ผลของสภาวะการเพาะเลี้ยงต่อการเจริญของเนื้อเยื่อในว่านสากเหล็ก (Molineria latifolia (Drayand. Ex. W. T. Aiton) Herb ex. Kurz.)

วาสนา แผลติตะ; สุจิตรา  เจาะจง; ภาวิณี ท้าวเพชร; อินทร์ธัชว์  ศรีบุตต์

doi:10.14456/kcsj.2025.2

Authors

วาสนา แผลติตะ Department of Plant Science Faculty of Natural Resources Rajamangala University of Technology ISAN Sakon Nakhon campus
สุจิตรา เจาะจง Department of Plant Science Faculty of Natural Resources Rajamangala University of Technology ISAN Sakon Nakhon campus
ภาวิณี ท้าวเพชร Department of Plant Science Faculty of Natural Resources Rajamangala University of Technology ISAN Sakon Nakhon campus
อินทร์ธัชว์ ศรีบุตต์ Department of Plant Science Faculty of Natural Resources Rajamangala University of Technology ISAN Sakon Nakhon campus

DOI:

https://doi.org/10.14456/kcsj.2025.2

Keywords:

Molineria latifolia (Drayand. Ex W.T.Aiton) Herb ex. Kurz, Plant Growth Regulators, tissue culture

Abstract

The objective of this experiment was to study on effect of culture conditions in regeneration system of Molineria latifolia (Drayand. Ex W.T.Aiton) Herb ex. Kurz by tissue culture. The experiment was designed by factorial in CRD with 3 replications of 3 experiments, 1) Determination of antibiotics for sterilization 2) Examination of medium and light conditions for plant regeneration and 3) Effect of plant growth regulators on plant regeneration. The results showed that 1) MS medium with 10 mgL^-1 meropenem gave the survival explant and inhibited bacteria in explant. 2) Liquid medium gave the survival explants higher than solid medium at 78 and 67%, respectively and dark condition also gave the survival explant higher than light condition at 78 and 11%, respectively. 3) In the culture on medium that added only auxin or cytokinin any regenerated. However, in the medium that added auxin and cytokinin (0.1 mgL^-1NAA and 1.0 mgL^-1BA or TDZ) with activated charcoal gave the survival and induced to calli. In these experiments could be used and adapted in Molineria latifolia (Drayand. Ex W.T.Aiton) Herb ex. Kurz and Arecacae.

Downloads

Download data is not yet available.

References

กานต์ธิดา บุญลอย จารุวัตร จันทร์ประดิษฐ์ และศุภชัย นิติพันธ์.(2559). อิทธิพลของสารละลายโคลชิซีนต่อการเพิ่มจำนวน โครโมโซมของมะพร้าวนกคุ่ม (Molineria sp.). วารสารมหาวิทยาลัยทักษิณ ปีที่ 9 ฉบับที่ 2 น. 81-88.

กองประชาสัมพันธ์ มหาวิทยาลัยเทคโนโลยีราชมงคลธัญบุรี. วิจัยฤทธิ์สารสกัดว่านสากเหล็กต่อการ ต้านอนุมูลอิสระ.มหาวิทยาลัยเทคโนโลยีราชมงคลธัญบุรี, เวปไซต์ประชาสัมพันธ์ ค้นเมื่อ 20 มิถุนายน 2559. https://www.rmutt.ac.th/content/32079.

ฉัตรชฎา กันทะเรียน. (2559). การผลิตสารออกฤทธิ์ทางชีวภาพจากเชื้อแบคทีเรียได้จากระบบเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อพืช. วิทยานิพนธ์ปริญญาวิทยาศาสตรมหาบัณฑิต. บัณฑิตวิทยาลัยโจ้

เตือนจิตร เพ็ชรรุณ อรรัตน์ วงศ์ศรี สุวิมล กลศึก กษิดิศ ดิษฐบรรจง ภุมรินทร์ วณิชชนานันท์ ชยานิจ ดิษฐบรรจง สุรกิตติ ศรีกุล หทัยรัตน์ อุไรรงค์ และ นัยเนตร เจริญสันติ ทานากะ. (2558). กิจกรรมงานวิจัยการวิจัยเทคโนโลยีชีวภาพเพื่อการปรับปรุงพันธุ์ปาล์มน้ำมัน. กรมวิชาการ เกษตร หน้า 44 – 70.

รชพรรณ ฆารพันธ์. (2554). สมุนไพรความงาม: แนวทางการพัฒนาการใช้สมุนไพรพื้นบ้านของชาวผู้ไทยจังหวัดกาฬสินธุ์. ปริญญาศิลปศาสตรมหาบัณฑิต สาขาวิชาวัฒนธรรมศาสตร์ มหาวิทยาลัย มหาสารคาม. (วิทยานิพนธ์)

วราภรณ์ หีดฉิม สมปอง เตชะโต และสุรีรัตน์ เย็นช้อน. (2563). ผลของออกซินต่อการชักนำให้เกิดโซมาติคเอ็มบริโอและการพัฒนาเป็นพืชต้นใหม่ของปาล์มน้ำมันลูกผสมพันธุ์ทรัพย์ ม.อ. วารสารแก่นเกษตร, 48(1), 67–78.

อนันต์ วงเจริญ. (2557). บทบาทของเชื้อราเอนโดไฟต์ต่อการควบคุมโรคพืช. วารสารแก่นเกษตร, 42(4), 623-634

Der J. O., K. W. Chan, N. Sarega, N. B. Alitheen, H. Ithnin, and M. Ismail. (2016). Bioprospecting the Curculigoside Cinnamic acid-rich fraction from Molineria latifolia rhizome as a potential antioxidant therapeutic agent. Molecules 26, 682; doi:10.3390/21060682

PALEE, J. (2018). In vitro Shoot Cultures of Tupistra Albiflora K. Larsen. Walailak Journal of Science and Technology (WJST), 17(5), 405–411.

Kalina D., Jasmina P. S., Inn A., Kalina A. and Marina S.,(2023). Plant Growth Regulators and Activated Charcoal Selectively Affect Phenylethanoid And Flavone Glycoside Accumulation in Sideritis scardica Griseb. Tissue Culture Plants 2023, 12(13), 2541; https://doi.org/10.3390/plants12132541

Pranha T., Pooja J., Namita M., Rupan K., and Piyush M. (2024). Bioproptecting of fendophytic fungi from medicinal plant Anisomeles indica L. for their diverse role in agriculture and industrial sectors. Scientific Reports 2024 14:588

Supawadee T., T. Sompong. (2010). Effect of culture medium and genotype on germination of hybrid oil palm zygotic embryos. Science Asia 36; 26-32.

Thuruthiyil D. T., (2008) The role of activated charcoal in Plant tissue culture. Biotechnology Advances,Vol. 26, Issue 6, 2008, P 618-631.

Yoichi O. and Masahiro M. (2007). Meropenem and moxalactam: Novel β-lactam antibiotics for efficient Agrobacterium-mediated transformation. Plant Science, Volume 172, Issue 3, P. 564-572.

Zari H. T., N. J. Sidik, T. A. Hashim, and N. Ahmet. (2014). The effects of different concentration of NAA on oil palm (Elaeis guineensis Jacq.) embryoid cultures and phytosterols production. Australian Journal of crop science 8(6); 840-847.