkerd, A., 2019, In vitro propagation of rheophytic orchid, Epipactis flava Seidenf.—A comparison of semi-solid, continuous immersion and temporary immersion systems, Biology 8(4): 72.
Mayo-Mosqueda, A., Maceda-López, L.F., Andrade-Canto, S.B., Noguera-Savelli, E., Caamal-Velázquez, H., Cano-Sosa, J.D.S. and Alatorre-Cobos, F., 2020, Efficient protocol for in vitro propagation of Laelia rubescens Lindl. from asymbiotic seed germination, S. Afr. J. Bot. 133: 264-272.
Linjikao, J., Kunakhonnuruk, B., Inthima, P. and Kongbangkerd, A., 2021, Effects of media strength and mannitol concentration of growth and development of Vandopsis lissochiloides Planlets, Plant Cell Biotechnol. Mol. Biol. 22(9-10): 34-45.
Calevo, J., Copetta, A., Marchioni, I., Bazzicalupo, M., Pianta, M., Shirmohammadi, N., Cornara, L. and Giovannini, A., 2022, The use of a new culture medium and organic supplement to improve in vitro early stage development of five orchid species, Plant Biosystems, 156(1):143-151.
Vendrame, W.A., Xu, J. and Beleski, D., 2022, Evaluation of the effects of culture media and light sources on in vitro growth of Brassavola nodosa (L.) Lindl. Hybrid, Horticulturae, 8(5): 450.
Aung, W.T., Bang, K.S., Yoon, S.A., Ko, B. and Bae, J.H., 2022, Effects of different natural extracts and plant growth regulators on plant regeneration and callus induction from pseudobulbs explants through in vitro seed germination of endangered orchid Bulbophyllum auricomum Lindl., J. Bio-Env. Con. 31(2): 133-141.
Saravia-Castillo, G., Tapia y Figueroa, L. and Borjas-Ventura, R., 2022, Auxins and cytokinins elicit a differentiated response
in the formation of shoots and roots in Cattleya maxima Lindl. and Phalaenopsis amabilis (L) Blume., Sci. Agropecu.13(1): 63-69.
Schulze, P.S., Pereira, H.G., Santos, T.F., Schueler, L., Guerra, R., Barreira, L.A. ... and Varela, J.C., 2016, Effect of light quality supplied by light emitting diodes (LEDs) on growth and biochemical profiles of Nannochloropsis oculata and Tetraselmis chuii, Algal Res. 16: 387-398.
Genkov, T. and Ivanova, I., 1995, Effect of cytokinin active phenylurea derivatives on shoot multiplication, peroxidase and superoxide dismutase activities of in vitro cultured carnation, Bulg. J. Plant Physiol.21: 73-83.
Asghar, S., Ahmad, T., Hafiz, I.A. and Yaseen, M., 2011, In vitro propagation of orchid (Dendrobium nobile) var. Emma white, Afr. J. Biotechnol. 10(16): 3097-3103.
Mohanty, P., Paul, S., Das, M. C., Kumaria, S. and Tandon, P., 2012, A simple and efficient protocol for the mass propagation of Cymbidium mastersii: an ornamental orchid of Northeast India, AoB plants 1-8.
Sherif, N.A., Franklin Benjamin, J.H., Senthil Kumar, T. and Rao, M.V., 2018, Somatic embryogenesis, acclimatization and genetic homogeneity assessment of regenerated plantlets of Anoectochilus elatus Lindl., an endangered terrestrial jewel orchid, PCTOC, 132(2): 303-316.
Roy, A.R., Sajeev, S., Pattanayak, A. and Deka, B.C., 2012, TDZ induced micropropagation in Cymbidium giganteum Wall.
Ex Lindl. and assessment of genetic variation in the regenerated plants, Plant Growth Regul. 68: 435–445.
Kim, Y.K., Kwak, M.H., Hong, J.R., Kim, H.W., Jo, S., Sohn, J.Y., Cheon, S.H. and Kim, K.J., 2017, The complete plastome
sequence of the endangered orchid Habenaria radiata (Orchidaceae), Mitochondrial DNA B: Resour. 2: 704–706.
Kim, D.H., Kang, K.W., Enkhtaivan, G., Jan, U. and Sivanesan, I., 2019, Impact of activated charcoal, culture medium strength and thidiazuron on non-symbiotic in vitro seed germination of Pecteilis radiata (Thunb.) Raf., S. Afr. J. Bot. 124:144-150.
Vogel, I.N. and Macedo, A.F., 2011, Influence of IAA, TDZ, and light quality on asymbiotic germination, protocorm formation, and plantlet development of Cyrtopodium glutiniferum Raddi., a medicinal orchid, PCTOC, 104(2): 147-155.
Wattanawikkit, P., Bunn, E., Chayanarit, K. and Tantiwiwat, S., 2011, Effect of cytokinins (BAP and TDZ) and auxin (2,4-D) on
growth and development of Paphiopedilum callosum, Agric. Nat. Resour. 45(1):12-19.
Liu, C., Zhu, J., Liu, Z., Li, L., Pan, R. and Jin, L., 2002, Exogenous auxin effects on growth and phenotype of normal and hairy roots of Pueraria lobata (Wild.) Ohwi., Plant Growth Regul. 38: 37-43.
Lin, Y., Li, J., Li, B., He, T. and Chun, Z., 2011, Effects of light quality on growth and development of protocorm-like bodies of Dendrobium officinale in vitro, PCTOC, 105(3): 329-335.
Sotthikul, C., Kaewpoowat, C. and Saimoon, N., 2015, In vitro propagation of Habenaria hybrids. Acta Hortic. 1155:293-300.
Bello-Bello, J.J., Martínez-Estrada, E., Caamal-Velázquez, J.H. and Morales-Ramos, V., 2016, Effect of LED light quality on in vitro shoot proliferation and growth of vanilla (Vanilla planifolia Andrews), Afr. J. Biotechnol. 15(8): 272-277.
Edesi, J., Kotkas, K., Pirttilä, A.M. and Häggman, H., 2014, Does light spectral quality affect survival and regeneration of potato (Solanum tuberosum L.) shoot tips after cryopreservation?, PCTOC,119(3): 599-607.
Waman, A.A., Bohra, P., Sathyanarayana, B.N., Umesha, K., Gowda, B. and Ashok, T.H., 2015, In vitro shoot multiplication and root induction in Silk banana variety Nanjana gud Rasabale as influenced by mono-chromatic light spectra, Proc. Natl. Acad. Sci. India Sect. B. Biol. Sci. 86: 577-584.
Khandaker, M.M., Saidi, A., Badaluddin, N.A., Yusoff, N., Majrashi, A., Alenazi, M.M., Mohd, K.S., 2022, Effects of Indole-3-Butyric Acid (IBA) and rooting media on rooting and survival of air layered wax apple (Syzygium samarangense) CV Jambu Madu. Braz. J. Biol., 82: 1-13.
Latkowska, M.J., Kvaalen, H., Appelgren, M., 2000, Genotype dependent blue and red light inhibition of the proliferation of the embryogenic tissue of Norway spruce. In Vitro Cell. Dev. Biol. Plant, 36(1): 57-60.
