ผลของออสโมแลลิตีของน้ำยาเจือจางการแช่แข็งต่อ คุณภาพน้ำเชื้อหลังการทำละลายและการผสมติดของ น้ำเชื้อไก่ป่าตุ้มหูขาว
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
ประสิทธิภาพการเก็บรักษาน้ำเชื้อแช่แข็งในไก่ ขึ้นกับค่าออสโมแลลิตีของน้ำยาเจือจาง การศึกษานี้มีวัตถุประสงค์เพื่อศึกษาค่าออสโมแลลิตีน้ำยาเจือจางสำหรับการเก็บรักษาน้ำเชื้อแช่แข็งไก่ป่าตุ้มหูขาวโดยทำการศึกษาน้ำยาเจือจางที่มีออสโมแลลิตีแตกต่างกัน ได้แก่ น้ำยาเจือจางที่มีออสโมแลลิตีต่ำ (LTRJFE), ปกติ (TRJFE) และสูง(HTRJFE) ตามลำดับ เปรียบเทียบกับน้ำยาเจือจาง Schramm ด้วยแผนการทดลองแบบสุ่มสมบูรณ์ โดยใช้น้ำเชื้อไก่ป่าตุ้มหูขาวอายุ 1 ปี จำนวน 25 ตัว ประเมินคุณภาพน้ำเชื้อหลังทำละลายโดยประเมินการเคลื่อนที่ของตัวอสุจิด้วยเครื่อง Computer-assisted semen analysisจำนวน 4 ทรีทเมนต์ๆ ละ 12 ซ้ำ และประเมินการผสมติดโดยใช้แม่ไก่ไข่ลูกผสมทรีทเมนต์ละ 6 ซ้ำ ๆ ละ 6 ตัว รวม 144 ตัว
พบว่าน้ำยาเจือจาง Schramm, LTRJFE, TRJFE และ HTRJFE มีค่าออสโมแลลิตี 441, 365, 452 และ 472mOsmol kg–1ตามลำดับ การเคลื่อนที่ทั้งหมดของตัวอสุจิหลังทำละลาย พบว่าน้ำยาเจือจาง TRJFE (61.08±0.48%) ดีที่สุด สูงกว่าน้ำยาเจือจาง Schramm (54.83±0.52%), HTRJFE (37.83±0.66%) และ LTRJFE (31.67±0.58%)(P≤0.01)น้ำเชื้อที่ใช้น้ำยาเจือจาง TRJFE มีค่าการเคลื่อนที่ไปข้างหน้าของตัวอสุจิ (24.50±0.79%) สูงที่สุด แตกต่างอย่างมีนัยสำคัญทางสถิติ (P<0.05) เมื่อเปรียบเทียบกับน้ำยาเจือจาง Schramm (23.25±0.58%), HTRJFE (21.83±1.04%) และ LTRJFE (21.00±0.83%)อัตราการผสมติดพบว่าน้ำยาเจือจาง TRJFE (57.00±0.70%) และ Schramm (54.22±0.68%) ดีที่สุด สูงกว่าอย่างมีนัยสำคัญยิ่งทางสถิติ (P<0.01) เมื่อเปรียบเทียบกับน้ำยาเจือจาง HTRJFE (32.90±1.74%) และ LTRJFE (31.02±2.17%) ดังนั้นน้ำยาเจือจาง TRJFE มีความเหมาะสมในการใช้เป็นน้ำยาเจือจางน้ำเชื้อแช่แข็งในไก่ป่าตุ้มหูขาว
Article Details
อนุญาตภายใต้เงื่อนไข Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
เนื้อหาและข้อมูลในบทความที่ลงตีพิมพ์ใน Journal of Vocational Education in Agriculture ถือเป็นข้อคิดเห็นและความรับผิดชอบของผู้เขียนบทความโดยตรง ซึ่งกองบรรณาธิการวารสารไม่จำเป็นต้องเห็นด้วยหรือร่วมรับผิดชอบใดๆ
บทความ ข้อมูล เนื้อหา ฯลฯ ที่ได้รับการตีพิมพ์ใน Journal of Vocational Education in Agriculture ถือเป็นลิขสิทธิ์ของJournal of Vocational Education in Agriculture หากบุคคลหรือหน่วยงานใดต้องการนำทั้งหมดหรือส่วนหนึ่งส่วนใดไปเผยแพร่ต่อหรือเพื่อกระทำการใดๆ จะต้องได้รับอนุญาตเป็นลายลักษณ์อักษรจาก Journal of Vocational Education in Agriculture ก่อนเท่านั้น
เอกสารอ้างอิง
กลุ่มวิจัยความหลากหลายทางชีวภาพ. (2559). ไก่ตั้ง. กรุงเทพฯ: กองบำรุงพันธุ์สัตว์ กรมปศุสัตว์ กระทรวงเกษตรและสหกรณ์.
