ผลของอาหารเพาะเลี้ยง benzylaminopurine และระบบไบโอรีแอคเตอร์ จมชั่วคราวต่อการเจริญเติบโตของเบญจมาศในสภาพปลอดเชื้อ
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
งานวิจัยนี้ศึกษาปัจจัยต่างๆ ที่มีผลต่อการเจริญเติบโตของเบญจมาศพันธุ์ WG ในสภาพปลอดเชื้อ โดยนำชิ้นส่วนข้อเดี่ยวมาเพาะเลี้ยงบนอาหารกึ่งแข็งสูตร ¼ MS, ½ MS และ MS ที่เติมไซโตไคนิน 6-benzylaminopurine (BAP) 0, 0.25, 0.50 และ 1.00 มิลลิกรัมต่อลิตร เมื่อเพาะเลี้ยงเป็นระยะเวลา 8 สัปดาห์ พบว่าทุกกรรมวิธีเกิดยอดใหม่เท่ากัน คือ 1 ยอดต่อชิ้นส่วน และมีจำนวนข้อต่อยอดไม่แตกต่างกันทางสถิติ โดยอาหารกึ่งแข็งสูตร ½ MS ที่ปราศจากสารควบคุมการเจริญเติบโตทำให้ยอดมีความสูง จำนวนข้อต่อยอด และน้ำหนักสดของยอดมากที่สุด คือ 7.36 เซนติเมตร 7.40 ข้อต่อยอด และ 333.07 มิลลิกรัม ตามลำดับ นอกจากนี้ได้เปรียบเทียบผลของระบบเพาะเลี้ยง โดยนำชิ้นส่วนข้อเดี่ยวมาเพาะเลี้ยงด้วยอาหารสูตร ½ MS ที่ปราศจากสารควบคุมการเจริญเติบโต และใช้ระบบไบโอรีแอคเตอร์จมชั่วคราวแบบขวดแฝดที่ให้อาหารเหลวทุกๆ 24 ชั่วโมง ครั้งละ 4, 5 และ 6 นาที เปรียบเทียบกับการเพาะเลี้ยงบนอาหารกึ่งแข็ง เมื่อเพาะเลี้ยงเป็นระยะเวลา 8 สัปดาห์ ผลปรากฏว่า การให้อาหารเหลวทุกๆ 24 ชั่วโมง ครั้งละ 5 นาที มีความเหมาะสมในการเพาะเลี้ยง โดยทำให้มีจำนวนยอดต่อชิ้นส่วน จำนวนข้อต่อยอด น้ำหนักสดของยอดสูงที่สุด คือ 1.40 ยอดต่อชิ้นส่วน 10.10 ข้อต่อยอด และ 841.67 มิลลิกรัม ตามลำดับ ซึ่งเพิ่มขึ้น 1.40, 1.26 และ 2.53 เท่า ตามลำดับ เมื่อเปรียบเทียบกับการเพาะเลี้ยงด้วยอาหารกึ่งแข็ง อย่างไรก็ตามพบการฉ่ำน้ำ (50%) เป็นลักษณะที่ผิดปกติเฉพาะการให้อาหารเหลวทุกๆ 24 ชั่วโมง ครั้งละ 6 นาที
Article Details
ต้นฉบับที่ได้รับการตีพิมพ์ถือเป็นสิทธิของเจ้าของต้นฉบับและของวารสารวิชาการ มทร.สุวรรณภูมิ เนื้อหาบทความในวารสารเป็นแนวคิดของผู้แต่ง มิใช่เป็นความคิดเห็นของคณะกรรมการการจัดทำวารสาร และมิใช่ความรับผิดชอบของมหาวิทยาลัยเทคโนโลยีราชมงคลสุวรรณภูมิ
เอกสารอ้างอิง
Albarrán, J., Bertrand, B., Lartaud, M., & Etienne, H. (2005). Cycle characteristics in a temporary immersion bioreactor affect regeneration, morphology, water and mineral status of coffee (Coffea arabica) somatic embryos. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 81(1), 27-36.
Escalona, M., Lorenzo, J. C., González, B., Daquinta, M., González, J. L., Desjardins, Y., & Borroto, C. G. (1999). Pineapple (Ananas comosus L. Merr) micropropagation in temporary immersion systems. Plant Cell Reports, 18(9), 743-748.
