ผลของความเข้มแสงจากหลอดแอลอีดีต่อการเจริญของยอดอ้อยพันธุ์ขอนแก่น 3 ที่เลี้ยงในระบบไบโอรีแอคเตอร์แบบจมชั่วคราว
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
ความเข้มแสงเป็นปัจจัยหนึ่งที่สำคัญสำหรับกระบวนการสังเคราะห์ด้วยแสงและการพัฒนาของพืชในระบบเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อ งานวิจัยนี้ได้เปรียบเทียบผลของแสงขาวจากหลอดแอลอีดีที่ความเข้มแสงที่พืชใช้สังเคราะห์แสงได้ (photosynthetic photon flux density, PPFD) ต่างกัน 6 ระดับ ได้แก่ 68, 88, 108, 128, 148 และ 168 ไมโครโมล/ตารางเมตร/วินาที (µmol/m2/s) และแสงจากหลอดฟลูออเรสเซนต์ที่ความเข้มแสง 68 µmol/m2/s ต่อการเจริญของยอดอ้อยพันธุ์ขอนแก่น 3 ที่เพาะเลี้ยงในระบบไบโอรีแอคเตอร์แบบจมชั่วคราว บันทึกข้อมูลน้ำหนักสดของยอด น้ำหนักแห้งของยอด จำนวนยอด ความยาวยอดรวม ความยาวยอดแรก และขนาดของกอ ผลการทดลองพบว่าความเข้มแสงที่ต่างกันจากหลอดแอลอีดีสามารถกระตุ้นให้เนื้อเยื่อยอดอ้อยมีน้ำหนักสด น้ำหนักแห้ง ความยาวยอด และขนาดของกอมากกว่าอ้อยที่ได้รับแสงจากหลอดฟลูออเรสเซนต์ โดยที่แสงจากหลอดแอลอีดีที่ความเข้มแสง 128 µmol/m2/s ส่งผลให้อ้อยมีน้ำหนักสดของยอด น้ำหนักแห้งของยอด จำนวนยอด และขนาดของกอมากที่สุด ส่วนแสงจากหลอดแอลอีดีที่มีความเข้มแสง 68 µmol/m2/s ส่งผลให้อ้อยมีความยาวยอดสูงที่สุด แต่ความเข้มแสงจากหลอดแอลอีดีที่ 168 µmol/m2/s ส่งผลให้น้ำหนักสดของยอด ความยาวยอด และจำนวนยอดของอ้อยลดลง
Article Details
บทความที่ได้รับการตีพิมพ์เป็นลิขสิทธิ์ของคณะวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี มหาวิทยาลัยธรรมศาสตร์ ข้อความที่ปรากฏในแต่ละเรื่องของวารสารเล่มนี้เป็นเพียงความเห็นส่วนตัวของผู้เขียน ไม่มีความเกี่ยวข้องกับคณะวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี หรือคณาจารย์ท่านอื่นในมหาวิทยาลัยธรรมศาสตร์ ผู้เขียนต้องยืนยันว่าความรับผิดชอบต่อทุกข้อความที่นำเสนอไว้ในบทความของตน หากมีข้อผิดพลาดหรือความไม่ถูกต้องใด ๆ
เอกสารอ้างอิง
Batista, D.S., Felipe, S.H.S., Silva, T.D., Castro, K.M., Mamedes-Rodrigues, T.C., Miranda, N.A., Ríos-Ríos, A.M., Faria, D.V., Fortini, E.A., Chagas, K., Torres-Silva, G., Xavier, A., Arencibia, A.D. and Otoni, W.C., 2018, Light quality in plant tissue culture: does it matter?, In vitro Cell. Dev. Biol. Plant 54: 195-215.
Bula, R.J., Morrow, T.W., Tibbitts, T.W., Barta, D.J., Ignatius, R.W. and Martin, T.S., 1991, Light-emitting diodes as a radiation source for plants, Hort. Sci. 26: 203-205.
Cioc, M., Kalisz, A., Zupnik, M. and Pawtowska, B., 2019, Different LED light intensities and 6-Benzyladenine concentrations in relation to shoot development, leaf architecture, and photosynthetic pigments of Gerbera jamesonii Bolus in vitro, Agronomy 9: 358-373.
Darko, E., Heydarizadeh, P., Schoefs, B. and Sabzalian, M.R., 2014, Photosynthesis under artificial light: the shift in primary and secondary metabolism, Phil. Trans. R Soc. B 369: 20130243.