Fumihito, A., et al. (1994). One subspecies of the red jungle fowl (Gallus gallus gallus) suffices as the matriarchic ancestor of all domestic breeds. Proceedings of the National Academy of Sciences, 91, 12505-12509.
Akaboot, P., et al. (2012). Genetic characterization of Red Junglefowl (Gallus gallus), Thai indigenous chicken (Gallus domesticus), and two commercial lines using selective functional genes compared to microsatellite markers.
Genetics and Molecular Research, 11(3), 1881-1890.
สำนักความหลากหลายทางชีวภาพ. (2559). พื้นที่ชีวมวล. กรุงเทพฯ: สำนักงานนโยบายและแผนทรัพยากรธรรมชาติและสิ่งแวดล้อม กระทรวงทรัพยากรธรรมชาติและสิ่งแวดล้อม.
สำนักความหลากหลายทางชีวภาพ. (2559). การคุกคามระบบนิเวศป่าไม้. กรุงเทพฯ: สำนักงานนโยบายและแผนทรัพยากรธรรมชาติและสิ่งแวดล้อม กระทรวงทรัพยากรธรรมชาติและสิ่งแวดล้อม.
Callaway, E. (2016). When chickens go wild. Nature, 529, 270-273.
Gadea, J., et al. (2004). The predictive value of porcine seminal parameters onfertility outcome under commercial conditions. Reproduction in Domestic Animals, 39(5), 303-308.
Satorre, M. M., et al. (2007). α-Tocopherol modifies tyrosine phosphorylation and capacitation-like state of cryopreserved porcine sperm. Theriogenology, 68(7), 958-965.
Blanco, J.M., et al. (2000). Species variation in osmotic,cryoprotectant, and coolingrate tolerance in poultry, eagle, and peregrine falcon spermatozoa. Biology of Reproduction, 63(4), 1164-1171.
Łukaszewicz, E., et al. (2004). Attempts on freezingthe Greylag (Anser anser L.) gander semen. Animal Reproduction Science Journal, 80(1-2), 163-173.
Han, X.F., et al. (2005). Effects of diluents, cryoprotectants,equilibration time and thawing temperature on cryopreservation of duck semen. International Journal of Poultry Science, 4(4), 197-201.
Long, J. A. (2006). Avian semen cryopreservation: what are the biological challenges? Poultry Science, 85(2), 232-236.
Blesbois, E., et al. (2007). Semen cryopreservation for ex situ management of genetic diversity inchicken: creation of the French avian cryobank. Poultry Science Journal, 86(3), 555-564.
Blesbois, E., et al. (2008). Predictors of success of semen cryopreservation in chickens. Theriogenology, 69(2), 252-261.
Blanco, J. M., et al. (2009). Implementing artificial insemination as an effective tool for ex situ conservation of endangered avian species. Theriogenology, 71(1), 200-213.
Purdy, P. H., et al. (2009). Evaluation of glycerol removal techniques, cryoprotectants and insemination methods for cryopreserving rooster sperm with implications of regeneration of breed or line or both. Poultry Science Journal, 88(10), 2184-2191.
Hammerstedt, R. H. (1994). Cryopreservation of poultry semen-current status and economics. In The 1st International Symposium on the Artificial Insemination of Poultry (p. 229-250). Savoy: Poultry Science Association.
Bakst, M. R. (1980). Fertilizing capacity and morphology of fowl and turkey spermatozoa in hypotonic extender. Journal of reproduction and fertility, 60(1), 121-127.
Holt, W. V. (2000). Basic aspects of frozen storage of semen. Animal Reproduction Science, 62(1-3), 3-22.
Holt, W. V. (2000). Fundamental aspects of sperm cryobiology: the importance of species and individual Differences. Theriogenology, 53(1), 47-58.
Rakha, B.A., et al. (2013). Evaluation of tris-citric acid, skim milk and sodium citrate extenders for liquid storage of Punjab Urial (Ovis vignei punjabiensis) spermatozoa. Reproductive Biology, 13(3),. 238-242.
Rakha, B.A., et al. (2016). Comparison of extenders for liquid storage of Indian red jungle fowl (Gallus gallus murghi) spermatozoa. Avian Biology Research, 9(3), 207-212.
Clarke, R. N., et al. (1984). Morphological changes in chicken and turkey spermatozoa incubated under various conditions. Poultry Science Journal, 63(4), 801-805.
