การศึกษาประสิทธิภาพของสารกันเสียและโซเดียมไฮโปคลอไรท์ ในการฆ่าเชื้อจุลินทรีย์ในอาหารสำหรับเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อไม้น้ำบูเซปฟาแลนดร้า
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
การขยายพันธุ์พืชด้วยการเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อนั้นต้องมีการลงทุนสูงเนื่องจากการที่ต้องใช้อุปกรณ์ที่มีราคาแพง โดยเฉพาะหม้อนึ่งความดันไอน้ำ ดังนั้นงานวิจัยนี้จึงมีวัตถุประสงค์เพื่อศึกษาประสิทธิภาพของสารกันเสียและโซเดียมไฮโปคลอไรท์ในการฆ่าเชื้อในอาหารเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อ โดยใช้สารกันเสียความเข้มข้น 0.25-1.25 เปอร์เซ็นต์โดยปริมาตร (v/v) และสารโซเดียมไฮโปคลอไรท์ความเข้มข้นสุดท้าย 0.10-0.50 เปอร์เซ็นต์โดยปริมาตร (v/v) ของผลิตภัณฑ์การค้า แล้วนำอาหารดังกล่าวไปเพาะเลี้ยงไม้น้ำบูเซปฟาแลนดร้าที่ปลอดเชื้อโดยไม่มีการนึ่งฆ่าเชื้ออาหาร พบว่าในสูตรอาหารที่ใส่สารกันเสียและโซเดียมไฮโป-คลอไรท์สามารถเพิ่มจำนวนยอดได้ในทุกความเข้มข้นและไม่มีความแตกต่างกันทางสถิติ โดยให้จำนวนยอดเฉลี่ย 6.0±0.70-6.8±0.70 ยอด แต่มีความแตกต่างทางสถิติที่ระดับความเชื่อมั่นร้อยละ 95 (P>0.05) กับสูตรอาหารที่นึ่งฆ่าเชื้อที่ให้จำนวนยอดเฉลี่ย 4.0±0.07-4.2±0.44 ยอด โดยอาหารที่ใส่สารกันเสีย 0.25-0.75 เปอร์เซ็นต์โดยปริมาตร (v/v) พบการปนเปื้อนของเชื้อจุลินทรีย์ ในขณะที่อาหารที่เติมโซเดียมไฮโปคลอไรท์ทุกความเข้มข้นไม่พบการปนเปื้อนของเชื้อ ผลการยืนยันประสิทธิภาพการฆ่าเชื้อของสารกันเสียและโซเดียมไฮโปคลอไรท์ที่ใช้ในการเตรียมอาหารเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อบูเซปฟาแลนดร้า โดยการนำอาหารเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อที่ไม่พบการปนเปื้อนจุลินทรีย์มาใส่บนอาหารแข็งสูตร Luria-Bertani (LB) พบว่า อาหารเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อที่เตรียมโดยใช้สารกันเสียมีการเจริญของจุลินทรีย์ ขณะที่อาหารเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อที่เตรียมโดยใช้โซเดียมไฮโปคลอไรท์ไม่มีการเจริญของเชื้อจุลินทรีย์ ดังนั้นสรุปได้ว่าสารกันเสียมีฤทธิ์ยับยั้งการเจริญของจุลินทรีย์ในขณะที่โซเดียมไฮโปคลอไรด์มีฤทธิ์ฆ่าเชื้อจุลินทรีย์ได้
Article Details
อนุญาตภายใต้เงื่อนไข Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
ต้นฉบับที่ได้รับการตีพิมพ์ถือเป็นสิทธิของเจ้าของต้นฉบับและของวารสารวิชาการ มทร.สุวรรณภูมิ เนื้อหาบทความในวารสารเป็นแนวคิดของผู้แต่ง มิใช่เป็นความคิดเห็นของคณะกรรมการการจัดทำวารสาร และมิใช่ความรับผิดชอบของมหาวิทยาลัยเทคโนโลยีราชมงคลสุวรรณภูมิ
เอกสารอ้างอิง
Brondani, G. E., Silva de Oliveira, L., Bergonci, T., Ebling Brondani, A., Macedo França, F. A., Lopes da Silva, A. L., & Natal Gonçalves, A. (2013). Chemical sterilization of culture medium: a low cost alternative to in vitro establishment of plants. Scientia Forestalis, 41(98), 257-264.
