น้ำหมักชีวภาพกระตุ้นการเจริญและเพิ่มความต้านทานโรคในกล้วยหอมทอง
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
บทคัดย่อ
การศึกษาการพัฒนาสูตรน้ำหมักชีวภาพ จำนวน 2 สูตร จากสารละลายหัวเชื้อเข้มข้นของกลุ่มจุลินทรีย์ที่มีประสิทธิภาพ (effective microorganism, EM) จำนวน 2 ชนิด (EM1 และ EM2) โดยสูตรน้ำหมักชีวภาพที่พัฒนาขึ้นใหม่นี้มีชื่อว่า BM-1 และ BM-2 โดย BM-1 แสดงค่า pH ที่เพิ่มขึ้นมากที่สุด (pH 6) เมื่อเทียบกับสูตรเดิม (EM1) ส่วน BM-2 มีค่า pH ใกล้เคียงกับสูตรเดิม (pH 3.6-4.8) ผลการตรวจสอบกลุ่มจุลินทรีย์ในน้ำหมักชีวภาพ สูตร BM-1 พบจุลินทรีย์ จำนวน 4 กลุ่ม ได้แก่ lactic acid bacteria, yeast, actinomycetes และ fermenting fungi โดยมีจำนวนจุลินทรีย์ในกลุ่มของ fungi มากที่สุด ส่วนในน้ำหมักสูตร BM-2 พบจุลินทรีย์จำนวน 5 กลุ่ม โดยมีจุลินทรีย์ จำนวน 4 กลุ่ม คล้ายกับ BM-1 และมีจุลินทรีย์ในกลุ่มของ photosynthetic bacteria เพิ่มขึ้นอีก 1 กลุ่ม ซึ่งเป็นกลุ่มที่มีจำนวนมากกว่าจุลินทรีย์ในกลุ่มอื่น ๆ เมื่อนำน้ำหมักไปทดสอบประสิทธิภาพกระตุ้นการเจริญของต้นกล้วยหอมทอง โดยเพาะต้นกล้วยสูงประมาณ 1.5 เมตร และให้น้ำหมัก BM-1 และ BM-2 ทางราก 1 ครั้ง/สัปดาห์ เป็นระยะเวลาติดต่อกัน 6 เดือน จากนั้นจึงนำไปทดสอบการต้านทานโรคของต้นกล้วยด้วยเทคนิคทางชีวเคมี พบว่าต้นกล้วยที่ได้รับน้ำหมักชีวภาพ BM-2 มีปริมาณของเอนไซม์เพอร์ออกไซด์ (peroxide, PO) และโพลีฟีนอลออกซิเดส (polyphenol oxidase, PPO) เพิ่มสูงขึ้นมากที่สุด (p £ 0.05) และเมื่อตรวจสอบผลการกระตุ้นการเจริญ พบว่าต้นกล้วยที่ได้รับน้ำหมักชีวภาพสูตร BM-2 มีความสูงเฉลี่ยมากที่สุด แต่ไม่มีความแตกต่างกันของเส้นผ่านศูนย์กลางกับขนาดลำต้นเมื่อเปรียบเทียบกับ BM-1
คำสำคัญ : กล้วยหอมทอง; น้ำหมักชีวภาพ; กลุ่มจุลินทรีย์ที่มีประสิทธิภาพ; กล้วย; ความต้านทานโรค
Article Details
บทความที่ได้รับการตีพิมพ์เป็นลิขสิทธิ์ของคณะวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี มหาวิทยาลัยธรรมศาสตร์ ข้อความที่ปรากฏในแต่ละเรื่องของวารสารเล่มนี้เป็นเพียงความเห็นส่วนตัวของผู้เขียน ไม่มีความเกี่ยวข้องกับคณะวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี หรือคณาจารย์ท่านอื่นในมหาวิทยาลัยธรรมศาสตร์ ผู้เขียนต้องยืนยันว่าความรับผิดชอบต่อทุกข้อความที่นำเสนอไว้ในบทความของตน หากมีข้อผิดพลาดหรือความไม่ถูกต้องใด ๆ
เอกสารอ้างอิง
อภิชาติ ศรีสอาด และจันทรา อู่สุวรรณ, 2556, คู่มือการเพาะปลูกกล้วยเศรษฐกิจเงินล้าน, พิมพ์ครั้งที่ 1, นาคา อินเตอร์มีเดีย, กรุงเทพฯ, 144 น.
