อิทธิพลของการใช้เห็ดจั่นต่อการเจริญเติบโตของยาสูบพันธุ์เวอร์จิเนียและยางพาราพันธุ์ RRIM600
Main Article Content
บทคัดย่อ
การศึกษาผลของการใช้เห็ดจั่นต่อการเจริญเติบโตของยาสูบ พันธุ์เวอร์จิเนีย และยางพารา พันธุ์ RRIM600 โดยแบ่งเป็น 7 กลุ่มทดลอง ได้แก่ กลุ่มที่ 1 กลุ่มดินไม่ใส่อาหารข้าวฟ่างและเห็ดจั่น กลุ่มที่ 2, 3 และ 4 กลุ่มดินใส่อาหารข้าวฟ่างที่ไม่มีเห็ดจั่น 100, 200 และ 300 กรัม/ถุง ตามลำดับ และกลุ่มที่ 5, 6 และ 7 กลุ่มดินใส่อาหารข้าวฟ่างที่มีเห็ดจั่น 100, 200 และ 300 กรัม/ถุง ตามลำดับ สำหรับยาสูบทดลองเป็นเวลา 2 เดือน โดยวัดจำนวนใบ ความกว้างใบ ความยาวใบ ความสูงของต้น น้ำหนักราก น้ำหนักใบสด และอัตราการรอดตาย ส่วนยางพาราทดลองเป็นเวลา 3.5 เดือน โดยวัดจำนวนใบ ความกว้างใบ ความยาวใบ ความสูงของต้น ขนาดรอบลำต้น เส้นผ่านศูนย์กลางลำต้น และอัตราการรอดตาย จากการทดลองสำหรับยาสูบพบว่ากลุ่มที่ 1 มีจำนวนใบ ความสูงของต้น น้ำหนักรากและน้ำหนักใบสดมากที่สุด คือ 20.29±1.70 ใบ, 57.2±9.2 เซนติเมตร, 77.54±18.39 กรัม และ 10.95±1.48 กรัม ตามลำดับ (p < 0.05) แต่ไม่พบความแตกต่างของความกว้างใบ ความยาวใบและอัตราการรอดตายระหว่างกลุ่มทดลอง (p > 0.05) สำหรับยางพาราพบว่ากลุ่มที่ 3 มีจำนวนใบมากที่สุด คือ 12.00±3.50 ใบ (p > 0.05) กลุ่มที่ 5 มีความกว้างใบ ความยาวใบ และความสูงของต้นมากที่สุดเท่ากับ 16.8±2.2, 10.9±1.0 และ 31.6±9.6 เซนติเมตร ตามลำดับ (p > 0.05) กลุ่มที่ 2 มีขนาดรอบลำต้นและเส้นผ่านศูนย์กลางลำต้นมากที่สุด คือ 15.84±1.43 และ 4.97±0.40 มิลลิเมตร ตามลำดับ (p > 0.05) กลุ่มที่ 5 และ 7 มีอัตราการรอดตายมากที่สุด (p < 0.05) ดังนั้นจะเห็นได้ว่าการใช้เห็ดจั่นส่งผลเชิงลบต่อการเจริญเติบโตและผลผลิตของยาสูบพันธุ์เวอร์จิเนีย แต่การใช้เห็ดจั่นมีผลเชิงบวกต่อการรอดตายของยางพาราพันธุ์ RRIM600
คำสำคัญ : เห็ดจั่น; ยาสูบ; ยางพารา; การเจริญเติบโต
Article Details
เอกสารอ้างอิง
[2] Joshi, N., 2009, In vitro growth and shoot multiplication in Nicotiana tabacum L. influence of gelling agent and carbon source, Int. J. Plant Develop. Biol. 3: 29-33.
[3] Trojak-Goluch, A. and Berbec, A., 2009, Resistance to black root rot (Chalara elegans Nag. Raj and Kendrick) and some growth characteristics in doubled haploid derivatives of the F1 hybrid of tobacco (Nicotiana tabacum L.), Pol. J. Agro. 1: 52-55.
[4] ธัญญรัตน์ พุทธิมา, ปิติพงษ์ โตบันลือภพ, เอ็จ สโรบล และสุขุมาลย์ เลิศมงคล, 2557, การเจริญเติบโตและองค์ประกอบทางชีวเคมีของน้ำยางพารา พันธุ์ RRIM 600 ที่ปลูกในเขตพื้นที่ศักยภาพการผลิตแตกต่างกัน, ว. วิทย์. กษ. 45(2)(พิเศษ): 641-644.
