Effects of Freezing Extender Osmolality on Post-Thaw Semen Quality and Fertility of Thai Red Junglefowl Semen
Article Sidebar
Main Article Content
Abstract
The efficiency of frozen semen storage in chicken depends on the osmolality of the extender. The objective of this research was to compare the osmolality of the Thai red junglefowl extenders: low (LTRJFE), normal (TRJFE), and high (HTRJFE) osmolality levels with the Schramm extenders for frozen Thai red junglefowl semen. The experimental design used was the completely randomized design with 4-treatments and 12 replications. Then the quality of extenders was tested in Thai red junglefowl semen of 25 one-year-oldmales, by measuring the sperm motility after thawing with a computer-assisted semen analysis. The fertility of Thai red junglefowl semen was tested for 4 treatments and 6 replications with 6-hens/each. Thetotal number of hen used in this experiment was 144-hens. The results showed that the osmolarities of Schramm, LTRJFE, TRJFE, and HTRJFE were 441, 365, 452, and 472 mOsmol kg–1, respectively. The total motility after thawing frozen semen of the TRJFE (61.08±0.48%) was the best, highly significant different (P≤0.01) from the Schramm (54.83±0.52%), HTRJFE (37.83±0.66%), and LTRJFE (31.67±0.58%). The sperm progressive motile after thawing frozen semen of the TRJFE (24.50±0.79%) was the best, significantly different (P≤0.05) from the Schramm (23.25±0.58%), HTRJFE (21.83±1.04%), and LTRJFE (21.00±0.83%). The fertility rates of the TRJFE (57.00±0.70%) and Schramm (54.22±0.68%) were the best, highly significant different from the HTRJFE (32.90±1.74%) and LTRJFE (31.02±2.17%) (P<0.01). Therefore, the TRJFE was the optimum extenderfor the cryopreservation of Thai red junglefowl semen.
Article Details
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
เนื้อหาและข้อมูลในบทความที่ลงตีพิมพ์ในวารสารวิชาการสถาบันการอาชีวศึกษาเกษตรถือเป็นข้อคิดเห็นและความรับผิดชอบของผู้เขียนบทความโดยตรง ซึ่งกองบรรณาธิการวารสารไม่จำเป็นต้องเห็นด้วยหรือร่วมรับผิดชอบใดๆ
บทความ ข้อมูล เนื้อหา ฯลฯ ที่ได้รับการตีพิมพ์ในวารสารวิชาการสถาบันการอาชีวศึกษาเกษตรถือเป็นลิขสิทธิ์ของวารสารวิชาการสถาบันการอาชีวศึกษาเกษตร หากบุคคลหรือหน่วยงานใดต้องการนำทั้งหมดหรือส่วนหนึ่งส่วนใดไปเผยแพร่ต่อหรือเพื่อกระทำการใดๆ จะต้องได้รับอนุญาตเป็นลายลักษณ์อักษรจากวารสารวิชาการสถาบันการอาชีวศึกษาเกษตรก่อนเท่านั้น
References
กลุ่มวิจัยความหลากหลายทางชีวภาพ. (2559). ไก่ตั้ง. กรุงเทพฯ: กองบำรุงพันธุ์สัตว์ กรมปศุสัตว์ กระทรวงเกษตรและสหกรณ์.
Fumihito, A., et al. (1994). One subspecies of the red jungle fowl (Gallus gallus gallus) suffices as the matriarchic ancestor of all domestic breeds. Proceedings of the National Academy of Sciences, 91, 12505-12509.
Akaboot, P., et al. (2012). Genetic characterization of Red Junglefowl (Gallus gallus), Thai indigenous chicken (Gallus domesticus), and two commercial lines using selective functional genes compared to microsatellite markers.
Genetics and Molecular Research, 11(3), 1881-1890.
สำนักความหลากหลายทางชีวภาพ. (2559). พื้นที่ชีวมวล. กรุงเทพฯ: สำนักงานนโยบายและแผนทรัพยากรธรรมชาติและสิ่งแวดล้อม กระทรวงทรัพยากรธรรมชาติและสิ่งแวดล้อม.
