ปริมาณสารทุติยภูมิของยอดกะเพราแดงในสภาพปลอดเชื้อ
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
กะเพราแดง (holy basil purple type, Ocimum sanctum L.) เป็นพืชสมุนไพรที่นิยมใช้ในทางการแพทย์ การทดลองนี้จึงมีวัตถุประสงค์เพื่อศึกษาปริมาณสารทุติยภูมิของยอดกะเพราแดงที่พัฒนาในสภาพปลอดเชื้อ โดยวิเคราะห์ปริมาณสารทุติยภูมิและฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระของยอดกะเพราแดงที่พัฒนาบนอาหารสูตร Murashige and Skoog (MS) ที่เติม benzyladenine (BA) ความเข้มข้น 0.5 mg/L นาน 3-6 สัปดาห์ เปรียบเทียบกับใบจากต้นแม่ และใบจากต้นที่ขยายพันธุ์ด้วยการเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อและนำออกปลูกในสภาพธรรมชาติ จากการทดลอง พบว่า ยอดกะเพราแดงที่พัฒนาในสภาพปลอดเชื้อทุกระยะเวลาเพาะเลี้ยงมีปริมาณสารประกอบฟีนอลิคทั้งหมด สารฟลาโวนอยด์ทั้งหมดมากกว่า และมีฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระดีกว่าใบจากต้นที่เจริญเติบโตในสภาพธรรมชาติ โดยยอดที่พัฒนาในสภาพปลอดเชื้อนาน 5 สัปดาห์ มีปริมาณสารประกอบฟีนอลิคทั้งหมด สารฟลาโวนอยด์ทั้งหมดสูงสุด เท่ากับ 152.10±7.94 mg GAE/g dry extract และ 122.04±3.66 mg CE/g dry extract ตามลำดับ นอกจากนี้ มีฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระดีที่สุด โดยมีค่า EC50 เท่ากับ 12.95±1.37 µg/mL ส่วนปริมาณสารยูจีนอลของใบกะเพราแดงจากต้นแม่ (2,931.17±286.61 µg/g dry extract) และใบจากต้นที่ขยายพันธุ์ด้วยการเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อแล้วนำออกปลูกในสภาพธรรมชาติ (8,816.18±510.60 µg/g dry extract) สูงกว่ายอดที่พัฒนาในสภาพปลอดเชื้อ
Article Details
เอกสารอ้างอิง
Mondal S., Miranda, B. R. and Mahapatra, S. C., 2009, The science behind sacredness of tulsi (Ocimum sanctum Linn.), Ind. J. of Physiol. Pharmacol. 53: 291-306.
Singh, E., Sharma, S., Dwivedi, J. and Sharma, S., 2012, Diversified potentials of Ocimum sanctum Linn (Tulsi): An exhaustive survey, J. Nat. Prod. Plant Resource. 2: 39-48.
Jadhav, B. K., Khaandelwal, K. R., Ketakr, A. R. and Pisal, S. S., 2004, Formulation and evaluation of mucoadhesive tablets containing eugenol for treatment of periodontal diseases, Drug dev. Ind. Pharma. 30: 195-203.
Prakash, P. and Gupta, N., 2005, Therapeutic uses of Ocimum sanctum Linn (tulsi) with a note on eugenol and its pharmacological actions: a short review, Indian J. Physiol. Pharmacol. 49: 125-131.
Świzdor, A., Panek, A., Milecka-Tronina, N. and Kolek, T., 2012, Biotransformations utilizing beta-oxidation cycle reactions in the synthesis of natural compounds and medicines, Int. J. Mol. Sci. 13: 16514-16543.
Smetanska, I., 2008, Production of secondary metabolites using plant cell cultures, Adv. Biochem. Eng. Biotechnol. 111: 187-228.
Autaijamsripon, J., Jirakiattikul, Y., Rithichai, P. and Itharat, A., 2018, Effect of plant growth regulators on shoot multiplication and root induction of Ocimum sanctum L. (holy basil purple type) under aseptic conditions, Thai Journal of Science and Technology 27: 630-638. (in thai)
Yotchart, Y., Kerdchoechuen, O. Laohakunjit, N. and Matta, F. B., 2015, Effect of plant growth regulators and volatile compounds synthesis in holy basil (Ocimum sanctum L. cv. Dang), Agricultural Sci. J. 46: 189-192. (in thai)
Bhuvaneshwari, K., Gokulanathan, A., Jayanthi, M., Govindasamy, V., Milella, L., Lee, S., Yang, D. C. and Girija, S., 2016, Can Ocimum basilicum L. and Ocimum tenuiflorum L. in vitro culture be a potential source of secondary metabolites?, Food Chem. 194: 55-60.