[5] Santos, R.S., Valmir, A., Costa, V.A., Silva, J.M. and Freitas, S., 2012, Population dynamics of Leptopharsa heveae (Hemiptera: Tingidae) and Erythmelus tingitiphagus (Hymenoptera: Mymaridae) in rubber tree plants, Rev. Colomb. Entomol. 38: 314-319.
[6] Puwaphut, R., Nakkaew, A. and Phongdara, A., 2016, Diversity among 3 cultivars (RRIM600, RRIT251, and PB350) of Hevea brasiliensis and secondary metabolite production, Songkla. J. Sci. Tech. 38: 15-22.
[7] Chantuma, P., Boonnam, W., Kunalasiri , A., Kosaisevee, D., Limpichai, S., Khao-chuang, C., Puangkaew, R., Lekawipat, N., Ramli, S., Sangsing, K., Chantuma, A., Patchimkul, S. and Rungravee, P., 2011, Para Rub. Bull. 32: 17-35.
[8] Qi, D., Zhou, J., Xie, G. and Wu, Z., 2014, Studies on rubber (Hevea brasiliensis) trees exist plant type after planting and available tapping tree of rubber plantation in China, Amer. J. Plant Sci. 5: 3017-3021.
[9] นิรมล แสงจันดา, สุภัทร์ อิศรางกูร ณ อยุธยา, สมยศ มีทา, พัชริน ส่งศรี และเกริก ปั้นเหน่งเพ็ชร, 2557, ผลของภูมิอากาศต่อการเจริญ เติบโตและลักษณะทางสรีรวิทยาบางประการของยางพาราในภาคตะวันออกเฉียงเหนือของประเทศไทย, แก่นเกษตร. 42(พิเศษ): 160-165.
[10] Krishan, B., 2015, Growth assessment of popular clones of natural rubber (Hevea brasiliensis) under warm dry climatic conditions of Chattisgarh state, Central India, J. Exp. Bio. Agric. Sci. 3: 157-161.
[11] Sungthongwises, K., 2015, Efficiency of vermicompost on growth and nutrients content of young rubber trees (Hevea brasiliensis), Int. J. Environ. Rural Develop. 6: 148-152.
[12] Hermández, C.A., Kafuri, L.A., Isaza, R.A. and Arias, M.L., 2006, Analysis of genetic variation in clones of rubber (Hevea brasiliensis) from Asian, South and Central American origin using RAPDs markers, Rev. Colomb. Biotechnol. 8(2): 29-34.
[13] Samanta, S., Maity, K., Nandi, A.K., Sen, I.K., Devi, K.S.P., Mukherjee, S., Maiti, T.K., Acharya, K. and Islam, S.S., 2013, A glucan from an ectomycorrhizal edible mushroom Tricholoma crassum (Berk.) Sacc.: isolation, characterization, and biological studies, Carb. Res. 367: 33-40.
[14] Steinfeld, D., Amaranthus, M.P. and Cazares, E., 2003, Survival of ponderosa pine (Pinus ponderosa Dougl. ex Laws.) seedlings outplanted with Rhizopogon mycorrhizae inoculated with spores at the nursery, J. Arboricul. 29: 197-207.
[15] Kaewgrajang, T., Sangwanit, U., Iwase, K., Kodama, M. and Yamato, M., 2013, Effects of ectomycorrhizal fungus Astraeus odoratus on Dipterocarpus alatus seedlings, J. Trop. Forest Sci. 25: 200-205.
[16] Pyasi, A., Soni, K.K. and Verma, R.K., 2013, Effect of ectomycorrhizae on growth and estabilshment of Sal (Shorea robusta) seeding in central India, Bioscience 5: 44-49.
[17] Ramachela, K., 2013, Growth response of Uapaca kirkiana seedlings to Ectomycorrhizal inoculation in sand growth media, IPCBEE. 57: 16-24.
[18] จิตรตรา เพียภูเขียว, 2554, เชื้อรากับต้นไม้, ว. เชิงความรู้เพื่อพัฒนาอุตสาหกรรมการพิมพ์และบรรจุภัณฑ์ 1(4): 6-7.
