ผลของสารสกัดน้ำจากเห็ดถั่งเช่าสีทองในการกระตุ้นเซลล์ภูมิคุ้มกันฆ่าเซลล์มะเร็งเต้านมและมะเร็งตับ
คำสำคัญ:
สารสกัดน้ำ, เห็ดถั่งเช่าสีทอง, เซลล์ภูมิคุ้มกัน, เซลล์มะเร็งบทคัดย่อ
เห็ดถั่งเช่าสีทองนิยมนำมาใช้เป็นยาสมุนไพรบำรุงสุขภาพและรักษาโรคต่าง ๆ เนื่องจากมีฤทธิ์ทางชีวภาพหลายด้าน อย่างไรก็ตามผลของสารสกัดน้ำจากเห็ดถั่งเช่าสีทองที่อุณหภูมิ 45 องศาเซลเซียส เป็นเวลา 3 ชั่วโมง ในการกระตุ้นเซลล์ในระบบภูมิคุ้มกันของมนุษย์ในการทำลายเซลล์มะเร็งเต้านมและเซลล์มะเร็งตับยังไม่มีการศึกษาที่แน่ชัด การศึกษานี้ทำการวิเคราะห์หาปริมาณคอร์ไดเซปินในสารสกัดด้วย Ultra-performance liquid chromatography พบว่ามีค่าเท่ากับ 3.85 มิลลิกรัมต่อกรัมของนํ้าหนักแห้งหลังสกัด ทดสอบความเป็นพิษของสารสกัดในเซลล์มะเร็งเต้านม (MCF-7 และ MDA-MB-231) เซลล์มะเร็งตับ (Huh-7 และ SNU449) และ PBMCs ด้วย PrestoBlue™ cell viability reagent พบว่า สารสกัดไม่มีความเป็นพิษกับเซลล์ (IC50 มากกว่า 1,000 ไมโครกรัม/มิลลิลิตร) หลังบ่มเป็นเวลา 24 และ 48 ชั่วโมง แต่สารสกัดมีความเป็นพิษกับ non-adherent cells ที่เวลา 48 ชั่วโมง (IC50 เท่ากับ 354.2 ± 4.41) ทำการทดสอบประสิทธิภาพของสารสกัดในการกระตุ้นเซลล์ภูมิคุ้มกันในการฆ่าเซลล์มะเร็งโดยใช้สารสกัดที่ความเข้มข้น 25, 50 และ 100 ไมโครกรัมต่อมิลลิลิตรในการกระตุ้น non-adherent cells ฆ่าเซลล์มะเร็งเต้านมและมะเร็งตับ โดยตรวจสอบการรอดชีวิตของเซลล์มะเร็งด้วยการย้อมสีคริสตัลไวโอเลต พบว่า สารสกัดความเข้มข้น 100 ไมโครกรัมต่อมิลลิลิตร สามารถเพิ่มประสิทธิภาพ non-adherent cells ที่อัตราส่วน 20:1 ให้ฆ่าเซลล์มะเร็งชนิด MCF-7, MDA-MB-231, Huh และ SNU-449 ได้เพิ่มขึ้นอย่างมีนัยสำคัญทางสถิติ เมื่อเปรียบเทียบกับกลุ่มที่บ่มร่วมกับสารสกัดความเข้มข้น 100 ไมโครกรัมต่อมิลลิลิตร และไม่มีเซลล์ภูมิคุ้มกัน โดยให้ค่าร้อยละการอยู่รอดของเซลล์ MCF-7 เท่ากับ 61.89 ± 10.86 (p<0.0001) ร้อยละการอยู่รอดของเซลล์ MDA-MB-231 เท่ากับ 70.26 ± 8.29 (p<0.0001) ร้อยละการอยู่รอดของเซลล์ Huh-7 เท่ากับ 62.82 ± 7.97 (p<0.0001) และร้อยละการอยู่รอดของเซลล์ SNU-449 เท่ากับ66.06±1.68 (p<0.0001) จากการศึกษานี้สรุปได้ว่าสารสกัดจากเห็ดถั่งเช่าสีทองที่สกัดด้วยน้ำที่อุณหภูมิ 45 องศาเซลเซียส เป็นเวลา 3 ชั่วโมง สามารถกระตุ้นเซลล์ภูมิคุ้มกันของมนุษย์ในฆ่าเซลล์มะเร็งได้ ดังนั้นเห็ดถั่งเช่าสีทองอาจจะถูกพัฒนาเป็นผลิตภัณฑ์เพื่อเสริมภูมิคุ้มกันในคนสุขภาพดี หรือใช้ในการกระตุ้นการทำงานของระบบภูมิคุ้มกันในผู้ป่วยโรคมะเร็งได้
เอกสารอ้างอิง
Ashraf SA, Elkhalifa AEO, Siddiqui AJ, Patel M, Awadelkareem AM, Snoussi M, et al. Cordycepin for Health and Wellbeing: A Potent Bioactive Metabolite of an Entomopathogenic Cordyceps Medicinal Fungus and Its Nutraceutical and Therapeutic Potential. Molecules (Basel, Switzerland). 2020;25(12).
