ผลของสารควบคุมการเจริญเติบโตต่อการชักนำให้เกิดและการเจริญเติบโตของแคลลัสองุ่นสำหรับการผลิตสารทุติยภูมิ
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
บทคัดย่อ
องุ่น (Vitis vinifera) เป็นผลไม้ที่มีสรรพคุณต้านอนุมูลอิสระ เนื่องจากมีสารทุติยภูมิที่สำคัญกลุ่มโพลีฟีนอล ซึ่งมีส่วนในการยับยั้งสาเหตุของการเกิดโรคมะเร็งชนิดต่าง ๆ และยังช่วยลดคอเลสเตอรอล จึงมีส่วนช่วยลดการเกิดโรคหัวใจได้ ดังนั้นงานวิจัยนี้มีวัตถุประสงค์เพื่อศึกษาผลของสารควบคุมการเจริญเติบโต ต่อการชักนำให้เกิด และการเจริญเติบโตของแคลลัสจากชิ้นส่วนขององุ่น สำหรับการผลิตสารทุติยภูมิ ด้วยเทคนิคการเพาะเลี้ยงเซลล์ขององุ่น โดยการศึกษาผลของสารควบคุมการเจริญเติบโตต่อการชักนำและการเจริญเติบโตของแคลลัสจากชิ้นส่วนองุ่น ในอาหารสังเคราะห์สูตร MS (Murashige and Skoog) ที่มีการเติมสารควบคุมการเจริญเติบโต N6-benzyladenine (BAP) และ napthaleneacetic acid (NAA) พบว่าที่ระดับความเข้มข้นเท่ากับ 1 และ 0.5 มิลลิกรัมต่อลิตร ตามลำดับ สามารถชักนำให้เกิดแคลลัสจากชิ้นส่วนขององุ่น และศึกษาผลของสารควบคุมการเจริญเติบโต BAP ที่ระดับความเข้มข้นต่าง ๆ ต่อการเจริญเติบโตของแคลลัส ที่ระยะเวลา 4 สัปดาห์ พบว่าอาหารสังเคราะห์สูตร MS ที่เติม BAP ที่ระดับความเข้มข้น 1.5 มิลลิกรัมต่อลิตร เหมาะสมต่อการเจริญเติบโตของแคลลัส ซึ่งมีน้ำหนักสดมากที่สุดเท่ากับ 3.70±0.53 กรัม จากนั้นตรวจสอบสารสกัดจากแคลลัสด้วยเทคนิคโครมาโทกราฟีแบบแผ่นบาง (TLC) พบสารเรสเวอราทรอลเป็นองค์ประกอบ ซึ่งมีฤทธิ์กำจัดอนุมูลอิสระ DPPH มีค่า EC50 เท่ากับ 21.38±2.53 ไมโครกรัมต่อมิลลิลิตร
คำสำคัญ : องุ่น; แคลลัส; สารควบคุมการเจริญเติบโต; สารทุติยภูมิ; ฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระ
Article Details
References
[2] God, J.M., Tate, P. and Larcom, L.L., 2007, Anticancer effects of four varieties of muscadine grape, J. Med. Food 10: 54-59.
[3] Shanmuganayagam, D., Warner, T.F., Krueger, C.G., Reed, J.D. and Folts, J.D., 2007, Concord grape juice attenuates platelet aggregation, serum cholesterol and development of atheroma in hyper cholesterolemic rabbits, Atherosclerosis 190: 135-142.
[4] Dias, M.I., Sousa, M.J., Alves, R.C. and Ferreira, I.C.F.R., 2016, Exploring plant tissue culture to improve the production of phenolic compounds: A review, Indust. Crops Prod. 82: 9-22.
[5] Saw, N., Riedel, H., Cai, Z., Kütük, O. and Smetanska, I., 2012, Stimulation of anthocyanin synthesis in grape (Vitis vinifera) cell cultures by pulsed electric fields and ethephon. Plant Cell, Tissue Organ Cult. 108: 47-54.
