ผลของแหล่งคาร์บอนและแหล่งไนโตรเจนต่อการผลิตสารต้านการเจริญของเชื้อแบคทีเรียก่อโรคจากแอคติโนมัยสีทที่คัดแยกได้
Main Article Content
บทคัดย่อ
แอคติโนมัยสีทเป็นแบคทีเรียแกรมบวก มีสมบัติโดดเด่นด้านความสามารถในการผลิตสารออกฤทธิ์ทางชีวภาพโดยเฉพาะสารต้านการเจริญแบคทีเรีย งานวิจัยนี้มีวัตถุประสงค์เพื่อแยก คัดเลือก และศึกษาผลของแหล่งคาร์บอนและแหล่งไนโตรเจนต่อการผลิตสารต้านการเจริญของเชื้อแบคทีเรียก่อโรคจากแอคติโนมัยสีทที่คัดแยกได้ การศึกษาครั้งนี้เก็บตัวอย่างจากพื้นผิวโบสถ์และเจดีย์ วัดใหญ่ชัยมงคล จังหวัดพระนครศรีอยุธยา นำมาคัดแยกเชื้อแอคติโนมัยสีทด้วยอาหาร starch casein agar และทำการทดสอบกิจกรรมการต้านเชื้อแบคทีเรียก่อโรค 5 สายพันธุ์ ได้แก่ Bacillus cereus TISTR 2372, Escherichia coli TISTR 527, Klebsiella pneumoniae TISTR 1867, Pseudomonas aeruginosa TISTR 2370 และ Staphylococcus aureus TISTR 746 ด้วยวิธี disc diffusion ผลการศึกษาพบว่า ไอโซเลท 1IJ04 มีกิจกรรมในการยับยั้งการเจริญของเชื้อ B. cereus TISTR 2372 สูงที่สุดโดยมีเส้นผ่านศูนย์กลางของการยับยั้งเท่ากับ 17 มิลลิเมตร และแหล่งคาร์บอนและแหล่งไนโตรเจนที่เหมาะสมกับการเพาะเลี้ยงไอโซเลท 1IJ04 คือ แป้งมันสำปะหลัง และโมโนโซเดียมกลูตาเมต การศึกษาครั้งนี้เป็นพื้นฐานในการศึกษาความหลากหลายของเชื้อกลุ่มแอคติโนมัยสีทที่สามารถผลิตสารต้านเชื้อแบคทีเรียก่อโรคซึ่งเป็นประโยชน์ต่อการพัฒนายาปฏิชีวนะได้ในลำดับต่อไป
Article Details

อนุญาตภายใต้เงื่อนไข Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
ต้นฉบับที่ได้รับการตีพิมพ์ถือเป็นสิทธิของเจ้าของต้นฉบับและของวารสารวิชาการ มทร.สุวรรณภูมิ เนื้อหาบทความในวารสารเป็นแนวคิดของผู้แต่ง มิใช่เป็นความคิดเห็นของคณะกรรมการการจัดทำวารสาร และมิใช่ความรับผิดชอบของมหาวิทยาลัยเทคโนโลยีราชมงคลสุวรรณภูมิ
เอกสารอ้างอิง
Abdulla, H., Eric, M., Magdi, B., & Ahmed, D. (2008). Characterization of Actinomycetes isolation from ancient stone and their potential for deterioration. Polish Journal of Microbiology, 57(3), 213-220.
Abraham, J., & Chauhan, R. (2018). Profiling of red pigment produced by Streptomyces sp. JAR6 and its bioactivity. 3 Biotech, 8(1), 22.
Al Farraj, D. A., Rakesh, V, B., Csaba, V. B., Mohamed, S. E., Alokda, A. M., & Mahmoud, A. H. (2019). Antibiotics production in optimized culture condition using low-cost substrates from Streptomyces sp. AS4 isolated from mangrove soil sediment. Science Journal of King Saud University, 32, 1528-1535.
Al Farraj, D. A., Varghese, R., Vagvolgyi, C., Elshikh, M. S., Alokda, A. M., & Mohmoud, A. H. (2020). Antibiotic production in optimized culture condition using low cost substrates from Streptomyces sp. AS4 isolated from mangrove soil sediment. Journal of King Saud University-Science, 32(2), (1528-1535).
Azimi, S., Baserisalehi, M., & Bahador, N. (2014). Evaluation of antimicrobial pigment produced by Streptomyces coeruleorubidus. Nature Environment and Pollution Technology, 13(3), 641-644.
Azimi, S., Salehi, M. B., & Bahador, N. (2016). Isolation and identification of Streptomyces ramulosus from soil and determination of antimicrobial property of its pigment. Modern Medical Laboratory Journal, 1(1), 36-41.