Das G, Shin H-S, Leyva-Gómez G, Prado-Audelo MLD, Cortes H, Singh YD, et al. Cordyceps spp.: A Review on Its Immune-Stimulatory and Other Biological Potentials. Frontiers in Pharmacology. 2021;11.
Jin Y, Meng X, Qiu Z, Su Y, Yu P, Qu P. Anti-tumor and anti-metastatic roles of cordycepin, one bioactive compound of Cordyceps militaris. Saudi journal of biological sciences. 2018;25(5):991-5.
Kim H-J, Lee T-H, Yong Sam K, Son M-W, Kim C-K. Immunomodulatory Activities of Ethanol Extract of Cordyceps militaris in Immunocompromised Mice. Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition. 2012;41:494-500.
Jeong MH, Lee CM, Lee SW, Seo SY, Seo MJ, Kang BW, et al. Cordycepin-enriched Cordyceps militaris induces immunomodulation and tumor growth delay in mouse-derived breast cancer. Oncology reports. 2013;30(4):1996-2002.
Park Y, Choi S, Kim B. Effects of Cordyceps militaris Extracts on Macrophage as Immune Conductors. Applied Sciences. 2021;11:2206.
Park Y, Choi S, Kim B, Lee SG. Effects of Cordyceps militaris Extracts on Macrophage as Immune Conductors. Applied Sciences. 2021;11(5):2206.
Zhu S-J, Pan J, Yang J-J, Zhou A. Immune activation and toxicity evaluation of fresh Cordyceps militaris extracts by high-pressure processing. Food and Agricultural Immunology. 2015;26(5):645-58.
Jung SJ, Jung ES, Choi EK, Sin HS, Ha KC, Chae SW. Immunomodulatory effects of a mycelium extract of Cordyceps (Paecilomyces hepiali; CBG-CS-2): a randomized and double-blind clinical trial. BMC complementary and alternative medicine. 2019;19(1):77.
Virani S, Bilheem S, Chansaard W, Chitapanarux I, Daoprasert K, Khuanchana S, et al. National and Subnational Population-Based Incidence of Cancer in Thailand: Assessing Cancers with the Highest Burdens. Cancers. 2017;9(8):108.
Panwong S, Wathikthinnakon M, Kaewkod T, Sawasdee N, Tragoolpua Y, Yenchitsomanus PT, et al. Cordycepin Sensitizes Cholangiocarcinoma Cells to Be Killed by Natural Killer-92 (NK-92) Cells. Molecules (Basel, Switzerland). 2021;26(19).
Song J, Wang Y, Teng M, Zhang S, Yin M, Lu J, et al. Cordyceps militaris induces tumor cell death via the caspase‑dependent mitochondrial pathway in HepG2 and MCF‑7 cells. Molecular medicine reports. 2016;13 (6):5132-40.