[6] Marwani, E., Wardhani, K., and Esyanti, R., 2015, Development of hairy root culture of Andrographis paniculata for in vitro adrographollide production, J. Med. Bioeng. 4: 446-450.
[7] Loc, N.H. and Nhat, N.T.D., 2013, Production of asiaticoside from centella (Centella asiatica L. Urban) cells in bioreactor, Asian Pac. J. Trop. Biomed. 3: 806-810.
[8] Kaewpiboon, C. and Lohasupthawee, P., 2004, Effect of plant growth regulators to the differentiation and development of grape callus, King Mongkut's institute of Technology Ladkrabang, Bangkok.
[9] Hosseini, S.M., Bahramnejad, B., Douleti Baneh, H., Emamifar, A. and Goodwin, P.H., 2017, Hairy root culture optimization and resveratrol production from Vitis vinifera subsp. sylvesteris, World J. Microbiol. Biotechnol. 33: 67.
[10] Cetin, E.S., 2014, Induction of secondary metabolite production by UV-C radiation in Vitis vinifera L. Okuzgozu callus cultures, Biol. Res. 47: 37.
[11] Köse, C. and Güleryüz, M., 2006, Effects of auxins and cytokinins on graft union of grapevine (Vitis vinifera), New Zealand J. Crop Hort. Sci. 34: 145-150.
[12] Shirani Bidabadi, S., Afazel, M. and Sabbatini, P., 2018, Iranian grapevine rootstocks and hormonal effects on graft union, growth and antioxidant responses of Asgari seedless grape, Hort. Plant J. 4: 16-23.
[13] Kaewpiboon, C., Lirdprapamongkol, K., Srisomsap, C., Winayanuwattikun, P., Yongvanich, T., Puwaprisirisan, P., Svasti, J. and Assavalapsakul, W., 2012, Studies of the in vitro cytotoxic, antioxidant, lipase inhibitory and antimicrobial activities of selected Thai medicinal plants, BMC Complement Altern. Med. 12: 127.
[14] Seung-Heui Kim, S.K.K., 2002, Effects of auxins and cytokinins on callus induction from leaf blade, petiole and stem segment of in vitro-grown Sheidan grape shoots, J. Plant Biotechnol. 4: 17-21.
[15] Khan, N., Ahmed, M., Hafiz, I., Abbasi, N., Ejaz, S., Anjum, M., 2015, Optimizing the concentrations of plant growth regulators for in vitro shoot cultures, callus induction and shoot regeneration from calluses of grapes, OENO One 49: 37-45.
[16] Keskin, N. and Kunter, B., 2008, Production of trans-resveratrol in 'Cabernet Sauvignon' (Vitis vinifera L.) callus culture in response to ultraviolet-C irradiation, Vitis 47: 193-196.
[17] Cai, Z., Kastell, A., Speiser, C. and Smetanska, I., 2013, Enhanced resveratrol production in Vitis vinifera cell suspension cultures by heavy metals without loss of cell viability, Appl. Biochem. Biotechnol. 171: 330-340.
[18] Esna-Ashari, M. and Mahmoodi Pour, A., 2011, Effect of methyl jasmonate on resveratrol production in organs and cell suspension cultures of two Iranian grapevine (Vitis vinifera L.) cultivars, J. Hort. Sci. Biotechnol. 86: 557-562.
[19] Vuong, T.V., Franco, C. and Zhang, W., 2014, Treatment strategies for high resveratrol induction in Vitis vinifera L. cell suspension culture, Biotechnol. Rep. 1-2: 15-21.
[20] Fauconneau, B., Waffo-Teguo, P., Huguet, F., Barrier, L., Decendit, A. and Merillon, J.M., 1997, Comparative study of radical scavenger and antioxidant properties of phenolic compounds from Vitis vinifera cell cultures using in vitro tests, Life Sci. 61: 2103-2110.