Ashizawa, K., et al. (1994). Inhibition of temperature-dependent immobilization of fowl spermatozoa at body temperature by an increased intracellular pH. Journal of reproduction and fertility, 101, 593-598.
Holm, L. & Wishart, G. J., (1998). The effect of pH on the motility of spermatozoa from chicken,turkey and quail. Animal Reproduction Science, 54(1), 45-54.
Freshney, R. I. (2000). Specialized Cells. In: Freshney, R.I. (Ed). Culture of Animal Cells: A Manual of Basic Technique and Specialized Applications. 6th ed. Hoboken, New Jersey: John Wiley & Sons, Inc.
Lake, P.E. (1995). Historical perspective of artificial insemination technology. In First international symposium on the artificial insemination of poultry science. (p. 1-20). Savoy: Poultry Science Association.
Tselutin, K., et al. (1995). Cryopreservation of poultry semen. British Poultry Science, 36(5), 805-811.
Chalah, T., etal. (1999). In vitro comparison of fowl sperm viability in ejaculates frozen by three different techniques and relationship with subsequent fertility in vivo. Cryobiology, 39(2), 185-191.
Surai, P. E. & Wishart, G. J. (1996). Poultry artificial insemination technology in the countries of the former USSR. World’s Poultry Science Journal, 52(2), 27-43.
Burrows, W. H. & Quinn. J. P. (1937). The collection of spermatozoa from the domestic fowl and turkey. Poultry Science, 16(1), 19-24.
Gee, G. F. (1994). Artificial insemination and cryopreservation of semen from nondomestic birds. In The 1st international symposium on the artificial insemination of poultry (p. 262-279). College Park: University of Maryland.
เทวินทร์ วงษ์พระลับ. (2559). สรีรวิทยาการสืบพันธุ์และการผสมเทียมในสัตว์เลี้ยง. ขอนแก่น:ภาควิชาสัตวศาสตร์ คณะเกษตรศาสตร์ มหาวิทยาลัยขอนแก่น.
Vongpralub, T., et al. (2011). A comparison of simple vapour method and programable freezer on Motility and fertility of frozen Thai native chicken semen. In The 3rd international conference on sustainable animal agriculture for developing countries (p. 649-652). Nakhon Ratchasima: Suranaree University of Technology.
ชมัยพร สิทธิเกษมกิจ และคณะ. (2557). ผลของสายพันธุ์และการเสริมคลอเรสเตอรอลโหลดด้วยไซโครเดกซ์ตรินต่อคุณภาพแบบแช่แข็งของไก่. วารสารสัตวศาสตร์แห่งประเทศไทย, 1(พิเศษ 2), 75-78.
Thananurak, P., et al. (2017). Freeze ability and fertility of Thai native chicken semen in different diluents. The Thai Journal of Veterinary Medicine, 47(4). 551-556.
เทวินทร์ วงษ์พระลับ และคณะ. (2555). ผลของ cysteine และ glutathione ต่อคุณภาพน้ำเชื้อไก่พื้นเมืองไทยแบบแช่แข็ง. แก่นเกษตร, 40(พิเศษ 2), 339-342.
Ehling, C., et al. (2012). Cryopreservation of semen from genetic resource chicken lines. Agriculture and Forestry Research, 62(3), 151-158.
Mocé, E., et al. (2010). Cryoprotectant and freezing process alter the ability of chicken sperm to acrosome react. Animal Reproduction Science, 122(3-4), 359-366.
Abouelezz, F. M. K., et al. (2015). Effect of the interaction between cryoprotectant concentration and cryopreservation method on frozen/thawed chicken sperm variables. Reproduction in Domestic Animals, 50(1), 135–141.
Statistical Analysis System Institute (SAS). (2018). SAS/STAT user’s guide SAS University Edition 9.4. Cary, NC: SAS Institute Inc.
Chuaychu-noo, N., et al. (2017). Supplementing rooster sperm with cholesterol-loaded-cyclodextrin improves fertility after cryopreservation. Cryobiology, 74, 8-12.
Sexton, T. J. & Fewlass, T. A. (1978). A new poultry semen extender: 2. Effect of the diluents components on the fertilizing capacity of chicken semen stored at 5 C. Poultry Science, 57(1), 277-284.
Mokrane, I. O., et al. (2018). The interest of hyperosmolar extenders in rooster sperm cryopreservation. RUDN Journal of Agronomy and Animal Industries. 13(4). 396-404.
Donoghue, A. M. & Wishart. G. J. (2000). Storage of poultry semen. Animal Reproduction Science, 62(1-3), 213-232.