Mohan, N., Jassal P. S., Kumar, V. and Singh, R. P., 2011, Comparative in vitro and in vivo study of antioxidants and phytochemical content in Bacopa monnieri, Recent Res. Sci. Technol. 3: 78-83.
Esmaeili, A. K., Taha, R. M., Mohajer, S. and Banisalam, B., 2016, In vitro regeneration and comparison of phenolic content, antioxidant and antityrosinase activity of in vivo and in vitro grown Asparagus officinalis, Sains Malays. 45: 373–381
Schmeda-Hirschmann, G., Jordan, M., Gerth, A., and Wilken, D., 2005, Secondary metabolite content in rhizomes, callus cultures and in vitro regenerated plantlets of Solidago chilensis, Zeitschrift fur Naturforschung C. 60: 5-10.
Szopa, A., Kokotkiewicz, A., Bednarz, M., Luczkiewicz, M. and Ekiert, H., 2017, Studies on the accumulation of phenolic acids and flavonoids in different in vitro culture systems of Schisandra chinensis (Turcz.) Baill. using a DAD-HPLC method, Phytochem Lett. 20: 462-469.
Wang, J., Qian, J., Yao, L. and Lu, Y., 2015, Enhanced production of flavonoids by methyl jasmonate elicitation in cell suspension culture of Hypericum perforatum, Bioresour. Bioprocess. 2: 1-9.
Smetanska, I., 2008, Production of secondary metabolites using plant cell cultures, Adv. Biochem. Eng. Biotechnol. 111: 187-228.
Sharma, V., Wani, S. R. and Chaudhary, P., 2016, Precursor mediated enhanced eugenol production in Ocimum sanctum L. through tissue culture methodologies and quantitative estimation through HPLC, J. Essent. Oil Bear. Pl. 19: 241-246.
Inam, F., Deo, S. and Narkhede, N., 2014, HPLC –UV method development and quantification of eugenol from methanolic extracts of some spices, J. Chem. Biol. Phys. Sci. 3: 96-102.
Phaisitsakulnat, N., Jirakiattikul, Y. and Rithichai, P., 2021, Effects of methyl jasmonate and salicylic acid on antioxidant contents in callus cultures of holy basil purple type, Thai Science and Technology Journal 29: 641-652. (in thai)
Banthorpe, B. V., 1994, Secondary metabolism in plant tissue culture: Scope and limitations, Nat. Prod. Rep. 11: 303-328.
Mohammadi N., S., Özgüneş, H. and Başaran, N., 2017, Pharmacological and toxicological properties of eugenol, Turk. J. Pharm. Sci. 14: 201-206.
Mahajan, N., Singh, J. and Sinha, S., 2014, Comparison of total flavonoid, phenolic content and antioxidant capacity in leaf and seed extracts from white holy basil (Ocimum sanctum), Int. J. Appl. Biol. Pharm. 5: 34-42.
Srivastava, M. P., Tiwari, R. and Sharma, N., 2013, Assessment of phenol and flavonoid content in the plant materials, J. New Biol. Reports 2: 163-166.
Thiruvengadam, M. and Chung, I. M., 2015, Phenolic compound production and biological activities from in vitro regenerated plants of gherkin (Cucumis anguria L.), Electron. J. Biotechnol. 18: 295-301.
Figueiró, A. D. A., Correa, C. M., Astarita, L. V. and Santarém, E. R., 2010, Long-term maintenance of in vitro cultures affects growth and secondary metabolism of St. John’s Wort, Cienc. Rural. 40: 2115-2121.
Danaee, M., Farzinebrahimi, R., Kadir, M. A., Sinniah, U. R., Mohamad, R. and Taha, R. M., 2015, Effects of MeJA and SA elicitation on secondary metabolic activity, antioxidant content and callogenesis in Phyllanthus pulcher, Braz. J. Bot. 38: 265–272.