[19] สุกัญญา บุญทา, ประภาพร ตั้งกิจโชติ และกวิศร์ วานิชกุล, 2557, ผลของเชื้อเห็ดตับเต่าต่อการเติบโตทางกิ่งใบของพริกขี้หนู ‘เทวี 60’, ว. วิทย์. กษ. 45(2)(พิเศษ): 5-8.
[20] Orlando, F., Napoli, M., Marta, A.D., Natali, F., Mancini, M., Zanchi, C. and Orlandini, S., 2011, Growth and development responses of tobacco (Nicotiana tabacum L.) to changes in physical and hydrological soil properties due to minimum tillage, Amer. J. Plant Sci. 2: 334-344.
[21] Warren, J.M., Brooks, J.R., Meinzer, F.C. and Eberhart, J.L., 2008, Hydraulic redistribution of water from Pinus ponderosa trees to seedlings: evidence for an ectomycorrhizal pathway, New Phytol. 178: 382-394.
[22] Hilszczanska, D., 2004, Mycorrhizal status of Scots pine Pinus sylvestris L. seedlings grown in watered and non-watered nursery condition, Dendrobiology 52: 23-28.
[23] Nakashima, H., Eguchi, N., Uesugi, T., Yamashita, N. and Matsuda, Y., 2016, Effect of ectomycorrhizal composition on survival and growth of Pinus thunbergii seedings varying in resistance to the pine wilt nematode, Trees 30: 475-481.
[24] สุภาวดี ง้อเหรียญ, พยุงศักดิ์ รวยอารี, กษิดิศ ดิษฐบรรจง และหทัยรัตน์ อุไรรงค์, 2555, การโคลนและวิเคราะห์ยีนไซโคลฟิลินจากข้าวฟ่างและการถ่ายยีนเข้าสู่ยาสูบ, ว. วิชาการ กษ. 30(1): 2-22.
[25] Rincón A., Javier Parladé J. and Joan Pera J., 2005, Effects of ectomicorrhizal inoculation and the type of substrate on mycorrhization, growth and nutrition of containerized Pinus pinea L. seedlings produced in a commercial nursery, Ann. Forest Sci. 62: 1-6.
[26] Otgonsuren, B. and Lee, M.J., 2013, ectomycorrhiza enhanced the cold acclimation growth and freeze toleranc of Scots Pine (Pinus sylvestris L.), Taiwan J. Forest Sci. 28: 97-111.
[27] Jourand, P., Hannibal, L., Majorel, C., Mengant, S., Ducousso, M. and Lebrun, M., 2014, Ectomycorrhizal Pisolithus albus inoculation of Acacia spirorbis and Eucalyptus globulus grown in ultramafic topsoil enhances plant growth and mineral nutrition while limits metal uptake, J. Plant Physiol. 171: 164-172.
[28] Luo, Z., Wu, C., Xhang, C., Li, H., Lipka, U. and Polle, A., 2014, The role of ectomycorrhizas in heavy metal stress tolerance of host plants, Envi. Exp. Botany. 108: 47-62.
[29] Sousa, N.R., Franco, A.R., Oliveira, R.S. and Castro, P.M.L., 2012, Ectomycorrhizal fungi as an alternative to the use of chemical fertilisers in nursery production of Pinus pinaster, J. Environ. Manag. 95: S269-S274.
[30] Benwal, R.S., Langenfeld-Heyser, R. and Polle, A., 2010, Ectomycorrhiza and hydrogel protect hybrid poplar from water deficit and unravel plastic reponses of xylem anatomy, Environ. Exp. Bot. 69: 189-197.
[31] Moser, B., Kipfer, T. and Richter, S., 2015, Drought resistance of Pinus sylvestris seedling conferred by plastic root architecture than ectomycorrhizal colonization, Ann. Forest Sci. 72: 303-309.
[32] Onguene, N.A. and Kuyper, T.W., 2002, Importance of the ectomycorrhizal network for seedling survival and ectomycorrhiza formation in rain forests of south Cameroon, Mycorrhiza. 12: 13-17.
[33] Teste, F.P., Schmidt, M.G., Berch, S.M., Bulmer, C. and Egger, K.N., 2004, Effects of ectomycorrhizal inoculants on survival and growth of interior Douglas-fir seedlings on reforestation sites and partially rehabilitated landing, Can. J. Forest Res. 34: 2074-2088.