Zhang H, Wang J, Dong S, Xu F, Wang S. The Optimization of Extraction of Cordycepin from Fruiting Body of Cordyceps militaris (L.) LinkAdvanced Materials Research. 2011;393-395:1024-8.
Choi J, Paje L, Kwon B, Noh J, Lee S. Quantitative analysis of cordycepin in Cordyceps militaris under different extraction methods. Journal of Applied Biological Chemistry. 2021;64:153-8.
Jo WS, Choi YJ, Kim HJ, Lee JY, Nam BH, Lee JD, et al. The Anti-inflammatory Effects of Water Extract from Cordyceps militaris in Murine Macrophage. Mycobiology. 2010;38(1):46-51.
Tima S, Tapingkae T, To-Anun C, Noireung P, Intaparn P, Chaiyana W, et al. Antileukaemic Cell Proliferation and Cytotoxic Activity of Edible Golden Cordyceps (Cordyceps militaris) Extracts. Evidence-based complementary and alternative medicine : eCAM. 2022;2022:5347718.
Jin CY, Kim GY, Choi YH. Induction of apoptosis by aqueous extract of Cordyceps militaris through activation of caspases and inactivation of Akt in human breast cancer MDA-MB-231 Cells. Journal of microbiology and biotechnology. 2008;18(12):1997-2003.
Theodossiou TA, Ali M, Grigalavicius M, Grallert B, Dillard P, Schink KO, et al. Simultaneous defeat of MCF7 and MDA-MB-231 resistances by a hypericin PDT–tamoxifen hybrid therapy. npj Breast Cancer.
Huang Z, Yu P, Tang J. Characterization of Triple-Negative Breast Cancer MDA-MB-231 Cell Spheroid Model. OncoTargets and therapy. 2020;13:5395-405.
Nwosu ZC, Battello N, Rothley M, Piorońska W, Sitek B, Ebert MP, et al. Liver cancer cell lines distinctly mimic the metabolic gene expression pattern of the corresponding human tumours. Journal of Experimental & Clinical Cancer Research. 2018;37(1):211.
Kang HJ, Baik HW, Kim SJ, Lee SG, Ahn HY, Park JS, et al. Cordyceps militaris Enhances Cell-Mediated Immunity in Healthy Korean Men. J Med Food. 2015;18(10):1164-72.
Kim CS, Lee SY, Cho SH, Ko YM, Kim BH, Kim HJ, et al. Cordyceps militaris induces the IL-18 expression via its promoter activation for IFN-gamma production. J Ethnopharmacol. 2008;120(3):366-71.
Zhu SJ, Pan J, Zhao B, Liang J, Ze-Yu W, Yang JJ. Comparisons on enhancing the immunity of fresh and dry Cordyceps militaris in vivo and in vitro. J Ethnopharmacol. 2013;149(3):713-9.
Xiong Y, Zhang S, Xu L, Song B, Huang G, Lu J, et al. Suppression of T-cell activation in vitro and in vivo by cordycepin from Cordyceps militaris. J Surg Res. 2013;185(2):912-22.
ดาวน์โหลด
เผยแพร่แล้ว
รูปแบบการอ้างอิง
ฉบับ
ประเภทบทความ
สัญญาอนุญาต
ลิขสิทธิ์ (c) 2023 วารสารนเรศวรพะเยา
อนุญาตภายใต้เงื่อนไข Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
ผู้นิพนธ์ต้องรับผิดชอบข้อความในบทนิพนธ์ของตน มหาวิทยาลัยพะเยา ไม่จำเป็นต้องเห็นด้วยกับบทความที่ตีพิมพ์เสมอไป ผู้สนใจสามารถคัดลอก และนำไปใช้ได้ แต่จะต้องขออนุมัติเจ้าของ และได้รับการอนุมัติเป็นลายลักษณ์อักษรก่อน พร้อมกับมีการอ้างอิงและกล่าวคำขอบคุณให้ถูกต้องด้วย
