สารสกัดกระชายลดการตายของเซลล์ประสาทและการกระตุ้นของเซลล์แอสโทรไซต์ในสมองส่วนฮิพโพแคมพัสของหนูจำลองโรคหลอดเลือดสมองชนิดขาดเลือด
คำสำคัญ:
กระชาย, โรคหลอดเลือดสมองชนิดขาดเลือด, แอสโทรไซต์, ฮิพโพแคมพัสบทคัดย่อ
โรคหลอดเลือดสมองชนิดขาดเลือด (ischemic stroke) มีความสำคัญต่อการเกิดการบาดเจ็บของสมอง ซึ่งส่งผลต่อทั้งเซลล์ประสาท (neuron) เซลล์เกลีย (glial cell) รวมทั้งหลอดเลือด โดยโรคหลอดเลือดสมองเป็นโรคที่มีความสำคัญและเป็นปัญหาที่พบได้บ่อยของประชากรทั่วโลก โดยเฉพาะในกลุ่มผู้สูงอายุ และเนื่องด้วยข้อจำกัดทางด้านการรักษา ดังนั้นจึงมีความจำเป็นและตระหนักอย่างยิ่งในการหาแนวทางป้องกันและรักษา ซึ่งการศึกษาครั้งนี้มีวัตถุประสงค์เพื่อศึกษาฤทธิ์ของสารสกัดกระชาย (Boesenbergia rotunda) ต่อการป้องกันการตายของเซลล์ประสาท และการเปลี่ยนแปลงของเซลล์แอสโทรไซต์ (astrocytes) ในหนูที่ถูกจำลองโรคหลอดเลือดสมอง ในการทดลองครั้งนี้ หนูสายพันธุ์ Wistar เพศผู้จะได้รับการป้อนด้วยสารสกัดกระชาย ขนาด 200 มก./กก. น้ำหนักตัว ทุกวัน เป็นเวลา 14 วัน ก่อนที่จะเหนี่ยวนำให้เป็นโรคหลอดเลือดสมองด้วยวิธีการอุดกั้นหลอดเลือด middle cerebral artery ด้านขวา จากนั้นหนูจะได้รับการป้อนสารสกัดต่อเนื่องอีก 7 วันหลังจากที่เป็นโรคหลอดเลือดสมองแล้ว ผลการทดลองพบว่าสารสกัดกระชายขนาด 200 มก./กก. น้ำหนักตัว สามารถลดการตายของเซลล์ประสาทในสมองส่วน CA1 ของฮิพโพแคมพัสในหนูจำลองโรคหลอดสมองชนิดขาดเลือด และนอกจากนี้เรายังพบว่าสารสกัดกระชาย ขนาด 200 มก./กก. น้ำหนักตัว สามารถลดการแสดงออกของเซลล์ astrocytes ในสมองบริเวณดังกล่าวนี้ด้วย ดังนั้นจากผลการศึกษา สรุปได้ว่าสารสกัดกระชายขนาด 200 มก./กก. น้ำหนักตัว สามารถลดการตายของเซลล์ประสาทผ่านการลดการกระตุ้นของเซลล์ astrocytes ดังนั้นกระชายก็เป็นสมุนไพลที่สำคัญอีกหนึ่งตัว ซึ่งคาดว่าน่าจะสามารถป้องกันการบาดเจ็บของเซลล์สมองจากโรคหลอดเลือดสมองได้ แต่อย่างไรก็ตาม ข้อมูลจากการศึกษาครั้งนี้เป็นเพียงข้อมูลพื้นฐานเพื่อนำไปศึกษาในเชิงลึกของสารออกฤทธิ์ของกระชายต่อไป
เอกสารอ้างอิง
2. Feigin VL, Norrving B, Mensah GA. Global Burden of Stroke. Circ Res. 2017;120(3):439-448.
3. Stapf C, Mohr JP. Ischemic stroke therapy. Annu Rev Med. 2002;53:453-475.
4. Broughton BR, Reutens DC, Sobey CG. Apoptotic mechanisms after cerebral ischemia. Stroke. 2009;40(5):e331-339.
5. Baudry M, Baudry M, Bi X., Gall C, Lynch G. The biochemistry of memory: The 26year journey of a
'new and specific hypothesis'. Neurobiol Learn Mem. 2011;95(2):125-133.
6. Kirino T. Delayed neuronal death in the gerbil hippocampus following ischemia. Brain Res. 1982; 239(1):57-69.
7. Dirnagl U, Iadecola C, Moskowitz MA. Pathobiology of ischaemic stroke: an integrated view. Trends Neurosci. 1999; 22(9):391-397.
