การแยกและคัดเลือกแลคติกแอซิดแบคทีเรียที่มีศักยภาพเป็นโปรไบโอติก จากผลิตภัณฑ์ผักดองพื้นบ้านของไทย

Main Article Content

สุรัตน์ วังพิกุล
ปริยาภรณ์ อิศรานุวัฒน์

บทคัดย่อ

          โปรไบโอติกเป็นจุลินทรีย์ที่มีชีวิตที่สามารถก่อประโยชน์ต่อร่างกายของสิ่งมีชีวิตที่อาศัยอยู่โดยการปรับสมดุลของจุลินทรีย์ในระบบลำไส้ งานวิจัยนี้จึงมีวัตถุประสงค์เพื่อแยกและคัดเลือกเชื้อแลคติกแอซิดแบคทีเรียที่มีศักยภาพเป็นโปรไบโอติก
จากผักดองพื้นบ้านของไทย ผลการศึกษาสามารถคัดแยกเชื้อแบคทีเรียแกรมบวกได้ทั้งหมด 30 ไอโซเลท มี 20 ไอโซเลท
ที่ไม่สร้างคาตาเลส เมื่อนำเชื้อที่คัดแยกได้มาศึกษาคุณสมบัติการเป็นโปรไบโอติก พบว่ามี 9 ไอโซเลท (SF1, SF2, SF3, GF1, GF2, MF3, MF4, MF5 และ MF6) ที่สามารถทนต่อสภาวะกรดและเกลือน้ำดีในระบบทางเดินอาหารได้ และมี 7 ไอโซเลทที่สามารถย่อยเกลือน้ำดีปฐมภูมิ (sodium glycolate) และเกลือน้ำดีทุติยภูมิ (sodium taurodeoxycholate) ได้ จึงนำเชื้อทั้ง 7 ไอโซเลทไปทดสอบความสามารถในการยับยั้งเชื้อก่อโรค พบว่าทั้ง 7 ไอโซเลท สามารถยับยั้งการเจริญของเชื้อ Escherichia coli และ Bacillus cereus ได้ แต่ไม่มีไอโซเลทใดที่สามารถยับยั้งการเจริญของเชื้อ Staphylococcus aureus ได้ ผลการทดสอบความสามารถในการยึดเกาะกับเยื่อบุผนังลำไส้ (มิวซิน) พบว่า มีเพียง 4 ไอโซเลท (SF1, SF2, GF1 และ GF2) ที่สามารถยึดเกาะกับมิวซินได้ ผลการจัดจำแนกสายพันธุ์ของแบคทีเรียที่คัดแยกได้ พบว่า ไอโซเลท SF1 และ SF2 ที่แยกได้จากต้นหอมดอง คือ Lactobacillus plantarum HL-12 (100% identity) ไอโซเลท GF1 และ GF2 ที่แยกได้จากผักกาดเขียวปลีดอง คือ L. fermentum NBRC 15885 (100% identity) โดยเชื้อแลคติกแอซิดแบคทีเรียเหล่านี้มีศักยภาพเป็นโปรไบโอติก สามารถนำไปพัฒนาเป็นหัวเชื้อสำหรับการผลิตอาหารหมักพื้นบ้านเพื่อเพิ่มมูลค่าผลิตภัณฑ์ให้กับชุมชนได้

Article Details

How to Cite
วังพิกุล ส., & อิศรานุวัฒน์ ป. (2021). การแยกและคัดเลือกแลคติกแอซิดแบคทีเรียที่มีศักยภาพเป็นโปรไบโอติก จากผลิตภัณฑ์ผักดองพื้นบ้านของไทย. วารสารวิชาการ มทร.สุวรรณภูมิ, 9(2), 150–163. สืบค้น จาก https://li01.tci-thaijo.org/index.php/rmutsb-sci/article/view/250737
บท
บทความวิจัย

References

Brennan, M., Wanismail, B., & Ray, B. (1983). Prevalence of viable Lactobacillus acidophilus in dried commercial products. Journal of Food Protection, 46, 887-892.

De Man, L. C., Rogosa, M., & Sharpe, M. E. (1960). A medium for the cultivation of lactobacilli. Journal of Applied Bacteriology, 23(1), 130-135.

De Vuyst, L., & Vandamme, E. J. (1994). Antimicrobial potential of lactic acid bacteria. In Bacteriocins of lactic acid bacteria : Microbiology, genetics and applications (pp. 91-142). London: Blackie Academic and Professional.

Di Cagno, R., Surico, R. F., Siragusa, S., De Angelis, M., Paradiso, A., Minervini, F., De Gara, L., & Gobbetti, M. (2008). Selection and use of autochthonous mixed starter for lactic acid fermentation of carrots, French beans or marrows. International Journal of Food Microbiology, 127(3), 220-228.

du Toit, M., Franz, C. M. A. P., Dicks, L. M. T., Schillinger, U., Haberer, P., Warlise, B., Ahrens, F., & Holzafel, W. H. (1998). Characterization and selection of probiotic lactobacilli for a preliminary minipig feeding trial and their effect on serum cholesterol levels, faeces pH and faeces moisture content. International Journal of Food Microbiology, 40, 93-104.

Erkkila, S., & Petaja. (2000). Screening of commercial meat starter culture at low pH in the presence of bile salt for potential probiotic use. Journal of Meat Science, 55, 297-300.

FAO/WHO. (2002). Guidelines for the evaluation of probiotics in food report of a joint FAO/WHO working group on drafting guidelines for the evaluation of probiotics in food. London Ontario, Canada: FAO/WHO.

Fuller, R. (1997). Probiotics 2: Applications and practical aspects. London: Chapman & Hall.