สำนักความหลากหลายทางชีวภาพ. (2559). การคุกคามระบบนิเวศป่าไม้. กรุงเทพฯ: สำนักงานนโยบายและแผนทรัพยากรธรรมชาติและสิ่งแวดล้อม กระทรวงทรัพยากรธรรมชาติและสิ่งแวดล้อม.
Callaway, E. (2016). When chickens go wild. Nature, 529, 270-273.
Gadea, J., et al. (2004). The predictive value of porcine seminal parameters onfertility outcome under commercial conditions. Reproduction in Domestic Animals, 39(5), 303-308.
Satorre, M. M., et al. (2007). α-Tocopherol modifies tyrosine phosphorylation and capacitation-like state of cryopreserved porcine sperm. Theriogenology, 68(7), 958-965.
Blanco, J.M., et al. (2000). Species variation in osmotic,cryoprotectant, and coolingrate tolerance in poultry, eagle, and peregrine falcon spermatozoa. Biology of Reproduction, 63(4), 1164-1171.
Łukaszewicz, E., et al. (2004). Attempts on freezingthe Greylag (Anser anser L.) gander semen. Animal Reproduction Science Journal, 80(1-2), 163-173.
Han, X.F., et al. (2005). Effects of diluents, cryoprotectants,equilibration time and thawing temperature on cryopreservation of duck semen. International Journal of Poultry Science, 4(4), 197-201.
Long, J. A. (2006). Avian semen cryopreservation: what are the biological challenges? Poultry Science, 85(2), 232-236.
Blesbois, E., et al. (2007). Semen cryopreservation for ex situ management of genetic diversity inchicken: creation of the French avian cryobank. Poultry Science Journal, 86(3), 555-564.
Blesbois, E., et al. (2008). Predictors of success of semen cryopreservation in chickens. Theriogenology, 69(2), 252-261.
Blanco, J. M., et al. (2009). Implementing artificial insemination as an effective tool for ex situ conservation of endangered avian species. Theriogenology, 71(1), 200-213.
Purdy, P. H., et al. (2009). Evaluation of glycerol removal techniques, cryoprotectants and insemination methods for cryopreserving rooster sperm with implications of regeneration of breed or line or both. Poultry Science Journal, 88(10), 2184-2191.
Hammerstedt, R. H. (1994). Cryopreservation of poultry semen-current status and economics. In The 1st International Symposium on the Artificial Insemination of Poultry (p. 229-250). Savoy: Poultry Science Association.
Bakst, M. R. (1980). Fertilizing capacity and morphology of fowl and turkey spermatozoa in hypotonic extender. Journal of reproduction and fertility, 60(1), 121-127.
Holt, W. V. (2000). Basic aspects of frozen storage of semen. Animal Reproduction Science, 62(1-3), 3-22.
Holt, W. V. (2000). Fundamental aspects of sperm cryobiology: the importance of species and individual Differences. Theriogenology, 53(1), 47-58.
Rakha, B.A., et al. (2013). Evaluation of tris-citric acid, skim milk and sodium citrate extenders for liquid storage of Punjab Urial (Ovis vignei punjabiensis) spermatozoa. Reproductive Biology, 13(3),. 238-242.
Rakha, B.A., et al. (2016). Comparison of extenders for liquid storage of Indian red jungle fowl (Gallus gallus murghi) spermatozoa. Avian Biology Research, 9(3), 207-212.
Clarke, R. N., et al. (1984). Morphological changes in chicken and turkey spermatozoa incubated under various conditions. Poultry Science Journal, 63(4), 801-805.
Ashizawa, K., et al. (1994). Inhibition of temperature-dependent immobilization of fowl spermatozoa at body temperature by an increased intracellular pH. Journal of reproduction and fertility, 101, 593-598.
Holm, L. & Wishart, G. J., (1998). The effect of pH on the motility of spermatozoa from chicken,turkey and quail. Animal Reproduction Science, 54(1), 45-54.