8. Heiss WD. The ischemic penumbra: correlates in imaging and implications for treatment of ischemic stroke. The Johann Jacob Wepfer award 2011. Cerebrovasc Dis. 2011;32(4):307-320.
9. Stoll G, Jander S, Schroeter M. Inflammation and glial responses in ischemic brain lesions. Prog Neurobiol.1998; 56(2):149-171.
10. Susarla BT, Villapol S, Yi JH, Geller HM, Symes AJ. Temporal patterns of cortical proliferation of glial cell populations after traumatic brain injury in mice. ASN Neuro. 2014;6(3):159-170.
11. Liu J, Wang Y, Akamatsu Y, Lee CC, Stetler RA, Lawton MT, et al. Vascular remodeling after ischemic stroke: mechanisms and therapeutic potentials. Prog Neurobiol. 2014;115:138-156.
12. Choi DW, Rothman SM. The role of glutamate neurotoxicity in hypoxic-ischemic neuronal death. Annu Rev Neurosci. 1990;13:171-182.
13. Lipton P. Ischemic cell death in brain neurons. Physiol Rev, 1999;79(4):1431-1568.
14. Eng-Chong T, Yean-Kee L, Chin-Fei C, Choon-Han H, Sher-Ming W, Li-Ping CT, et al. Boesenbergia rotunda: From Ethnomedicine to Drug Discovery. Evid Based Complement Alternat Med. 2012;473637.
15. Shindo K, Kato M, Kinoshita A, Kobayashi A, Koike Y. Analysis of antioxidant activities contained in the Boesenbergia pandurata Schult. Rhizome. Biosci Biotechnol Biochem. 2006;70(9):2281-2284.
16. Sohn JH, Han KL, Lee SH, Hwang JK. Protective effects of panduratin A against oxidative damage of tert-butylhydroperoxide in human HepG2 cells. Biol Pharm Bull. 2005;28(6):1083-1086.
17. Tewtrakul S, Subhadhirasakul S, Karalai C, Ponglimanont C, Cheenpracha S. Anti-inflammatory effects of compounds from Kaempferia parviflora and Boesenbergia pandurata. Food Chemistry, 2009;115(2):534–538.
18. Longa EZ, Weinstein PR, Carlson S, Cummins R. Reversible middle cerebral artery occlusion without craniectomy in rats. Stroke, 1989;20(1):84-91.
19. Kirino T, Sano K. Selective vulnerability in the gerbil hippocampus following transient ischemia. Acta Neuropathol, 1984;62(3):201-208.
20. White BC, Sullivan J, M.DeGracia DJ, O'Neil BJ, Neumar RW, Grossman LI, et al. Brain ischemia and reperfusion: molecular mechanisms of neuronal injury. J Neurol Sci, 2000;179(S1-2):1-33.
21. Takano T, Oberheim N, Cotrina ML. Nedergaard M. Astrocytes and ischemic injury. Stroke, 2009;40(3 Suppl):S8-12.
22. Sims NR, Yew WP. Reactive astrogliosis in stroke: Contributions of astrocytes to recovery of neurological function. Neurochem Int, 2017;107:88-103.
23. Yoon JS, Jo D, Lee HS, Yoo SW, Lee TY, Hwang WS, et al. Spatiotemporal Protein Atlas of Cell
Death-Related Molecules in the Rat MCAO Stroke Model. Exp Neurobiol, 2018;27(4):287-298.
24. Suzumura A, Takeuchi H, Zhang G, Kuno R, Mizuno T. Roles of glia-derived cytokines on neuronal degeneration and regeneration. Ann N Y Acad Sci. 2006;1088:219-229.
25. Greenberg, DA, Jin K. Vascular endothelial growth factors (VEGFs) and stroke. Cell Mol Life Sci. 2013;70(10):1753-1761.
26. Shen F, Fan Y, Su H, Zhu Y, Chen Y, Liu W, et al. Adeno-associated viral vector-mediated hypoxia-regulated VEGF gene transfer promotes angiogenesis following focal cerebral ischemia in mice. Gene Ther. 2008;15(1):30-39.
ดาวน์โหลด
เผยแพร่แล้ว
รูปแบบการอ้างอิง
ฉบับ
ประเภทบทความ
สัญญาอนุญาต
ผู้นิพนธ์ต้องรับผิดชอบข้อความในบทนิพนธ์ของตน มหาวิทยาลัยพะเยา ไม่จำเป็นต้องเห็นด้วยกับบทความที่ตีพิมพ์เสมอไป ผู้สนใจสามารถคัดลอก และนำไปใช้ได้ แต่จะต้องขออนุมัติเจ้าของ และได้รับการอนุมัติเป็นลายลักษณ์อักษรก่อน พร้อมกับมีการอ้างอิงและกล่าวคำขอบคุณให้ถูกต้องด้วย