Cavero, P.A.S., Hanada, R.E., Gasparotto, L., Coelho Neto, R A. and Souza, J.T.D., 2015, Biological control of banana black Sigatoka disease with Trichoderma, Ciência Rural 45: 951-957.
Falih, A.M.K. and Wainwright, M., 1995, Nitrification in vitro by a range of filamentous fungi and yeasts, Lett. Appl. Microbiol. 21: 18-19.
Formowitz, B., Elango, F., Okumoto, S., Müller, T. and Buerkert, A., 2007, The role of “effective microorganisms” in the composting of banana (Musa ssp.) residues, J. Plant Nutr. Soil Sci. 170: 649-656.
Hammerschmidt, R., Nuckles, E.M. and Kuć, J., 1982, Association of enhanced peroxidase activity with induced systemic resistance of cucumber to Colletotrichum lagena rium, Physiol. Plant Pathol. 20: 73-82.
Hendry, G.A., Houghton, J.D. and Brown, S.B., 1987, The degradation of chlorophyll – a biological enigma, New Phytol. 107: 255-302.
Higa, T. and Chinen, M.N., 1998, EM Treatments of Odor, Waste Water, and Environment Problems, College of Agriculture, Okinawa, Japan, University of Ryukyus.
Higa, T. and Wididana, G.N., 1991, Changes in the soil microflora induced by effective microorganisms, pp.153-161, Proceedings of the First International Conference on Kyusei Nature Farming. US Department of Agriculture, Washington, DC, USA.
Javaid, A., 2009, Growth, nodulation and yield of black gram [Vigna mungo (L.) Hepper] as influenced by biofertilizers and soil amendments, Afr. J. Biotechnol. 8: 5711-5717.
Kavino, M., Manoranjitham, S.K., Balamohan, T.N., Kumar, N., Karthiba, L. and Samiyappan, R., 2011, Enhancement of growth and Panama wilt resistance in Banana by in vitro co-culturing of banana plantlets with PGPR and endophytes, pp. 277-282, In International Symposium on Tropical and Subtropical Fruits 1024.
Korres, A.M., Buss, D.S., Ventura, J.A. and Fernandes, P.M., 2011, Candida krusei and Kloeckera apis inhibit the causal agent of pineapple fusariosis, Fusarium guttiform-me, Fungal Biol. 115: 1251-1258.
Mayer, A.M., Harel, E. and Ben-Shaul, R., 1966, Assay of catechol oxidase – a critical comparison of methods, Phytochemistry 5: 783-789.
Nel, B., Steinberg, C., Labuschagne, N. and Viljoen, A., 2006, The potential of nonpathogenic Fusarium oxysporum and other biological control organisms for suppressing fusarium wilt of banana, Plant Pathol. 55: 217-223.
Nutaratat, P., Srisuk, N., Arunrattiyakorn, P. and Limtong, S., 2014, Plant growth-promoting traits of epiphytic and endophytic yeasts isolated from rice and sugar cane leaves in Thailand, Fungal Biol. 118: 683-694.
Paul, S., 1999, Bacteria in Biology, Biotechnology and Medicine, 6th Ed., John Wiley & Sons, Inc., New Jersey.
Postgate, J., 1998, The origins of the unit of nitrogen fixation at the University of Sussex, Notes Rec. R. Soc. 52: 355-362.
Saravanan, T., Bhaskaran, R. and Muthusamy, M., 2004, Pseudomonas fluorescens induced enzymological changes in banana roots (cv. Rasthali) against Fusarium wilt disease, Plant Pathol. J. 3: 72-80.
Sariah, M., Lim, C.L. and Tariq, S.A., 2001, Use of biochemical marker as a measure of resistance towards fusarium wilt of banana [in Malaysia], In International Workshop on the Banana Fusarium Wilt Disease, Genting Highlands Resort, Malaysia, October 18-20, 1999.
Smith, S.E. and Read, D.J., 2010, Mycorrhizal Symbiosis, Academic Press, Burlington, Massachusetts.
Wood, M.T., Miles, R. and Tabora, P., 1997, EM fermented plant extract and EM5 for controlling pickleworm (Diaphania nitidalis) in organic cucumber, School of Natural Resources, University of Missouri, USA and EARTH College, Limon, Costa Rica.
Zieslin, N. and Zaken, R.B., 1993, Peroxidase activity and presence of phenolic substances in peduncles of rose flowers, Plant Physiol. Biochem. 31: 333-339.