Bayram, S. (2021). Production, purification, and characterization of Streptomyces sp. strain MPPS2 extracellular pyomelanin pigment. Archives of Microbiology, 203, 4419-4426.
Budhathoki, S., & Shrestha, A. (2020). Screening of Actinomycetes from soil for antibacterial activity. Nepal Journal of Biotechnology, 8(3),102-110.
Cheeptham, N., Sadoway, T., Rule, D., Watson, K., Moote, P., Soliman, L. C., Azad, N., Donkor, K. K., & Horne, D. (2013). Cure from the cave: volcanic cave actinomycetes and their potential in drug discovery. International Journal of Speleology, 42(1), 35-47.
El-Naggar, N. A., & El-Ewasy, S. (2017). Bioproduction, characterization, anticancer and antioxidant activities of extracellular melanin pigment produced by newly isolated microbial cell factories Streptomyces glaucescens NEAE-H. Scientific Reports, 7, 42129.
Indrawattana, N., & Vanaporn, M. (2015). Nosocomial infection. Journal of Medicine and Health Sciences, 22(1), 81-92. (in Thai)
Jeffrey, L. H. (2008). Isolation, characterization and identification of actinomyctes from agriculture soil at Semongok, Sarawak. African Journal of Biotechnology, 7(20), 3697-3702.
Jiang, Z., Guo, L., Chen, C., Liu, S., Zhang, L., Dai, S., He, Q., You, X., Hu, X., Tuo, L., Jiang, W., & Sun, C. (2015). Xiakemycin A, a novel pyranonaphthoquinone antibiotic, produced by the Streptomyces sp. CC8-201 from the
soil of a karst cave. The Journal of Antibiotics, 68, 771-994.
Kheiralla, Z. H., Hewedy, M. A., Mohammed, H. R., & Darwesh, O. M. (2016). Isolation of pigment producing Actinomycetes from rhizosphere soil and application It in textiles dyeing. Research Journal of Pharmaceutical, Biological and Chemical Sciences, 7(5), 2128- 2136.
Madigan, M., & Martinko, J. (2006). Brock biology of microorganisms (14th ed.). New York: Pearson Global Edition.
Manasa, M., Poornima, G., Abhipsa, V., Rekha, C., PrashithKekuda, T. R., Onkarappa, R., & Mukunda, S. (2012).
Antimicrobial and antioxidant potential of Streptomyces sp RAMPP-065 isolated from Kudremukh soil, Karnataka, India. Science, Technology and Arts Research Journal, 1(3), 39-44.
Maruekarajtinplaeng, S. (2017). Isolation and study in some character of actinobacteria from archaeological site in Kamphaeng Phet Historical Park with affect biodeterioration. Srinakharinwirot Science Journal, 33(2), 51-69. (in Thai)
Niyomvong, N. (2021). Broad-spectrum antimicrobial compound from Streptomyces coerulescens NN91. Journal of Agriculture, 37(3), 305-351. (in Thai)
Nakaew, N., Pathom-aree, W., & Lumyong, S. (2009). Genetic diversity of rare Actinomycetes from Thai cave and their possible use as new bioactive compounds. Actinomycetologica, 23(2), 21-26.
Rajput, Y., Biswas, J., & Rai, V. (2012). Potentiality test in antimicrobial activity and antibiotic sensibility of subterranean Streptomyces strains isolates from Kotumsar cave of India. International journal of Biological Chemistry, 6(2), 53-60.
Ray, B. (2003). Fundamental food microbiology (3rd ed.). Boca Raton: CRC Press.
Saba, A., Salehi, M. B., & Nima, B. (2016). Isolation and identification of Streptomyces ramulosus from soil and determination of antimicrobial property of its pigment. Modern Medical Laboratory Journal, 1(6), 36-41.
Thompson, C. J., Fink, D., & Nguyen, L. D. (2002). Principles of microbial alchemy: insights from the Streptomyces coelicolor genome sequence. Genome Biology, 3(7), reviews1020.1–reviews1020.4.
Watanadilok, R., Nareeboon, P., & Taweedes, S. (2015). Discovery of bioactive pigments from marine microorganisms (research report). Pathumthani: Faculty of Science, Rangsit University. (in Thai)
Wang, L., Lei, J., Xiang, W., Jiang, S., & Yang, Z. (2009). Identification and characterization of purple pigment-producing actinomycetes strain. China Journal Apply Environment Biotechnology, 15(1), 139-142.
Yucel, S., & Yamac, M. (2010). Selection of Streptomyces isolates from Turkish Karstic cave against antibiotic resistant microorganisms. Pak Journal Pharmaceutical Science, 23(1), 1-6.