Cardoso, J. C., & Imthurn, A. C. P. (2018). Easy and efficient chemical sterilization of the culture medium for in vitro growth of gerbera using chlorine dioxide (ClO2). Ornamental Horticulture, 24(3), 218-224.
Chotikadachanarong, K. (2014). Influence of commercial bleach on sterilization of Persian Violet (Exacum affine Balf. F. ex Regel) tissue. Rajabhat Journal of Science, Humanities & Social Science, 14(2), 34-43. (in Thai)
Compton, M., & Koch, J. M. (2001). Influence of plant preservative mixture (PPM)TM on adventitious organogenesis in melon, petunia, and tobacco. In Vitro Cellular and Developmental Biology Plant, 37, 259-261.
Druart, P., & De Wulf, O. (1993). Activated charcoal catalyzes sucrose hydrolysis during autoclaving. Plant Cell Tissue Organ Culture, 32, 97-99.
Laohavisuti, N., Ruangdej, U., Seesanong, S., & Wangwibulkit, S. (2018). Effect of disinfectants and plant growth regulator in aquatic plant Bucephalandra sp. micropropagation. King Mongkut's Agricultural Journal, 35(2), 95-103. (in Thai)
Murashige, T., & Skoog, F. (1962). A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures. Physiology Planta, 15, 473-497.
Nuchnuanrat, P., & Jitsatta, N. (2021). Evaluation of fungicide carbendazim resistance in Colletotrichum gloeosporioidescausing anthracnose disease of mango cv. Aokrong in Chanthaburi province. RMUTSB Academic Journal, 9(2), 164-173. (in Thai)
Nugraha, M. F. I., Putra, T. A., Yunita, R., Enggarini, W., Erlinawati, I., Sahroni, D., Subamia, I. W., Ardi, I., & Cahyadi, A. (2022). The genetic diversity of genus Bucephalandra traded in the aquatic biota markets in Jakarta and the surrounding area based on RbCl markers. Acta Horticulturae, 1334, 389-396.
Redei, G. P. (1973). Effects of degradation products of fructose on the glycolytic pathway. Z. Pflanzenphysiologie, 70, 97-106.
Robert, M. S., Chu, M. C., Mann, M. L., Young, H., Sullivan, J., & Fermanian, T. (1986). Stability of tissue culture medium pH as a function of autoclaving, time, and cultured plant material. Plant Cell Reports, 5(4), 292-294.
Romadanova, N. V., Tolegen, A. B., Kushnarenko, S. V., Zholdybayeva, E. V., & Bettoni, J. C. (2022). Effect of plant preservative mixtureTM on endophytic bacteria eradication from in vitro-grown apple shoots. Plants, 11, 2624.
Sookruksawong, S. (2022). Sterilization and low-cost tissue culture techniques of Dioscorea bulbifera. Science, Technology, and Social Sciences Procedia, 2022(4), rspg014. (in Thai)
Suaib, S., Arief, N., Sadimantara, G. R., Suliartini, N. W. S., Rakian, T. C., & Ardhi. (2018). In vitro seeds germination and plantlets growth of hot pepper (Capsicum frutescens L.) on non-autoclaved murashige and skoog basal medium. Asian Journal Plant Science, 17(4), 173-181.
Tiwari, A. K., Tripathi, S., Lal, M., & Mishra, S. (2012). Screening of some chemical disinfectants for media sterilization during in vitro micropropagation of sugarcane. Sugar Technology, 14(4), 364-369.
Wang, X. J., & Hsiao, K. C. (1995). Sugar degradation during autoclaving: Effects of duration and solution volume on breakdown of glucose. Physiologia Plantarum, 94(3), 415-418.
Wann, S. R., Veazey, R. L., & Kaphammer, J. (1997). Activated charcoal does not catalyze sucrose hydrolysis in tissue culture media during autoclaving. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 50(3), 221-224.