Georgieva, L., Tsvetkov, I., Georgieva, M., & Kondakova, V. (2016). New protocol for in vitro propagation of berry plants by TIS bioreactor. Bulgarian Journal of Agricultural Science, 22(5), 745-751.
Gutiérrez, L. G., López-Franco, R., & Morales-Pinzón, T. (2016). Micropropagation of Guadua angustifolia Kunth (Poaceae) using a temporary immersion system RITA®. African Journal of Biotechnology, 15(28), 1503-1510.
Hahn, E. J., Lee, Y. B., & Ahn, C. H. (1996). A new method on mass-production of micropropagated chrysanthemum plants using microponic system in plant factory. Acta Horticulturae, 440, 527-532.
Iamfaeng, S. (1989). Chrysanthemum breeding by plant tissue culture method (Master's thesis). Kasetsart University, Bangkok. (in Thai)
Imtiaz, M., Khattak, A. M., Khan, M. A., Jalal, F., Hussain, S., Said, F., & Bo, H. (2019). Rapid in-vitro propagation of Chrysanthemum morifolium through shoot bud explants. Pakistan Journal of Botany, 51(3), 1093-1098.
Jiménez, E., Pérez, N., De Feria, M., Barbón, R., Capote, A., Chávez, M., & Pérez, J. C. (1999). Improved production of potato microtubers using a temporary immersion system. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 59(1), 19-23.
Koarapatchaikol, K., & Rugtham, L. (2015). In vitro clonal propagation of ivory [Wrightia arborea (Dennst.) Mabb.]. Thai Journal of Science and Technology, 23(5)(Suppl.), 833-845. (in Thai)
Lindiro, C., Kahia, J., Asiimwe, T., Mushimiyimana, I., Waweru, B., Kouassi, M., & Sallah, Y. P. (2013). In vitro regeneration of pyrethrum (Chrysanthemum cinerariaefolium) plantlets from nodal explants of in vitro raised plantlets. International Journal of Application or Innovation in Engineering & Management, 2(7), 207-213.
Renau-Morata, B., Nebauer, S. G., Arrillaga, I., & Segura, J. (2005). Assessments of somaclonal variation in micropropagated shoots of Cedrus: consequences of axillary bud breaking. Tree Genetics & Genomes, 1(1), 3-10.
Ruta, C., De Mastro, G., Ancona, S., Tagarelli, A., De Cillis, F., Benelli, C., & Lambardi, M. (2020). Large-scale plant production of Lycium barbarum L. by liquid culture in temporary immersion system and possible application to the synthesis of bioactive substance. Plants, 9(7), 844.
Saosinad, W, (2013). Appropriate medium for Dendranthemum grandiflora ‘MUM 13’ micropropagation in temporary immersion bioreactor compared to solid medium (Bachelor’s thesis). Maejo University, Chiang Mai. (in Thai)
Sumyo, S., & Adthalungrong, A. (2020). Chrysanthemum production situation. Retrieved 5 November 2020, from http://www.doa.go.th/hort/wp-content (in Thai)
Teisson, C., & Alvard, D. (1995). A new concept of plant in vitro cultivation liquid medium: temporary immersion. In Current Issues in Plant Molecular and Cellular Biology (pp. 105-110). Dordrecht: Springer.
Waseem, K., Jilani, M. S., Khan, M. S., Kiran, M., & Khan, G. (2011). Efficient in vitro regeneration of chrysanthemum (Chrysanthemum morifolium L.) plantlets from nodal segments. African Journal of Biotechnology, 10(8), 1477-1484.
Wu, R. Z., Chakrabarty, D., Hahn, E. J., & Paek, K. Y. (2007). Micropropagation of an endangered jewel orchid (Anoectochilus formosanus) using bioreactor system. Horticulture Environment and Biotechnology, 48(6), 376-380.
Yesmin, S., Hashem, A., Das, K. C., Hasan, M. M., & Islam, M. S. (2014). Efficient in vitro regeneration of chrysanthemum (Chrysanthemum morifolium Ramat.) through nodal explant culture. Nuclear Science and Applications, 23(1&2), 47-50.