Distabanjong, C., Distabanjong, K., Woo, J.G. and Jang, S.W., 2018, Production of phytoplasma-free plants in sugarcane (Saccharum spp.) using temporary immersion bioreactor, Acta Hort. 1205: 727-734.
Escalona, M., Samson, G., Borroto, C. and Desjardins, Y., 2003, Physiology of effects of temporary immersion bioreactors on micropropagated pineapple plantlets, In vitro Cell. Dev. Biol. Plant 39: 651-656.
Kwon, A.R., Cui, H.Y., Lee, H., Shin, H., Kang, K.S. and Park, S.Y., 2015, Light quality affects shoot regeneration, cell division, and wood formation in elite clones of Populus eurmericana, Acta Physiol. Plant 37: 65-73.
Lin, K.H., Huang, M.Y., Huang, W.D. Hsu, M.H., Yang, Z.W., Yang, C.M., 2013, The effects of red, blue, and white light-emitting diodes on the growth, development, and edible quality of hydroponically grown lettuce (lactuca sativa l. Var. Capitata). Sci. Hort. 150: 86-91.
Neto, A.R., Chagas, E.A., Costa, B.N.S., Chagas, P.C. and Vendrame, W.A., 2020, Photomixotrophic growth response of sugarcane in vitro plantlets using different light intensities and culture vessel types, In Vitro Cell. Dev. Biol. Plant. 56: 504-514.
Nhut, D.T., Takamura, T., Watanabe, H. and Tanaka, M., 2003, Efficiency of a novel culture system by using light-emitting diode (LED) on in vitro and subsequent growth of micropropagated banana plantlets, Acta
Hort. 616: 121-127
Office of Agricultural Economics, Agricultural Economic Information, Available Source: http://www.oae.go.th, May 8, 2020. (in Thai)
Rocha, P.S.G., Oliveira, R.P. and Scivittaro, W.B., 2013, Sugarcane micropropagation using light emitting diodes and adjustment in growth-medium sucrose concentration, Cienc. Rural. 43: 1168-1173.
Seiler, F., Soll, J. and Bölter, B., 2017, Comparative phenotypical and molecular analyses of Arabidopsis grown under fluorescent and LED light, Plants 6: 24-38.
Silva, M., Silva, A., Oliveira, A., Oliveira-Filho, R., Camara, T., Willadino, L., Gouveia-Neto, A., 2016, The effect of spectral light quality on in vitro culture of sugarcane, Acta Sci. Biol. Sci. 38: 157-161.
Tesfa, M. and Ftwi, M., 2018, In vitro plant regeneration of sugarcane (Saccharum spp.) variety inoculated under different levels of plant growth regulators, J. Plant Biochem. Physiol. 6: 227-231.
Topoonyanont, N., Pumisutapon, P., Klayraung, S. and Poonnoy, P., 2017, Temporary immersion bioreactors for large scale Globba micropropagation, Acta Hort. 1155: 51-58.
Waman, A.A., Bohra, P., Sathyanarayana, B.N., Umesha, K., Gowda, B. and Ashok, T.H., 2015, In vitro shoot multiplication and root induction in silk banana variety Nanjanagud Rasabale as influenced by monochromatic light spectra, Proc. Natl. Acad. Sci. India
Sect. B Biol. Sci. 86: 577-584.
Watt, M.P., 2012, The status of temporary immersion system (TIS) technology for plant micropropagation, Afr. J. Biotechnol. 11: 14025-14035.
Wongmetha, O., Chot-im-udom, N., Youngpong, S. and Ruangkul, T., 2019, The influence of plant growth regulators on increase of microtuber induction in potato, Thai Agric. Res. J. 37(1): 70-77. (in Thai)
Yeh, N. and Chung, J.P., 2009, High-brightness LEDs-energy efficient lighting sources and their potential in indoor plant cultivation, Renew. Sust. Energy Rev. 13: 2175-2180.
Zhang, M., Zhao, D., Ma, Z., Li, X. and Xiao, Y.,
2009, Growth and photosynthetic capability of Momordica grosvenori plantlets grown photoautotrophically in response to light intensity, Hort. Sci. 44: 757-763.
Zhou, M., Guan, Q., Wei, Y. and Zhang, Z., 2008, Effects of sucrose concentration and light intensity on growth and photosynthesis of ginger plantlets in vitro, Chinese J. Appl. Environ. Biol. 14: 356-361.