Guo, X. H., Kim, J. M., Nam, H. M., Park, S. Y., & Kim, J. M. (2010). Screening lactic acid bacteria from swine origins for multistrain probiotics based on in vitro functional properties. Anaerobe, 16(4), 321-326.

Itsaranuwat, P., Al-Haddad, K. S. H., & Robinson, R. K. (2003). The potential therapeutic benefits of consuming 'health-promoting' fermented dairy products: a brief update. International Journal of Dairy Technology, 56(4), 203-210.

Jacobsen, C. N., Nielsen, V. R., Hayford, A. E., Moller, P. L., Michaelsen, K. F., Paerregaard, A., Sandstrom, B., Tvede, M., & Jakobsen, M. (1999). Screening of probiotic activities of forty-seven strains of Lactobacillus spp. by in vitro techniques and evaluation of the colonization ability of five selected strains in humans. Applied and Environmental Microbiology, 65(11), 4949-4956.

Karasu, N., Şimşek, Ö., & Çon, A. H. (2010). Technological and probiotic characteristics of Lactobacillus plantarum strains isolated from traditionally produced fermented vegetables. Annals of Microbiology, 60, 227-234.

Kos, B., Suskovic J., Goreta, J., & Matosic, S. (2000). Effect of protexters on the viability of Lactobacillus acidophilus M92 in simulated gastrointestinal condition. Food Biotechnology, 38(2), 121-127.

Lee, J., Yun, H. U., Cho, K. W., Oh, H., Kim, S. H., Chun, T., Kim, B., & Whang, K. Y. (2011). Evaluation of probiotic characteristics of newly isolated Lactobacillus spp.: Immune modulation and longevity. International Journal of Food Microbiology, 148(2), 80-86.

Mathara, J. M., Schillinger, U., Guigas, C., Franz, C., Kutima, P. M., Mbugua, S. K., Shin, H-K, & Holzapfel, W. H. (2008). Functional characteristics of Lactobacillus spp. from traditional Maasai fermented milk products in Kenya. International Journal of Food Microbiology, 126, 57-64.

Mishra, V., & Prasad, D. N. (2005). Application of in vitro methods for selection of Lactobacillus casei strains as potential probiotics. International Journal of Food Microbiology, 103, 109-115.

Otterby, D. E., Johnson, D. G., Foley, J. A., Tomsche, D.S., Lundquist, R. G., & Hanson, P. J. (1980). Fermented or chemically-treated colostrum and nonsalable milk in feeding programs for calves. Journal Dairy Science, 63, 951-958.

Pennacchia, C., Ercolini, D., Blaiotta, G., Pepe, O., Mauriello, G., & Villani, F. (2004). Selection of Lactobacillus strains from fermented sausages for their potential use as probiotics. Meat Science, 67(2), 309-317.

Pumriw, S., Luang‐In, V., & Samappito, W. (2021). Screening of probiotic lactic acid bacteria isolated from fermented Pak‐Sian for use as a starter culture. Current Microbiology, 78, 2695-2707.

Ratanaburee, A., Kantachote, D., Charernjiratrakul, W., & Sukhoom, A. (2013). Selection of γ-aminobutyric acid-producing lactic acid bacteria and their potential as probiotics for use as starter cultures in Thai fermented sausages (Nham). International Journal of Food Science and Technology, 48(7), 1371-1382.

Rattanachaikunsopon, P., & Phumkhachorn, P. (2000). A bacteriocin produced by Lactobacillus lactis subsp. lactis isolated from Thai fermented foods, Science Asia, 26, 195-200.

Rial, D. R. (2000). The role of probiotic cultures in the control of gastrointestinal health. American Society for Nutritional Sciences, 14(6), 396-402.

Ruttanasutja, P., & Thongdee, U. (2020). The isolation of cellulase producing bacteria from paddy field soil samples in Phra Nakhon Si Ayutthaya province. RMUTSB Academic Journal, 8(2), 165-175. (in Thai)

Simpson, G. G, Dijkwel, P. P., Quesada, V., Henderson, I., & Dean, C. (2003). FY is an RNA 3' end-processing factor that interacts with FCA to control the Arabidopsis floral transition. Cell, 113(6), 777-787.

Tallon, R., Arias, S., Bressollier, P., & Urdaci, M. C. (2007). Strain- and matrix-dependent adhesion of Lactobacillus plantarum is mediated by proteinaceous bacterial compounds. Journal of Applied Microbiology, 102, 442-451.

Topisirovic, L., Kojic, M., Fira, D., Golic, N., Strahinic, I., & Lozo, J. (2006). Potential of lactic acid bacteria isolated from specific natural niches in food production and preservation. International Journal of Food Microbiology, 112(3), 230-235.

Uhlman, L., Schillinger, U., Rupnow, J. R., & Holzapfel, W. H. (1992). Identification and charaterisation of two bacteriocin-producing strain of Lactococcus lactis isolate from vegetables. International Journal of Food Microbiology, 16, 141-151.

Vinderola, C. G., & Reinheimer, J. A. (2003). Lactic acid starter and probiotic bacteria: a comparative “in vitro” study of probiotic characteristics and biological barrier resistance. Food Research International, 36, 895-904.

Vinderola, G., Capellini, B., Villarreal, F., Suarez, V., Quiberoni, A., & Reinheimer, J. (2008). Usefulness of a set of simple in vitro tests for the screening and identification of probiotic candidate strains for dairy use. LWT - Food Science and Technology, 41, 1678-1688.

Yasanga, N. (2008). Isolation and screening of bacteriocin-producing lactic acid bacteria from fermented vegetable and fruit products (Master's thesis). Chiangmai University, Chiangmai. (in Thai)