Freshney, R. I. (2000). Specialized Cells. In: Freshney, R.I. (Ed). Culture of Animal Cells: A Manual of Basic Technique and Specialized Applications. 6th ed. Hoboken, New Jersey: John Wiley & Sons, Inc.
Lake, P.E. (1995). Historical perspective of artificial insemination technology. In First international symposium on the artificial insemination of poultry science. (p. 1-20). Savoy: Poultry Science Association.
Tselutin, K., et al. (1995). Cryopreservation of poultry semen. British Poultry Science, 36(5), 805-811.
Chalah, T., etal. (1999). In vitro comparison of fowl sperm viability in ejaculates frozen by three different techniques and relationship with subsequent fertility in vivo. Cryobiology, 39(2), 185-191.
Surai, P. E. & Wishart, G. J. (1996). Poultry artificial insemination technology in the countries of the former USSR. World’s Poultry Science Journal, 52(2), 27-43.
Burrows, W. H. & Quinn. J. P. (1937). The collection of spermatozoa from the domestic fowl and turkey. Poultry Science, 16(1), 19-24.
Gee, G. F. (1994). Artificial insemination and cryopreservation of semen from nondomestic birds. In The 1st international symposium on the artificial insemination of poultry (p. 262-279). College Park: University of Maryland.
เทวินทร์ วงษ์พระลับ. (2559). สรีรวิทยาการสืบพันธุ์และการผสมเทียมในสัตว์เลี้ยง. ขอนแก่น:ภาควิชาสัตวศาสตร์ คณะเกษตรศาสตร์ มหาวิทยาลัยขอนแก่น.
Vongpralub, T., et al. (2011). A comparison of simple vapour method and programable freezer on Motility and fertility of frozen Thai native chicken semen. In The 3rd international conference on sustainable animal agriculture for developing countries (p. 649-652). Nakhon Ratchasima: Suranaree University of Technology.
ชมัยพร สิทธิเกษมกิจ และคณะ. (2557). ผลของสายพันธุ์และการเสริมคลอเรสเตอรอลโหลดด้วยไซโครเดกซ์ตรินต่อคุณภาพแบบแช่แข็งของไก่. วารสารสัตวศาสตร์แห่งประเทศไทย, 1(พิเศษ 2), 75-78.
Thananurak, P., et al. (2017). Freeze ability and fertility of Thai native chicken semen in different diluents. The Thai Journal of Veterinary Medicine, 47(4). 551-556.
เทวินทร์ วงษ์พระลับ และคณะ. (2555). ผลของ cysteine และ glutathione ต่อคุณภาพน้ำเชื้อไก่พื้นเมืองไทยแบบแช่แข็ง. แก่นเกษตร, 40(พิเศษ 2), 339-342.
Ehling, C., et al. (2012). Cryopreservation of semen from genetic resource chicken lines. Agriculture and Forestry Research, 62(3), 151-158.
Mocé, E., et al. (2010). Cryoprotectant and freezing process alter the ability of chicken sperm to acrosome react. Animal Reproduction Science, 122(3-4), 359-366.
Abouelezz, F. M. K., et al. (2015). Effect of the interaction between cryoprotectant concentration and cryopreservation method on frozen/thawed chicken sperm variables. Reproduction in Domestic Animals, 50(1), 135–141.
Statistical Analysis System Institute (SAS). (2018). SAS/STAT user’s guide SAS University Edition 9.4. Cary, NC: SAS Institute Inc.
Chuaychu-noo, N., et al. (2017). Supplementing rooster sperm with cholesterol-loaded-cyclodextrin improves fertility after cryopreservation. Cryobiology, 74, 8-12.
Sexton, T. J. & Fewlass, T. A. (1978). A new poultry semen extender: 2. Effect of the diluents components on the fertilizing capacity of chicken semen stored at 5 C. Poultry Science, 57(1), 277-284.
Mokrane, I. O., et al. (2018). The interest of hyperosmolar extenders in rooster sperm cryopreservation. RUDN Journal of Agronomy and Animal Industries. 13(4). 396-404.
Donoghue, A. M. & Wishart. G. J. (2000). Storage of poultry semen. Animal Reproduction Science, 62(1-3), 213-232.